Summary

がんエピジェネティクス研究のためのATAC-Seq最適化

Published: June 30, 2022
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Summary

ATAC-seqは、多動変異トランスポザーゼTn5を使用して、転写因子によって媒介されるクロマチンアクセシビリティの変化をマッピングするDNAシーケンシング法です。ATAC-seqは、がん細胞の表現型変化の根底にある分子メカニズムの発見を可能にします。このプロトコルは、がん細胞を含む上皮細胞タイプにおけるATAC-seqの最適化手順の概要を示しています。

Abstract

ハイスループットシーケンシング(ATAC-seq)プローブを用いたトランスポザーゼアクセス可能なクロマチンのアッセイは、高活性Tn5トランスポザーゼを用いたデオキシリボ核酸(DNA)アクセシビリティです。Tn5は、アダプターを切断およびライゲーションして、アクセス可能なクロマチン領域内でのハイスループットシーケンシングを実現します。真核細胞では、ゲノムDNAは、DNA、ヒストン、およびその他のタンパク質の複合体であるクロマチンにパッケージ化されており、転写機構に対する物理的な障壁として機能します。外因性シグナルに応答して、転写因子はクロマチンリモデリング複合体を動員し、遺伝子活性化のための転写機構へのアクセスを可能にします。したがって、オープンクロマチン領域の同定は、癌の進行などの生物学的事象中のエンハンサーおよび遺伝子プロモーター活性をモニタリングする場合に有用である。このプロトコルは使いやすく、細胞投入要件が低いため、ATAC-seqは、がん細胞を含むさまざまな細胞タイプのオープンクロマチン領域を定義するために広く採用されています。データ集録を成功させるには、ATAC-seqライブラリを準備する際にいくつかのパラメータを考慮する必要があります。その中で、細胞溶解バッファーの選択、Tn5酵素の滴定、および細胞の開始量は、癌細胞におけるATAC-seqライブラリ調製にとって非常に重要です。高品質のデータを生成するには、最適化が不可欠です。ここでは、上皮細胞型に対するATAC-seq最適化法について詳細に説明する。

Introduction

クロマチンアクセシビリティは、ゲノムワイドスケールでの遺伝子発現調節の重要な要件です1。クロマチンアクセシビリティの変化は、癌を含むいくつかの病状と頻繁に関連しています2,3,4長年にわたり、研究者がクロマチンアクセシビリティの領域をマッピングすることによってクロマチンランドスケープを調査できるようにするために、多くの技術が開発されてきました。その中には、DNase-seq(DNase I過敏性部位シーケンシング)5、FAIRE-seq(ホルムアルデヒドによる調節要素の単離)6、MAPit(個々のテンプレートに対するメチルトランスフェラーゼアクセシビリティプロトコル)7、および本論文の焦点であるATAC-seq(トランスポザーゼアクセス可能なクロマチンのアッセイ)8などがあります。DNase-seqは、DNaseの重要な特徴、すなわちヒストンや転写因子5などの他のタンパク質を含まない裸のDNAを優先的に消化することを利用して、アクセス可能な領域をマッピングします。FAIRE-seqは、ChIP-seqと同様に、免疫沈降が関与しないことを除いて、ホルムアルデヒド架橋および超音波処理を利用し、ヌクレオソームを含まない領域はフェノール-クロロホルム抽出によって単離されます6。MAPitメソッドは、GCメチルトランスフェラーゼを使用して、単一分子分解能でクロマチン構造をプローブします7。ATAC-seqは、活性亢進トランスポザーゼTn58に依存しています。Tn5トランスポザーゼは、開いたクロマチン領域に優先的に結合し、シーケンシングアダプターをアクセス可能な領域に挿入します。Tn5は、DNAを介した「カットアンドペースト」メカニズムを介して動作し、アダプターをプリロードしたトランスポザーゼが開いたクロマチン部位に結合し、DNAを切断し、アダプターをライゲーションします8。Tn5結合領域は、これらのアダプターにアニールするプライマーを用いたPCR増幅によって回収される。FAIRE-seqおよびDNase-seqは、大量の出発物質(~100,000細胞から225,000細胞)と、シーケンシング9の前に別のライブラリ調製ステップを必要とします。一方、ATAC-seqプロトコルは比較的単純で、必要な細胞数(<50,000セル)10です。FAIRE-seqおよびDNase-seq技術とは異なり、単離されたDNAサンプルはすでにTn5によってシーケンシングアダプターでタグ付けされているため、ATAC-seqのシーケンシングライブラリ調製は比較的簡単です。したがって、ライブラリ調製を完了するために適切なプライマーによるPCR増幅ステップのみが必要であり、エンドリペアおよびアダプターライゲーションなどの事前処理ステップを実行する必要はなく、したがって時間を節約する11。第二に、ATAC-seqは、MAPit7に必要な領域特異的プライマーによるバイサルファイト変換、クローニング、および増幅の必要性を回避します。これらの利点により、ATAC-seqはオープンクロマチン領域を定義するための非常に一般的な方法になりました。ATAC-seq法は単純ですが、高品質で再現性のあるデータを得るためには、複数のステップを最適化する必要があります。この原稿では、標準的なATAC-seqライブラリ調製の最適化手順について説明し、特に(1)溶解バッファー組成、(2)Tn5トランスポザーゼ濃度、および(3)細胞数の3つのパラメーターを強調しています。さらに、この論文では、癌性および非癌性の付着上皮細胞の両方を使用した最適化条件からのサンプルデータを提供します。

Protocol

1.実験開始前の準備 溶解バッファーストックを調製します。注:最適な核分離バッファーは、細胞タイプごとに異なる場合があります。原著論文8で使用した低張バッファーとCSKバッファー12,13の両方を、トリパンブルー染色を使用して各細胞タイプについてテストすることをお勧めします。低張緩衝液(…

Representative Results

ATAC-seqデータを高品質で得るためには、実験条件を最適化することが重要です。ATAC-seqライブラリの調製は、細胞溶解、タグメンテーション(Tn5によるフラグメンテーションとアダプター挿入)、ゲノムDNA精製、PCR増幅、データ解析の5つの主要ステップ(図1)に分けることができます。初期プロセスとして、細胞溶解(核分離)バッファーを最初に各細胞タイプに最適化する必?…

Discussion

ATAC-seqは、オープンクロマチン領域と活性クロマチン領域のマッピングに広く使用されています。がん細胞の進行は、遺伝子の変化やエピジェネティックなリプログラミングによって駆動されることが多く、その結果、クロマチンへのアクセス可能性と遺伝子発現が変化します。このリプログラミングの例は、腫瘍転移中の重要な細胞リプログラミングプロセスであることが知られている上?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

優れた技術支援を提供してくれたUNDゲノミクスコア施設に感謝します。

この研究は、国立衛生研究所[P20GM104360からM.T.、P20 GM104360からA.D.]によって資金提供され、ノースダコタ大学医学部および健康科学部、生物医科学部[M.T.へ]から提供されたスタートアップ資金によって資金提供されました。

Materials

1.5 mL microcentrifuge tubes USA Scientific 1615-5500 Natural
10 µL XL TipOne tips USA Scientific 1120-3810 Filtered and low-retention
100 µL XL TipOne RPT tips USA Scientific 1182-1830 Filtered and low-retention
100 µL XL TipOne tips USA Scientific 1120-1840 Filtered and low-retention. Beveled Grade
15 mL Conical Centrifuge Tubes Corning 352096
20 µL TipOne RPT tips USA Scientific 1183-1810 Filtered and low-retention
200 µL TipOne RPT tips USA Scientific 1180-8810 Filtered and low-retention
50 mL Centrifuge Tubes Fisherbrand 06-443-19
Agarose ThermoFisher Scientific YBP136010 Genetic Analysis Grade
All the cell lines used in this study are obtained from ATCC ATCC
Allegra X-30R Centrifuge Beckman Coulter 364658 SX2415
AMPure XP beads Beckman Coulter A63881 Bead purification kit
CellDrop Cell Counter DeNovix CellDrop FL Cell counter
EDTA MilliporeSigma EDS BioUltra, anhydrous, ≥99% (titration)
EGTA MilliporeSigma E3889
Ethanol 100% ThermoFisher Scientific AC615100020 Anhydrous; Fisher Scientific – Decon Labs Sterilization Products
Fetal Bovine Serum – TET Tested R&D Systems S10350 Triple 0.1 µm filtered
Gibco DMEM 1x ThermoFisher Scientific 11965092 [+] 4.5 g/L D-glucose; [+] L-Glutamine; [-] Sodium pyruvate
Gibco PBS 1x ThermoFisher Scientific 10010023 pH 7.4
Gibco Trypsin-EDTA 1x ThermoFisher Scientific 25200056 (0.25%), phenol red
Glycerol IBI Scientific 56-81-5
Glycine MilliporeSigma G8898
HCl MilliporeSigma H1758
HEPES MilliporeSigma H3375
Invitrogen Qubit Fluorometer ThermoFisher Scientific Q32857
MgCl2 MilliporeSigma M3634
MinElute PCR Purification kit Qiagen 28004 DNA purification kit
NaCl IBI Scientific 7647-14-5
NaOH MilliporeSigma S8045 BioXtra, ≥98% (acidimetric), pellets (anhydrous)
NEBNext High-Fidelity 2x PCR Master Mix New England Biolabs M0541
Nextera DNA Sample Preparation Kit Illumina FC-121-1030 2x TD and Tn5 Transposase
NP – 40 (IGEPAL CA-630) MilliporeSigma I8896 for molecular biology
PCR Detection System BioRad 1855484 CFX384 Real-Time System. C1000 Touch Thermal Cycler
PIPES MilliporeSigma P1851 BioPerformance Certified, suitable for cell culture
Qubit dsDNA HS Assay kit ThermoFisher Scientific Q32854 Invitrogen; Nucleic acid quantitation kit
Quibit Assay Tubes ThermoFisher Scientific Q32856 Invitrogen
SDS MilliporeSigma L3771
Sodium Acetate Homemade pH 5.2
Sucrose IBI Scientific 57-50-1
SYBR Gold ThermoFisher Scientific S11494
SYBR Green Supermix, 1.25 mL BioRad 1708882
T100 Thermal Cycler BioRad 1861096
TempAssure 0.2 mL PCR 8-Tube Strips USA Scientific 1402-4700 Flex-free, natural, polypropylene
TempPlate 384-WELL PCR PLATE USA Scientific 1438-4700 Single notch. Natural polypropylene
Tris Base MilliporeSigma 648311 ULTROL Grade
Triton x-100 IBI Scientific 9002-93-1
TrueSeq Dual Index Sequencing Primer Kit Illumina PE-121-1003 paired-end
Trypan Blue Stain ThermoFisher Scientific Q32851
Tween-20 MilliporeSigma P7949 BioXtra, viscous liquid
Water MilliporeSigma W3500 sterile-filtered, BioReagent, suitable for cell culture

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Cite This Article
Cooper, M., Ray, A., Bhattacharya, A., Dhasarathy, A., Takaku, M. ATAC-Seq Optimization for Cancer Epigenetics Research. J. Vis. Exp. (184), e64242, doi:10.3791/64242 (2022).

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