Summary

Cultures primaires d’astrocytes et de microglies de rat et leur utilisation dans l’étude de la sclérose latérale amyotrophique

Published: June 23, 2022
doi:

Summary

Nous présentons ici un protocole sur la façon de préparer des cultures primaires de cellules gliales, d’astrocytes et de microglies à partir de cortex de rat pour l’imagerie vidéo time-lapse de Ca2+ intracellulaire pour la recherche sur la physiopathologie de la sclérose latérale amyotrophique dans le modèle de rat hSOD1G93A .

Abstract

Ce protocole montre comment préparer des cultures primaires de cellules gliales, d’astrocytes et de microglies à partir des cortex de rats Sprague Dawley et comment utiliser ces cellules dans le but d’étudier la physiopathologie de la sclérose latérale amyotrophique (SLA) dans le modèle hSOD1G93A du rat. Tout d’abord, le protocole montre comment isoler et cultiver les astrocytes et les microglies à partir de cortex postnatal de rat, puis comment caractériser et tester la pureté de ces cultures par immunocytochimie en utilisant le marqueur de la protéine acide fibrillaire gliale (GFAP) des astrocytes et le marqueur microglial de la molécule ionisée liant le calcium 1 (Iba1). Dans l’étape suivante, des méthodes sont décrites pour la charge de colorant (Fluo 4-AM sensible au calcium) des cellules en culture et les enregistrements des changements Ca2+ dans des expériences d’imagerie vidéo sur des cellules vivantes.

Les exemples d’enregistrements vidéo sont les suivants: (1) cas d’imagerie Ca2+ d’astrocytes en culture exposés de manière aiguë à l’immunoglobuline G (IgG) isolée chez des patients atteints de SLA, montrant une réponse caractéristique et spécifique par rapport à la réponse à l’ATP démontrée dans la même expérience. Les exemples montrent également une augmentation transitoire plus prononcée de la concentration intracellulaire de calcium évoquée par les IgG de la SLA dans les astrocyteshSOD1 G93A par rapport aux témoins non transgéniques; (2) imagerie Ca 2+ d’astrocytes en culture lors d’un épuisement des réserves de calcium par la thapsigargine (Thg), un inhibiteur non compétitif de l’ATPase du réticulum endoplasmiqueCa2+, suivie d’une entrée de calcium opérée en magasin provoquée par l’ajout de calcium dans la solution d’enregistrement, qui démontre la différence entre le fonctionnement du magasin Ca2+ dans hSOD1G93A et dans les astrocytes non transgéniques; (3) L’imagerie Ca 2+ de la microglie en culture montrant principalement un manque de réponse aux IgG SLA, tandis que l’application d’ATP a provoqué un changement Ca2+. Cet article met également l’accent sur les mises en garde et les mises en garde possibles concernant la densité cellulaire critique et la pureté des cultures, le choix de la concentration correcte du colorant Ca2+ et les techniques de chargement du colorant.

Introduction

Les techniques de culture cellulaire ont donné lieu à de nombreux progrès dans divers domaines de la neurophysiologie cellulaire dans la santé et la maladie. En particulier, les cultures de cellules primaires, fraîchement isolées du tissu neuronal d’un animal de laboratoire, permettent à l’expérimentateur d’étudier de près le comportement de diverses cellules dans différents milieux biochimiques et configurations physiologiques. L’utilisation de différents indicateurs physiologiques fluorescents tels que les colorants sensibles au Ca2+ en combinaison avec la microscopie vidéo time-lapse permet de mieux comprendre les processus biophysiques et biochimiques cellulaires en temps réel.

La SLA est une maladie neurodégénérative dévastatrice qui affecte les motoneurones supérieurs et inférieurs1. La maladie présente une pathogenèse complexe de type familial mais surtout de forme sporadique (90% des cas)2. Il est bien connu que les mécanismes autonomes non cellulaires contribuent à la physiopathologie de la SLA, principalement en raison du rôle essentiel des cellules gliales3. La SLA est également bien caractérisée comme une maladie neuroinflammatoire avec implication de facteurs humoraux et cellulaires de l’inflammation.

L’immunoglobuline G est largement utilisée comme marqueur moléculaire de la SLA et d’autres maladies neurodégénératives. L’étude du taux sérique de ce marqueur peut indiquer la présence et le stade de la neuroinflammation dans la maladie 4,5,6, tandis que sa présence dans le liquide céphalorachidien peut indiquer une brèche de la barrière hémato-encéphalique7. Les IgG ont également été identifiées comme des dépôts dans les motoneurones de la moelle épinière de patients atteints de SLA7. Néanmoins, cette approche a montré quelques incohérences dans la corrélation du taux d’IgG avec le stade et les caractéristiques de la maladie6.

Les IgG isolées à partir des sérums de patients atteints de SLA (IgG SLA) peuvent induire une réponse calcique dans les astrocytesnaïfs 8 et la libération de glutamate dans les neurones, ce qui indique un effet excitotoxique – une caractéristique de la pathologie de la SLA9. Cependant, des études sur le modèle de rat hSOD1G93A ALS (contenant plusieurs copies de la mutation humaine SOD110) ont montré un certain nombre de marqueurs du stress oxydatif dans les cellules neurogliales en culture11, les tissus 12,13,14 ou les animaux vivants 13. Il est à noter que les astrocytes cultivés à partir du modèle de rat SLA étaient plus sujets au stress oxydatif induit par le peroxyde que les astroglies de compagnons de portée non transgéniques11.

Les cellules microgliales en culture sont affectées par les IgG de la SLA d’une manière moins apparente. À savoir, une lignée cellulaire microgliale BV-2 a montré une augmentation du signal provenant de marqueurs fluorescents du stress oxydatif en réponse à l’application de seulement 4/11 échantillons de patients atteints d’IgG SLA15. Il est bien connu que la microglie participe à de nombreuses pathologies neuroinflammatoires, ajoutant au stress oxydatif et à la phase de progression tardive dans le mécanisme autonome non cellulaire de la SLA16,17. Néanmoins, les données avec les IgG de la SLA ont indiqué que ces cellules peuvent ne pas être aussi réactives que les astrocytes à ces facteurs humoraux de l’inflammation de la SLA. Plusieurs études ont été menées avec des astrocytes primaires à partir de modèles murins de SLA, non seulement chez les petits mais aussi chez les animaux symptomatiques, soit sur le cerveau, soit sur la moelle épinière 18,19,20,21. Cela est également vrai pour les cultures primaires microgliales, bien que dans une moindre mesure que les astrocytes et principalement à partir de régions du cerveau au stade embryonnaire22,23,24.

Nous utilisons l’imagerie vidéo accélérée de Ca2+ sur des cellules en culture principalement comme moyen de suivre les transitoires intracellulaires de cet ion en tant que marqueur physiologique de l’excitotoxicité. Ainsi, par la caractérisation biophysique de ces transitoires (amplitude, aire sous transitoire, temps de montée, fréquence) le chercheur peut obtenir des paramètres diagnostiques expérimentaux à partir de divers modèles cellulaires de neurodégénérescence. Cette technique offre donc l’avantage d’une évaluation physiologique quantitative des IgG en tant que biomarqueurs de la maladie. Il existe une abondante littérature sur le rôle des IgG et du Ca2+ dans l’induction de la SLA. La plupart de ces études ont été réalisées en induisant la SLA en injectant des IgG à des patients 25,26,27,28,29, qui ont ensuite montré une élévation intracellulaire du Ca 2+ et des dépôts d’IgG. Une série d’études a exploré l’effet des IgG de la SLA sur la synapse motrice in vitro30,31,32. Dans le contexte ci-dessus, la technique présentée ici met l’accent sur les cellules gliales en tant qu’acteurs importants du mécanisme autonome non cellulaire de la SLA et quantifie leur réponse excitotoxique potentielle aux IgG en tant que facteurs humoraux de la neuroinflammation. Cette approche peut avoir une application plus large dans le test d’autres facteurs humoraux tels que les sérums entiers, le LCR ou les cytokines dans différents systèmes de culture cellulaire et dans des modèles cellulaires d’inflammation générale.

Cet article décrit comment préparer des cultures primaires de cellules gliales, d’astrocytes et de microglies à partir des cortex de rats Sprague Dawley et comment utiliser davantage ces cellules pour étudier la physiopathologie de la SLA avec des IgG dérivées de sérums de patients. Les protocoles sont détaillés pour le chargement de colorant des cellules en culture (Figure 1) et les enregistrements des changements de Ca2+ dans les expériences d’imagerie vidéo accélérée. Des exemples d’enregistrements vidéo montreront comment les cellules gliales réagissent aux IgG de la SLA par rapport à l’ATP, ce dernier activant les récepteurs de la membrane purinergique. Pour la première fois, on montre un exemple sur la façon dont les astrocytes isolés du cerveau de rat hSOD1G93A de la SLA réagissent avec une réponse Ca 2+ plus prononcée aux IgG de la SLA par rapport aux témoins non transgéniques et comment relier ce processus aux différences dans le fonctionnement du magasin Ca2+. On montre également un exemple d’imagerie calcique dans les cellules microgliales fortement défiées par les IgG SLA, avec seulement une réponse modeste du calcium intracellulaire.

Protocol

Toutes les expériences ont été réalisées conformément aux directives de l’UE sur la protection des animaux à des fins scientifiques et avec l’autorisation de la Commission éthique de la Faculté de biologie de l’Université de Belgrade (numéro d’approbation EK-BF-2016/08). En ce qui concerne le matériel du patient (sérum pour les IgG), il a été recueilli pour un examen clinique de routine avec le consentement éclairé du patient conformément au Code de déontologie de l’Association médicale mond…

Representative Results

Caractérisation de différents types de cellules gliales en cultureIl faut généralement 15 à 21 jours pour produire des astrocytes pour les expériences, tandis que les cellules microgliales prennent 10 à 15 jours pour se développer. Une immunocoloration a été effectuée pour évaluer la pureté cellulaire de la culture. La figure 1 montre l’expression du double marquage du marqueur astrocytaire GFAP et du marqueur microglial Iba1 dans les cultures respectives….

Discussion

Cet article présente la méthode de culture cellulaire primaire comme un outil rapide et « sur le budget » pour étudier différents aspects de la (physionomie) cellulaire tels que la SLA dans le modèle hSOD1G93A du rat. La technique convient donc à des études au niveau unicellulaire qui peuvent être extrapolées et étudiées plus avant à un niveau d’organisation plus élevé (c.-à-d. dans des tranches de tissu ou chez un animal vivant). La culture cellulaire en tant que technique, cependant, a q…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par le contrat n ° 451-03-9/2021-14 / 200178 du ministère de l’Éducation, des Sciences et du Développement technologique de la République de Serbie, le projet FENS – NENS Education and Training Cluster « Trilateral Course on Glia in Neuroinflammation » et la subvention EC H2020 MSCA RISE #778405. Nous remercions Marija Adžić et Mina Perić pour avoir fourni les images immunohistochimiques et Danijela Bataveljić pour leur aide dans la rédaction de documents.

Materials

15 mL tube Sarstedt, Germany 62 554 502
2 mL tube Sarstedt, Germany 72.691
21 G needle Nipro, Japan HN-2138-ET
23 G needle Nipro, Japan HN-2338-ET
5 mL syringe Nipro, Japan SY3-5SC-EC
6 mm circular glass coverslip Menzel Glasser, Germany 630-2113
60 mm Petri dish ThermoFisher Sientific, USA 130181
ATP Sigma-Aldrich, Germany A9062
AxioObserver A1 Carl Zeiss, Germany
Bovine serum albumine Sigma-Aldrich, Germany B6917
Calcium chloride Sigma-Aldrich, Germany 2110
Centrifuge Eppendorf, Germany
DAPI Sigma-Aldrich, Germany 10236276001
D-glucose Sigma-Aldrich, Germany 158968
DMEM Sigma-Aldrich, Germany D5648
Donkey-anti goat AlexaFluor 647 IgG antibody Invitrogen, USA A-21447
Donkey-anti mouse AlexaFluor 488 IgG antibody Invitrogen, USA A-21202
EDTA Sigma-Aldrich, Germany EDS-100G
EGTA Sigma-Aldrich, Germany E4378
”evolve”-EM 512 Digital Camera System Photometrics, USA
Fetal bovine serum (FBS) Gibco, ThermoFisher Scientific, USA 10500064
Fiji ImageJ Software Open source under the GNU General Public Licence
FITC filter set Chroma Technology Inc., USA
Fluo-4 AM Molecular Probes, USA F14201
Goat anti-Iba1 Fujifilm Wako Chemicals, USA 011-27991
HEPES Biowest, France P5455
HighSpeed Solution Exchange System ALA Scientific Instruments, USA
Incubator Memmert GmbH + Co. KG, Germany
Magnesium chloride Sigma-Aldrich, Germany M2393
Matlab software Math Works, USA
Mouse anti-GFAP Merck Millipore, USA MAB360
Mowiol 40-88 Sigma-Aldrich, Germany 324590
Normal donkey serum Sigma-Aldrich, Germany D9663
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich, Germany 158127
Penicilin and Streptomycin ThermoFisher Sientific, USA 15140122
Poly-L-lysine Sigma-Aldrich, Germany P5899
Potassium chloride Sigma-Aldrich, Germany P5405
Potassium dihydrogen phosphate Carlo Erba Reagents, Spain 471686
Shaker DELFIA PlateShake PerkinElmer Life Sciencies, USA
Sodium bicarbonate Sigma-Aldrich, Germany S3817
Sodium chloride Sigma-Aldrich, Germany S5886
Sodium phosphate dibasic heptahydrate Carl ROTH GmbH X987.2
Sodium pyruvate Sigma-Aldrich, Germany P5280
Thapsigargine Tocris Bioscience, UK 1138
Triton X – 100 Sigma-Aldrich, Germany T8787
Trypsin Sigma-Aldrich, Germany T4799
Vapro Vapor Pressure Osmometer 5520 Wescor, ELITechGroup Inc., USA
ViiFluor Imaging System Visitron System Gmbh, Germany
VisiChrome Polychromator System Visitron System Gmbh, Germany
VisiView high performance setup Visitron System Gmbh, Germany
Xenon Short Arc lamp Ushio, Japan

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Cite This Article
Milićević, K., Korenić, A., Milošević, M., Andjus, P. R. Primary Cultures of Rat Astrocytes and Microglia and Their Use in the Study of Amyotrophic Lateral Sclerosis. J. Vis. Exp. (184), e63483, doi:10.3791/63483 (2022).

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