Summary

Флуоресцентная микроскопия для интернализации АТФ, опосредованной макропиноцитозом в опухолевых клетках человека и опухоле-ксенотрансплантированных мышах

Published: June 30, 2021
doi:

Summary

Мы разработали воспроизводимый метод визуализации интернализации негидролизуемого флуоресцентного аденозинтрифосфата (АТФ), суррогата АТФ, с высоким клеточным разрешением. Мы подтвердили наш метод, используя независимые анализы in vitro и in vivo – клеточные линии опухоли человека и иммунодефицитные мыши, ксенотрансплантированные опухолевой тканью человека.

Abstract

Было показано, что аденозинтрифосфат (АТФ), включая внеклеточную АТФ (эАТФ), играет значительную роль в различных аспектах опухолевого генеза, таких как лекарственная устойчивость, эпителиально-мезенхимальный переход (ЭМТ) и метастазирование. Внутриопухолевая эАТФ в 10-3-10-4 раза выше по концентрации, чем в нормальных тканях. В то время как eATP функционирует как мессенджер для активации пуринергической сигнализации для индукции EMT, он также интернализуется раковыми клетками через повышенный макропиноцитоз, специфический тип эндоцитоза, для выполнения широкого спектра биологических функций. Эти функции включают в себя обеспечение энергией биохимических реакций, требующих АТФ, донорство фосфатных групп во время трансдукции сигнала и облегчение или ускорение экспрессии генов в качестве транскрипционного кофактора. АТФ легко доступен, и его изучение в раке и других областях, несомненно, увеличится. Тем не менее, исследование eATP остается на ранней стадии, и нерешенные вопросы остаются без ответа, прежде чем важные и универсальные действия, выполняемые eATP и интернализованной внутриклеточной АТФ, могут быть полностью разгаданы.

Вклад лабораторий этих авторов в эти ранние исследования eATP включает микроскопическую визуализацию негидролизуемых флуоресцентных АТФ в сочетании с высоко- и низкомолекулярным флуоресцентным декстраном, которые служат индикаторами макропиноцитоза и эндоцитоза, а также различными ингибиторами эндоцитоза для мониторинга и характеристики процесса интернализации eATP. Этот метод визуализации был применен к опухолевым клеточным линиям и иммунодефицитным мышам, ксенотрансплантированным с раковыми опухолями человека, для изучения интернализации eATP in vitro и in vivo. В данной работе описываются эти протоколы in vitro и in vivo с акцентом на модификацию и тонкую настройку условий анализа, чтобы макропиноцитоз-/эндоцитоз-опосредованные eATP анализы интернализации eATP могли быть успешно выполнены в различных системах.

Introduction

Оппортунистическое поглощение внутриопухолевых внеклеточных (т.е.) питательных веществ недавно было названо ключевой отличительной чертой метаболизма рака1. Одним из таких важных питательных веществ является АТФ, так как концентрация т.е. АТФ в 103 и10 4 раза выше, чем та, что содержится в нормальных тканях, в диапазоне от нескольких сотен мкМ до низкихмМ 2,3,4,5. Как ключевая энергетическая и сигнальная молекула, АТФ играет центральную роль в клеточном метаболизме в раковых и здоровых клетках6,7,8. Внеклеточный АТФ не только участвует в росте раковых клеток, но и способствует лекарственной устойчивости9. Недавно были выявлены ранее непризнанные функции АТФ, такие как гидротропная активность, что связано с участием АТФ в таких заболеваниях, как болезнь Альцгеймера10. Действительно, кажется, что наше понимание АТФ и его функций в раковых клетках, здоровых клетках и других больных клетках далеко не полное. Однако из-за нестабильности АТФ и высокой скорости оборота в клетках технически сложно контролировать движение АТФ через клеточную мембрану и в клетку.

Для решения этой проблемы и восполнения потребности данной области исследований был разработан метод, в котором негидролизуемая флуоресцентная АТФ (NHF-АТФ)(Рисунок 1)использовалась в качестве суррогата для визуализации интернализации АТФ и наблюдения внутриклеточной пространственной локализации интернализованной АТФ, как in vitro, так и in vivo11,12 . Было продемонстрировано, что NHF-АТФ заменяет эндогенную АТФ для исследования движения АТФ через клеточные мембраны животных, как в линиях раковых клеток, так и в опухолевой ткани человека, ксенотрансплантированной на иммунодефицитных мышах11,12. Более того, введение ингибиторов макропиноцитоза клеткам блокировало интернализацию eATP, предполагая, что внутриклеточное поглощение eATP включает макропиноцитотический механизм9,11,12. Этот протокол допускает иммунобабелирование против клеточных специфических белков и, таким образом, идентификацию того, какой тип клеток интернализует NHF-АТФ. Используя in vivo опухолевые ксенотрансплантаты и микроскопию высокого разрешения, NHF-АТФ может быть визуализирована пространственно по всему образцу ткани и даже в пределах одной клетки. Эти методы также позволяют проводить количественный анализ, такой как процент поглощения клеток, количество макропиноцитарных везикул и кинетика интернализации. В данной работе подробно описывается, как NHF-АТФ, работающий отдельно или вместе с флуоресцентным декстрансом 13, 14, 15, 16 эндоцитозом или вместе с эндоцитозом-индикаторным декстрансом13,14,15,16,может быть использован в различных экспериментальных условиях для изучения интернализации АТФ и внутриклеточной локализации после интернализации в клетках.

Figure 1
Рисунок 1:Структуры негидролизуемых флуоресцентных АТФ и тетраметилродамина, меченных высокомолекулярным флуоресцентным декстраном. (А)Структура NHF-АТФ. (B)Схематическое изображение HMWFD. Сокращения: АТФ = аденозинтрифосфат; NHF-АТФ = негидролизуемый флуоресцентный АТФ; TMR = тетраметилродамин; HMWFD = высокомолекулярный флуоресцентный декстран. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Protocol

Все процедуры, описанные в настоящем документе, были выполнены в соответствии с IACUC Университета Огайо и NIH. 1. Выбор негидролизуемых флуоресцентных АТФ (NHF-АТФ) и декстранса Выбор флуорофор-конъюгированных NHF-АТФ(Рисунок 1A)и индикаторов эндоцитоза, вы?…

Representative Results

Исследование in vitro Внутриклеточная интернализация NHF-АТФ была продемонстрирована совместной локализацией NHF-ATP с HMWFD или LMWFD(рисунок 4). Успех этой процедуры в первую очередь зависит от использования соответствующих концентраций NHF-АТФ и декстра?…

Discussion

Разработан метод пространственного, временного и количественного анализа клеточной интернализации негидролизуемых АТФ. Этот метод широко применим для использования в различных биологических системах, включая различные опухолевые модели, для которых мы предоставляем технические ин…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Криосекционирование проводилось на месте в гистопатологическом ядре Университета Огайо. Эта работа была частично поддержана стартовыми фондами (Ohio University College of Arts & Sciences) для C Nielsen; Грант NIH R15 CA242177-01 и награда RSAC X Chen.

Materials

A549 cells, human lung epithelial, carcinoma National Cancer Institute n/a Less expensive source
Acetone Fisher Scientific S25904
Aluminum foil, Reynolds Grainger 6CHG6
Aqueous Mounting Medium, ProLong Gold Anti-fade Reagent ThermoFisher P36930
ATP analog Jena Biosciences NK-101
Autoclave, sterilizer Grainger 33ZZ40
Blades, cryostat, high profile C. L. Sturkey, Inc. DT554550
Calipers, vernier Grainger 4KU77
Cell medium, Ham's Nutrient Mixture F12, serum-free Millipore Sigma 51651C-1000ML
Centrifuge, refrigerated with swinging bucket rotor Eppendorf 5810R
Chloroform Acros Organics 423555000
Conical tube, 15 mL VWR 21008-216
Conical tube, 50 mL VWR 21008-242
Coverslips, glass, 12 mm Corning 2975-245
Cryostat, Leica CM1950 Leica Biosystems CM1950
Delicate task wipe, Kim Wipes Kimberly-Clark 34155
Dextran, Lysine fixable, High Molecular Weight (HMW) Invitrogen D1818 MW = 70,000, Tetramethylrhodamine
Dextran, Neutral, High Molecular Weight (HMW) Invitrogen D1819
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM), serum-free Fisher Scientific 11885076
Dry ice Local delivery Custom order
Epifluorescent imaging system, Nikon NiU and Nikon NIS Elements acquisition software Nikon Custom order
Ethanol Fisher Scientific BP2818-4
Fetal bovine serum (FBS) ThermoFisher 16000044
Forceps, Dumont #7, curved Fine Science Tools 11274-20
Forceps, Dumont #5, straight Fine Science Tools 11254-20
Gloves (small, medium, large) Microflex N191, N192, N193
Gloves, MAPA Temp-Ice 700 Thermal (for handling dry ice) Fisher Scientific 19-046-563
Hemocytometer Daigger EF16034F EA
Incubator, cell culture Eppendorf Galaxy 170 S
Labelling tape Fisher Scientific 159015R
Marking pen, Sharpie (ultra-fine) Staples 642736
Mice, immunodeficient (Nu/J) Jackson Laboratory 2019
Microcentrifuge, accuSpin Micro17 Fisher Scientific 13-100-675
Microcentrifgue tubes, Eppendorf tubes (1.5 mL) Axygen MCT-150-C
Microscope slide box Fisher Scientific 50-751-4983
Needle, 27 gauge Becton-Dickinson 752 0071
Paintbrush Grainger 39AL12
Paper towels Staples 33550
Paraformaldehyde Acros Organics 416785000
Penicillin/Streptomycin Gibco 15140122
Perforated spoon, 15 mm diameter, 135 mm length Roboz Surgical Instrument Co. RS-6162
Phosphate buffered saline (PBS) Fisher Scientific BP3991
Pipet tips (10 μL) Fisher Scientific 02-707-438
Pipet tips (200 μL) Fisher Scientific 02-707-411
Pipet tips (1000 μL) Fisher Scientific 02-707-403
Pipets, serological (10 mL) VWR 89130-910
Pippetor, Gilson P2 Daigger EF9930A
Pipettor Starter Kit, Gilson (2-10 μL, 20-200 μL, 200-1000 μL) Daigger EF9931A
Platform shaker – orbital, benchtop Cole-Parmer EW-51710-23
Positively-charged microscope slides, Superfrost Fisher Scientific 12-550-15
Scalpel, size 10, Surgical Design, Inc. Fisher Scientific 22-079-707
Scissors, surgical – sharp, curved Fine Science Tools 14005-12
Software for image analysis, Nikon Elements Nikon Custom order
Software for image analysis, ImageJ (FIJI) National Institutes of Health n/a Download online (free)
Specimen disc 30 mm (chuck holder), cryostat accessory Leica Biosystems 14047740044
Staining tray, 245 mm BioAssay Dish Corning 431111
Syringe, 1 cc Becton-Dickinson 309623
Tape, laboratory, 19 mm width Fisher Scientific 15-901-5R
Timer Fisher Scientific 14-649-17
Tissue culture dish, 100 x 15 mm diameter Fisher Scientific 08-757-100D
Tissue culture flask, 225 cm2 ThermoFisher 159933
Tissue culture plate, 24-well Becton-Dickinson 353226
Tissue embedding mold, stainless steel Tissue Tek 4161
Tissue Freezing Medium, Optimal Cutting Temperature (OCT) Fisher Scientific 4585
Trypsin-EDTA (ethylenediaminetetraacetic acid), 0.25% Gibco 25200072
Water bath, Precision GP 2S ThermoFisher TSGP2S

References

  1. Pavlova, N. N., Thompson, C. B. The emerging hallmarks of cancer metabolism. Cell Metabolism. 23 (1), 27-47 (2016).
  2. Pellegatti, P., et al. Increased level of extracellular ATP at tumor sites: in vivo imaging with plasma membrane luciferase. PLoS ONE. 3, 25992008 (2008).
  3. Falzoni, S., Donvito, G., Di Virgilio, F. Detecting adenosine triphosphate in the pericellular space. Interface Focus. 3 (3), 20120101 (2013).
  4. Michaud, M., et al. Autophagy-dependent anticancer immune responses induced by chemotherapeutic agents in mice. Science. 334, 1573-1577 (2011).
  5. Wilhelm, K., et al. Graft-versus-host disease is enhanced by extracellular ATP activating P2X7R. Nature Medicine. 16, 1434-1438 (2010).
  6. Vander Heiden, M. G., Cantley, L. C., Thompson, C. B. Understanding the Warburg effect: the metabolic requirements of cell proliferation. Science. 324, 1029-1033 (2009).
  7. Cairns, R. A., Harris, I. S., Mak, T. W. Regulation of cancer cell metabolism. Nature Reviews Cancer. 11, 85-95 (2011).
  8. Chen, X., Qian, Y., Wu, S. The Warburg effect: evolving interpretations of an established concept. Free Radical Biology & Medicine. 79, 253-263 (2015).
  9. Wang, X., et al. Extracellular ATP, as an energy and phosphorylating molecule, induces different types of drug resistances in cancer cells through ATP internalization and intracellular ATP level increase. Oncotarget. 8 (5), 87860-87877 (2017).
  10. Patel, A., et al. ATP as a biological hydrotrope. Science. 356, 753-756 (2017).
  11. Qian, Y., et al. Extracellular ATP is internalized by macropinocytosis and induces intracellular ATP increase and drug resistance in cancer cells. Cancer Letters. 351, 242-251 (2014).
  12. Qian, Y., Wang, X., Li, Y., Cao, Y., Chen, X. Extracellular ATP a new player in cancer metabolism: NSCLC cells internalize ATP in vitro and in vivo using multiple endocytic mechanisms. Molecular Cancer Research. 14, 1087-1096 (2016).
  13. Commisso, C., et al. Macropinocytosis of protein is an amino acid supply route in Ras-transformed cells. Nature. 497, 633-637 (2013).
  14. Li, L., et al. The effect of the size of fluorescent dextran on its endocytic pathway. Cell Biology International. 39, 531-539 (2015).
  15. Yanagawa, Y., Matsumoto, M., Togashi, H. Enhanced dendritic cell antigen uptake via alpha2 adrenoceptor-mediated PI3K activation following brief exposure to noradrenaline. Journal of Immunology. 185, 5762-5768 (2010).
  16. Hoppe, H. C., et al. Antimalarial quinolines and artemisinin inhibit endocytosis in Plasmodium falciparum. Antimicrobial Agents & Chemotherapy. 48, 2370-2378 (2004).
  17. Chaudry, I. H. Does ATP cross the cell plasma membrane. Yale Journal of Biology & Medicine. 55, 1-10 (1982).
  18. Pant, H. C., Terakawa, S., Yoshioka, T., Tasaki, I., Gainer, H. Evidence for the utilization of extracellular [gamma-32P]ATP for the phosphorylation of intracellular proteins in the squid giant axon. Biochimica et Biophysica Acta. 582, 107-114 (1979).
  19. Chaudry, I. H., Baue, A. E. Further evidence for ATP uptake by rat tissues. Biochimica et Biophysica Acta. 628, 336-342 (1980).
  20. Koppenol, W. H., Bounds, P. L., Dang, C. V. Otto Warburg’s contributions to current concepts of cancer metabolism. Nature Reviews Cancer. 11, 325-337 (2011).
  21. Dang, C. V. Links between metabolism and cancer. Genes & Development. 26, 877-890 (2012).
  22. Israelsen, W. J., Vander Heiden, M. G. ATP consumption promotes cancer metabolism. Cell. 143, 669-671 (2010).
  23. Koster, J. C., Permutt, M. A., Nichols, C. G. Diabetes and insulin secretion: the ATP-sensitive K+ channel (K ATP) connection. Diabetes. 54, 3065-3072 (2005).
  24. Szendroedi, J., et al. Muscle mitochondrial ATP synthesis and glucose transport/phosphorylation in type 2 diabetes. PLoS Medicine. 4, 154 (2007).
  25. Miyamoto, S., et al. Mass spectrometry imaging reveals elevated glomerular ATP/AMP in diabetes/obesity and identifies sphingomyelin as a possible mediator. EBioMedicine. 7, 121-134 (2016).

Play Video

Cite This Article
Nielsen, C. M., Qian, Y., Adhicary, S., Li, Y., Shriwas, P., Wang, X., Bachmann, L., Chen, X. Fluorescence Microscopy for ATP Internalization Mediated by Macropinocytosis in Human Tumor Cells and Tumor-xenografted Mice. J. Vis. Exp. (172), e62768, doi:10.3791/62768 (2021).

View Video