Summary

マウス胎児肝臓培養システムは、ターミナル赤血球の初期および後期段階での標的遺伝子の機能を分析する

Published: September 09, 2014
doi:

Summary

私たちは、端末赤血球生成の初期および後期段階を解剖インビトロマウス胎児肝臓赤芽球培養系を提示。このシステムは、異なる発生段階における特定の遺伝子の機能解析を容易にします。

Abstract

赤血球生成が急速に形成単位赤血球コロニー(CFU-ES)を分周して、その後、コミット赤血球バースト形成単位(BFU-ES)で始まる動的なプロセスを伴う。 CFU-ESの後、細胞を形態学的に認識され、一般的には、端末赤芽球と呼ばれる。端末赤血球生成の研究のための課題の一つは、時系列的に遺伝子の機能を分析するための実験的アプローチの欠如である。このプロトコルでは、端末赤血球形成の初期及び後期段階での遺伝子機能を決定するためのユニークな戦略を記載している。このシステムでは、マウス胎児肝臓TER119(成熟赤血球細胞マーカー)負の赤芽球を精製し、目的の遺伝子のcDNAや小さなヘアピンRNA(shRNAを)の外因性発現で形質導入。細胞は、外因性cDNAまたはshRNAを可能にしながら、12時間それらの前駆段階を維持するためにエリスロポエチン(EPO)以外の成長因子を含む培地で培養し、その後発現させた。外因性遺伝物質がすでに発現させながら、細胞は、細胞分化および増殖を誘導するために12時間後のEpo培地に変更した。このプロトコルは、端末赤血球生成の初期段階で遺伝子機能の解析を容易にします。後期端末赤血球形成を研究するために、細胞を直ちに形質導入​​後のEpo培地中で培養した。このように、細胞は、既に形質導入​​された遺伝物質を発現した端末赤血球形成の後期に分化させた。私たちは、端末赤血球生成のさまざまな段階での詳細な遺伝子機能を理解する助けとなるこの戦略の一般的な適用を推奨します。

Introduction

赤血球生成は、赤血球を成熟多能造血幹細胞の分化の過程である。この段階的なプロセスは、コミットされた赤血球バースト形成単位(BFU-ES)、急速に分裂赤血球コロニー形成単位(CFU-ES)、及び形態学的に認識可能な赤芽球1,2の形成を含む。 CFU-Eの前駆細胞からの端末赤血球生成は、シーケンシャルエリスロポエチン依存性および非依存性のステージ2,3を伴う。端末赤血球形成の初期段階では、エリスロポエチン(EPO)は、細胞表面上の受容体に結合し、細胞アポトーシスを防止し、迅速な細胞分裂および遺伝子発現1,4を促進する下流のシグナル伝達経路のシリーズを誘導する。端末赤血球生成の後期段階では、赤芽球は、高度に凝縮した核5の端子分裂停止、クロマチンおよび核の凝縮、および押出を受ける。

端末の理解赤血球生成が大幅にin vitroおよびin vivoで 6-9マウスモデルにおけるいくつか使用の成功によるところが大きい、これ過去数十年で改善されています。これらのモデルの中でも、マウス胎児肝芽球のインビトロ培養の細胞の精製、速い増殖および分化の容易さを含む多くの利点を提供し、人間の赤血球生成10,11に近い模倣。このシステムでは、マウス胎児肝臓からの赤血球前駆細胞の多数が容易にTER119の単一ステップ精製(成熟赤血球系細胞のマーカー)は、負の赤芽球を単離することができる。赤芽球の二日間の培養の間、これらの細胞の分化は、トランスフェリン受容体(CD71)の表面発現およびTER119抗原12に基づいて、フローサイトメトリー分析によってモニターすることができる。また、末端分化赤芽球の除核は、DNAメーカー(ヘキスト33342)によって検出することができる13。さらに、精製された前駆細胞は、遺伝的に赤血球生成11,13,14上の遺伝子発現の機能の機構研究を容易にする、目的の遺伝子のcDNAまたは小ヘアピンRNA(shRNAは)の外因性発現によって改変することができる。

それは、端末赤血球形成の異なる段階での遺伝子機能を特徴付けることは困難であるので、一方で、高速細胞増殖速度は、両刃の剣であることができる。ほとんどの場合、それは、cDNAまたはshRNAが発現した時点で以降の端末赤血球形成の初期段階における特定の遺伝子の機能は、細胞が既に初期段階に合格したかどうかを決定することは困難である。この問題を解決するために、私たちは、端末赤血球生成の初期および後期段階を詳細に分析するために独自のシステムを開発しました。端末赤血球形成の初期段階では、遺伝的に改変されTER119負赤芽球は、Epoを含まない培地中で培養したが、幹細胞因子(SCF)、IL-6およびFLT3を含むリガンドは、それらの前駆状態を維持し、数13に形質導入されたcDNAまたはshRNAを可能にする。細胞は、細胞の増殖および分化を誘導するために12時間後にEpoを含む培地に変更した。細胞が分化し始めたときにこのように、形質導入されたcDNAまたはshRNAは、既に発現した。端末赤血球生成の後期段階では、TER119負の赤芽球は、すぐ​​に導入後エポ含む培地で培養した。従って、一つの端末赤血球形成の後期段階において、目的の遺伝子の機能を分析することができる。要約すると、本システムの広範な適用は、端末赤血球形成の異なる段階での遺伝子機能を分析に役立つだろう。

Protocol

このプロトコルに記載される実験は、ノースウェスタン大学施設内動物管理使用委員会によって定められたガイドラインおよび規制に従って行った。 培養液の調製フィブロネクチン溶液を調製する。ヒトフィブロネクチン(1mg)を1バイアルに1mlの水を追加します。撹拌せずに30分間組織培養フード内の溶液のままにしておきます。 20μg/ mlの最終濃度を作るために…

Representative Results

図1は、実験的な戦略の概要を説明します。プロトコルは、端末赤血球生成の初期および後期段階でのシグナル伝達分子の機能を標的とするための2つの独立した条件で構成されています。 TER119陰性胎児肝芽球は、E13.5マウス胎児から精製した。胎児肝臓赤血球系細胞の前および精製後のフローサイトメトリー分析により、精製が( 図2Aおよび2B)効率的?…

Discussion

ここでは、時系列的に、マウス胎児肝臓端末赤血球生成を分析する独自のシステムを提示する。異なる培養条件の適用を通じて、首尾よく初期および後期段階での端末赤血球生成を解剖した。これは、複数の機能を有する遺伝子のメカニズムを決定するために特に重要である。例えば、RacのGTPアーゼは、端末赤血球生成の各段階において重要な役割を果たしている。端末赤血球生成に影響を?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究は、NIH R00HL102154によってサポートされ、P智への血液学者賞のアメリカの社会ました。

Materials

Iscove's Modified Dulbecco's MediumIMDM (IMDM) Gibco 12440-053
Fetal bovine serum (FBS) GEMINI Bio-product 700-102P
b-mecaptoethanol Sigma M6250 0.1 M in IMDM,  4℃stock
Penicillin-Streptomycin solution Hyclone SV30010 100 X
L-Glutamine Hyclone SH30034.01 200 mM
Stem cell factor (SCF) STEMCELL TECH 2630 100 ng/ul, -20℃ stock
Mouse FIT3 Ligand (Flt-3L) BD Biosciences  14-8001-80
Mouse Recombinant Interleukin-6 (IL-6)  GEMINI Bio-product 300-327P
fibronectin BD Biosciences  354008
Bovine Serum Albumin (BSA) STEMCELL TECH 9300 10% stock in IMDM
Insulin solution, human Sigma I9278 4℃ stock
holo-transferrin human Sigma T0665 50 mg/ml in Water -20℃ stock
Erythropoietin(Epo) PROCRIT NOC 59676-303-00 3,000 U/ml stock
Streptavidin particles Plus BD Pharmingen 557812
EasySep Magnet STEMCELL TECH 18000
Polypropylene Round-Bottom Tube, 5 ml FALCON 352063

References

  1. Hattangadi, S. M., Wong, P., Zhang, L., Flygare, J., Lodish, H. F. From stem cell to red cell: regulation of erythropoiesis at multiple levels by multiple proteins, RNAs, and chromatin modifications. Blood. 118 (24), 6258-6268 (2011).
  2. Richmond, T. D., Chohan, M., Barber, D. L. Turning cells red: signal transduction mediated by erythropoietin. Trends in cell biology. 15 (3), 146-155 (2005).
  3. Eshghi, S., Vogelezang, M. G., Hynes, R. O., Griffith, L. G., Lodish, H. F. Alpha4beta1 integrin and erythropoietin mediate temporally distinct steps in erythropoiesis: integrins in red cell development. The Journal of cell biology. 177 (5), 871-880 (2007).
  4. Koury, M. J., Bondurant, M. C. Maintenance by erythropoietin of viability and maturation of murine erythroid precursor cells. Journal of cellular physiology. 137 (1), 65-74 (1988).
  5. Ji, P., Yeh, V., Ramirez, T., Murata-Hori, M., Lodish, H. F. Histone deacetylase 2 is required for chromatin condensation and subsequent enucleation of cultured mouse fetal erythroblasts. Haematologica. 95 (12), 2013-2021 (2010).
  6. Dumitriu, B., et al. Sox6 cell-autonomously stimulates erythroid cell survival, proliferation, and terminal maturation and is thereby an important enhancer of definitive erythropoiesis during mouse development. Blood. 108 (4), 1198-1207 (2006).
  7. Rector, K., Liu, Y., Van Zant, G. Comprehensive hematopoietic stem cell isolation methods. Methods in molecular biology. 976, 1-15 (2013).
  8. Rossi, L., Challen, G. A., Sirin, O., Lin, K. K., Goodell, M. A. Hematopoietic stem cell characterization and isolation. Methods in molecular biology. 750, 47-59 (2011).
  9. Choi, H. S., Lee, E. M., Kim, H. O., Park, M. I., Baek, E. J. Autonomous control of terminal erythropoiesis via physical interactions among erythroid cells. Stem cell research. 10 (3), 442-453 (2013).
  10. Bhatia, H., et al. Short-chain fatty acid-mediated effects on erythropoiesis in primary definitive erythroid cells. Blood. 113 (25), 6440-6448 (2009).
  11. Zhang, J., Socolovsky, M., Gross, A. W., Lodish, H. F. Role of Ras signaling in erythroid differentiation of mouse fetal liver cells: functional analysis by a flow cytometry-based novel culture system. Blood. 102 (12), 3938-3946 (2003).
  12. Socolovsky, M., et al. Ineffective erythropoiesis in Stat5a(-/-)5b(-/-) mice due to decreased survival of early erythroblasts. Blood. 98 (12), 3261-3273 (2001).
  13. Ji, P., Jayapal, S. R., Lodish, H. F. Enucleation of cultured mouse fetal erythroblasts requires Rac GTPases and mDia2. Nature cell biology. 10 (3), 314-321 (2008).
  14. Chida, D., Miura, O., Yoshimura, A., Miyajima, A. Role of cytokine signaling molecules in erythroid differentiation of mouse fetal liver hematopoietic cells: functional analysis of signaling molecules by retrovirus-mediated expression. Blood. 93 (5), 1567-1578 (1999).
  15. Patel, V. P., Lodish, H. F. A fibronectin matrix is required for differentiation of murine erythroleukemia cells into reticulocytes. The Journal of cell biology. 105 (6 Pt 2), 3105-3118 (1987).
  16. Udupa, K. B., Lipschitz, D. A. Endotoxin-induced suppression of erythropoiesis: the role of erythropoietin and a heme synthesis stimulating factor. Blood. 59 (6), 1267-1271 (1982).
  17. Koury, M. J., Sawyer, S. T., Brandt, S. J. New insights into erythropoiesis. Current opinion in hematology. 9 (2), 93-100 (2002).

Play Video

Cite This Article
Zhao, B., Mei, Y., Yang, J., Ji, P. Mouse Fetal Liver Culture System to Dissect Target Gene Functions at the Early and Late Stages of Terminal Erythropoiesis. J. Vis. Exp. (91), e51894, doi:10.3791/51894 (2014).

View Video