Summary

使用自动活单元成像仪的简单迁移/入侵工作流

Published: February 02, 2019
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Summary

目前的协议描述了一种实时研究癌症细胞迁移和入侵的综合方法, 为研究细胞迁移和形态提供了一个易于重现和省时的选择。

Abstract

癌细胞的移动性是开始转移的关键。因此, 对细胞运动和侵入能力的调查具有重要意义。迁移检测提供了2d 水平细胞运动的基本见解, 而入侵检测在生理上更相关, 在体内模拟体内癌细胞从原始部位脱落, 并通过细胞外基质入侵。当前协议为迁移和入侵检测提供了一个单一的工作流。与用于实时高清图像的集成自动化显微镜相机和内置分析模块相结合, 它为研究人员提供了一个省时、简单且可重复的实验选项。该协议还包括耗材的替换和供用户选择的替代分析方法。

Introduction

细胞迁移和侵袭是使人体正常功能的重要生物过程, 如伤口闭合、胎盘侵入子宫和乳腺形态发生1,2,3。人体对这些生物事件有精确而严格的控制;但是, 也有一些例外。恶性肿瘤, 例如, 能够逃脱这种保护, 表现出异常增殖, 并侵入邻近组织, 这被称为转移。转移是导致癌症相关死亡的主要原因4

乳腺癌是妇女最常见的癌症, 也是全世界发达国家妇女癌症相关死亡的第二大原因5。乳腺癌起源于由一个或多个上皮细胞层组成的导管或小叶。在正常乳房中, 上皮细胞通过膜蛋白 (如 e-钙粘蛋白和整合素 6) 相互粘附并粘附到基底膜。然而, 浸润性乳腺癌细胞已经失去了极性和细胞粘附, 并经典地进行上皮间充质转变 (emt), 并获得移动能力。外渗后, 这些细胞在细胞外基质 (ecm) 上移动, 进入血管或淋巴系统, 然后是静脉内和转移生长7。了解这种情况发生的机制具有重要意义, 因为转移是癌症相关死亡的最常见原因, 与癌细胞迁移/浸润密切相关。为了想象癌细胞的运动, 迁移和入侵检测是研究二维和三维细胞运动的理想模型。迁移直接评估细胞的运动, 而入侵则涉及与微环境的相互作用和降解生物屏障的能力。这两个过程并不完全独立, 因为移徙是入侵的要求。

研究移民和入侵的方法有几种。根据 kramer 等人的评论, 移情检测, 如伤口愈合, 围栏和微载体检测产生一个无细胞的区域, 使细胞进入, 评估区域的变化;然而, 经井和毛细血管检测是基于向吸引物8移动的细胞数量。例如, 对于入侵检测, 必须使用 ecm 凝胶或胶原蛋白建立 ecm 环境, 并可通过监测入侵区域、距离和细胞计数 (如转井检测、鸭排检测)评估3d 运动。另一种类型的入侵检测是将浸润性细胞与非侵入性细胞结合起来, 并评估浸润细胞的行为 (例如球体检测)。上述方法有其优缺点, 在相似的工作流程中, 一种易于接近、易于重复、并在相似工作流程中结合迁移分析和入侵分析的方法是有利的。

该协议描述了使用活细胞成像仪测量细胞迁移和入侵的方法。它是安装在标准细胞培养孵化器中的实时细胞监测系统。它通过对细胞或荧光目标应用适当的掩模, 根据设定的扫描间隔和测量方法拍摄高清晰度图像。迁移/入侵检测模块包括使用96针划伤工具, 该工具适用于在96孔板的细胞单层上制造均匀的划痕伤。该机制基于体外伤口愈合检测, 监测塑料或涂层表面的2d 细胞运动。还可以评估划伤伤口内其他 ecm 的入侵或3d 运动。图 1显示了一个简短的工作流。

Protocol

请注意:两个细胞系应该单独处理。如果未指定, 应将以下过程应用于单个单元格。 1. 优化伤前的细胞密度 在 t75 厘米2组织培养瓶中培养粘附细胞, 在37°c 与 5% co 2, 以10% 的胎牛血清 (fbs)、200 mm l-谷氨酰胺和2μgml 胰岛素为补充, 约80% 融合在酚类红自由的 dulbecco 的修饰鹰培养基 (dmem) 中 ,大多数癌细胞系的标准培养条件, 培养配方与细胞系有关…

Representative Results

这种迁移/入侵检测是基于伤口愈合试验, 该试验评估了细胞进入96针划伤工具创建的无细胞区域的速度。迁移和入侵检测之间的区别在于, 迁移检测测量在组织培养处理的塑料表面上移动的细胞, 以及在 ecm 凝胶上移动的入侵措施细胞。 划痕工具的设计是为了在指定的盘子里制造一致的划痕伤细胞成像仪的设计是为了拍摄实时高…

Discussion

迁移和入侵是评估癌细胞流动性的重要参数。通过使用96针划伤工具, 可以同时在2d 和3d 中进行伤口愈合检测。除了促进自动扫描, 提供稳定的细胞培养环境, 最大限度地中断, 使用96针划伤工具进行划痕检测提供了一致的划痕伤口, 使实验更加强大和重现。96孔板的格式提供了增加细胞系数量或不同药物治疗的额外选择。此外, 还可以记录细胞形态变化和动态运动, 以便进一步分析。

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Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

我们要感谢布隆菲尔德集团基金会通过亨特医学研究所 (hmri 13-02) 提供的资金支持。x. z 通过纽卡斯尔大学和 hcra 生物标志物旗舰博士奖学金获得 apa 奖学金。

Materials

0.5% trypsin-EDTA solution (10x) ThermoFisher Scientific 30028-02 Dilute to 2x in DPBS
Countess II FL Automated Cell Counter ThermoFisher Scientific AMQAX1000 Automated cell counter
Detergent 1 (Alconox) Sigma-Aldrich 242985 0.5% working concentration
Detergent 2 (Virkon S) VetProduct DIRECT 1% working concentration
Dulbecco’s Modified Eagle Medium, no phenol-red ThermoFisher Scientific 21063-045 Supplimented with 10% FBS, 200 mM L-glutamine, 2 μg/ml insulin
ECM Gel (matrigel) Sigma-Aldrich E6909 Growth-factor reduced, phenol red free
Essen ImageLock 96-well plate, flat bottom Essen 4379
EVE Counting slides BioTools EVS-50
Fetal bovine serum (FBS) Bovogen Biologicals SFBS-F-500ml
IncuCyte 96-well scratch wound cell invasion accessories Essen 4444 Including CoolBox, 2x CoolSink
IncuCyte Cell migration kit Essen 4493 Including the 96-well pin block, 2x wash boats and the software
IncuCyte ZOOM Essen Live cell analysis system
Insulin solution human Sigma-Aldrich 19278-5ML
L-glutamine solution (100x) ThermoFisher Scientific 25030-091
Tissue culture flask, 75 cm2 growth area Greiner Bio-One 658175

References

  1. Graham, C. H., Lala, P. K. Mechanisms of placental invasion of the uterus and their control. Biochemistry and Cell Biology. 70, 867-874 (1992).
  2. Affolter, M., Zeller, R., Caussinus, E. Tissue remodelling through branching morphogenesis. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 10, 831-842 (2009).
  3. Brugues, A., et al. Forces driving epithelial wound healing. Nature Physics. 10, 683-690 (2014).
  4. Weigelt, B., Peterse, J. L., van’t Veer, L. J. Breast cancer metastasis: markers and models. Nature Reviews Cancer. 5, 591-602 (2005).
  5. Kalluri, R., Weinberg, R. A. The basics of epithelial-mesenchymal transition. Journal of Clinical Investigation. 119, 1420-1428 (2009).
  6. Scully, O. J., Bay, B. H., Yip, G., Yu, Y. Breast cancer metastasis. Cancer Genomics Proteomics. 9, 311-320 (2012).
  7. Kramer, N., et al. In vitro cell migration and invasion assays. Mutation Research/Reviews in Mutation Research. 752, 10-24 (2013).
  8. Holliday, D. L., Speirs, V. Choosing the right cell line for breast cancer research. Breast Cancer Research. 13, 215 (2011).
  9. Clark, A. G., Vignjevic, D. M. Modes of cancer cell invasion and the role of the microenvironment. Current Opinion in Cell Biology. 36, 13-22 (2015).

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Cite This Article
Zhang, X., Morten, B. C., Scott, R. J., Avery-Kiejda, K. A. A Simple Migration/Invasion Workflow Using an Automated Live-cell Imager. J. Vis. Exp. (144), e59042, doi:10.3791/59042 (2019).

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