Summary

Un sistema gnotobiotico per studiare l'assemblaggio del microbioma nella Phyllosphere e nella fermentazione vegetale

Published: June 03, 2020
doi:

Summary

È stato sviluppato un metodo per coltivare cavoli Napa privi di germi che consente ai ricercatori di valutare come singole specie microbiche o comunità microbiche multispecie interagiscono sulle superfici delle foglie di cavolo. Viene inoltre presentato un estratto vegetale sterile che può essere utilizzato per misurare i cambiamenti nella composizione della comunità durante la fermentazione vegetale.

Abstract

La fillosfera, la parte sotterranea della pianta che può essere colonizzata dai microbi, è un utile sistema modello per identificare i processi di assemblaggio della comunità microbica. Questo protocollo delinea un sistema per studiare le dinamiche della comunità microbica nella filosfera delle piante di cavolo Napa. Descrive come coltivare piante prive di germi in provette con un substrato di brodo di argilla e nutrienti. L’inoculazione di piante prive di germi con colture microbiche specifiche offre l’opportunità di misurare la crescita microbica e le dinamiche della comunità nella fillosfera. Attraverso l’uso di estratto vegetale sterile prodotto da cavoli si sposta nelle comunità microbiche che si verificano durante la fermentazione può anche essere valutato. Questo sistema è relativamente semplice ed economico da configurare in laboratorio e può essere utilizzato per affrontare le principali questioni ecologiche nell’assemblaggio della comunità microbica. Fornisce inoltre l’opportunità di capire in che modo la composizione della comunità della fillosfera può influire sulla diversità microbica e sulla qualità delle fermentazioni vegetali. Questo approccio per lo sviluppo di comunità di filosfera gnotobiotica potrebbe essere applicato ad altre specie vegetali selvatiche e agricole.

Introduction

La diversità microbica della fillosfera svolge un ruolo importante nel mantenimento della salute delle piante e può anche influenzare la capacità delle piante di resistere allo stress ambientale1,2,3,4,5. A sua volta, la salute delle colture influisce direttamente sulla sicurezza alimentare e sulla qualità6,7. Le piante svolgono un ruolo nel funzionamento dell’ecosistema e i microbiomi associati influenzano entrambi la capacità delle piante di svolgere queste attività, sia influenzando direttamente l’ambiente stesso8. Mentre gli scienziati hanno iniziato a decifrare la funzione e la composizione della fillosfera, i processi ecologici che influenzano l’assemblaggio della comunità microbica della fillosfera non sono pienamente compresi9,10. Il microbioma della fillosfera è un ottimo sistema sperimentale per studiare l’ecologia dei microbiomi11. Queste comunità sono relativamente semplici e molti dei membri della comunità possono essere coltivati susupportidi laboratorio standard 10,12,13.

Le verdure fermentate sono un sistema in cui la struttura comunitaria della fillosfera ha conseguenze importanti. Sia nei crauti che nei kimchi, i microbi che si verificano naturalmente sulle foglie vegetali (la filosfera delle specie di Ottone) servono come inoculum per la fermentazione14,15. I batteri dell’acido lattico (LAB) sono considerati membri onnipresenti di microbiomi vegetali, tuttavia possono essere in bassa abbondanza nella fillosfera16. Una forte selezione abiotica durante la fermentazione favorisce uno spostamento nella composizione della comunità microbica che consente ai batteri dell’acido lattico di aumentare in abbondanza. Man mano che LAB cresce, producono acido lattico che crea l’ambiente acido dei prodotti vegetali fermentati17. Il legame tra la fillosfera e il fermento offre l’opportunità di utilizzare le verdure come modello per capire come sono strutturati i microbiomi.

Abbiamo sviluppato metodi per coltivare cavoli Napa privi di germi e per inocularli con specifiche comunità microbiche utilizzando bottiglie spray. Questo è un metodo economico e affidabile per inoculare uniformemente il cavolo con microbi individuali o comunità miste. Un estratto vegetale sterile (SVE) è stato sviluppato anche da tre diversi tipi di cavolo/varietà: cavolo rosso e verde (Brassica oleracea) e cavolo Napa (B. rapa). L’aggiunta di sale a queste SVI replica l’ambiente di fermentazione e consente studi sperimentali su piccola scala e relativamente ad alto velocità possibile di assemblaggio del microbioma di fermentazione. Questi metodi possono essere utilizzati per studiare l’assemblaggio della comunità microbica nella fillosfera e come le dinamiche della comunità microbica nella fillosfera possono essere collegate al successo della fermentazione vegetale.

Protocol

1. Cavoli senza germi in crescita Preparazione di attrezzature per la crescita di cavoli senza germi Pulizia dell’argilla calcificata per rimuovere le particelle di polvere fine Risciacquare l’argilla calcinata (Tabella dei materiali) almeno 3x con acqua del rubinetto; drenare l’acqua.AVVISO: L’argilla calciata produce polveri molto sottili e si consiglia di indossare una maschera protettiva (Tabella dei materiali) durante il lavaggio. Stendere l…

Representative Results

Tassi di crescita dei cavoli di NapaIl metodo di sterilizzazione dei semi è stato testato con diversi cavoli Napa (B. rapa var pekinese; Figura supplementare 1) da un certo numero di fornitori diversi e tutti sono cresciuti costantemente con tassi di crescita simili. Tuttavia, testare i metodi con diverse specie di Brassica (B. rapa: Turnip Purple Top; B. oleracea: Cairo Hybrid, Tropic Giant Hybrid; B. campestr…

Discussion

Le piante di cavolo Napa prive di germi sono state utilizzate per studiare la limitazione della dispersione dei batteri dell’acido lattico nella fillosfera del cavolo di Napa17. I cavoli Napa privi di germi possono anche essere utilizzati per testare la crescita individuale o a coppie nella fillosfera (Figura 1). I metodi per la produzione di estratto vegetale sterile sono stati testati per tre diverse varietà di cavolo: rosso, verde e Napa. Ognuna di queste SVI agis…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato sostenuto dalla sovvenzione USDA-NIFA: 2017-67013-26520. Tracy Debenport e Claire Fogan hanno fornito supporto tecnico e Ruby Ye e Casey Cosetta hanno fornito utili commenti sulle prime versioni di questo manoscritto.

Materials

1.5 mL microcentrifuge tubes VWR 20170-650
15 mL conical tubes Falcon 352096
7-way tray tray Sigma Magenta T8654
Amber Round Boston Glass Bottle GPS 712OZSPPK12BR Ordered on Amazon.com from various suppliers
Basket coffee filters If you care (unbleached paper) Purchased from Wholefoods
Bleach (mercury-free) Austin's 50-010-45
Borosilicate Glass tubes VWR 47729-586
Calcined clay Turface MVP Ordered on Amazon.com from Root Naturally 6 Quart Bags. Particle size approximately 3-5 mm
Cuisinart blender Cuisinart Cuisinart Mini-Prep Plus Food Processor, 3-Cup
Dissection scissors 7-389-A American Educational Products Ordered on Amazon.com
Ethanol VWR 89125-172
Forceps Aven 18434 Ordered on Amazon.com
Glycerol Fisher Scientific 56-81-5
KleenGuard M10 Kimberley-Clark 64240
Large plastic container Rubbermaid Ordered on Amazon.com
Light racks Gardner's Supply 39-357 full-spectrum T5 fluorescent bulbs
Magenta tm 2-way caps Millipore Sigma C1934
Man, Rogosa, and Sharpe Fisher Scientific DF0881-17-5 This media is for broth and 15 g of agar is added to make plates
Micro pH probe Thermo Scientific 8220BNWP
Micropestle Carolina 215828 Also called Pellet Pestle
MS nutrient broth Millipore Sigma M5519 Murashige and Skoog Basal Medium
NaCl Sigma Aldrich S9888
Napa cabbage seeds Johnny's Select Seeds 2814G B. rapa var pekinensis (Bilko)
Petri dish 100 mm x 15 mm Fisher FB0875712 Used to make agar plates
Phosphate buffer saline Fisher Scientific 50-842-941 Teknova
Plant tissue culture box Sigma Magenta GA-7
Serologial pipettes VWR 89130-900
Sterile dowel Puritan 10805-018 Autoclave before use to sterilize
Sterilizing 0.2 µm filter Nalgene 974103
Tryptic soy agar Fisher Scientific DF0370-17-3 This media is for broth and 15 g of agar is added to make plates
Wide orifice pipette tips Rainin 17007102
Yeast, peptone and dextrose Fisher Scientific DF0428-17-5 This media is suitable but media can also be made using yeast, peptone and dextrose, add 15 g of agar when making plates

References

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Cite This Article
Miller, E. R., O’Mara Schwartz, J., Cox, G., Wolfe, B. E. A Gnotobiotic System for Studying Microbiome Assembly in the Phyllosphere and in Vegetable Fermentation. J. Vis. Exp. (160), e61149, doi:10.3791/61149 (2020).

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