Aqui, apresentamos um ensaio de cocultura fácil de usar para analisar a migração de glioblastoma (GBM) em neurônios padronizados. Desenvolvemos uma macro no software FiJi para fácil quantificação da migração celular GBM em neurônios, e observamos que os neurônios modificam a capacidade invasiva celular GBM.
Glioblastomas (GBMs), gliomas malignos de grau IV, são um dos tipos mais mortais de câncer humano por causa de suas características agressivas. Apesar dos avanços significativos na genética desses tumores, como as células GBM invadem o parenchyma cerebral saudável não é bem compreendida. Notavelmente, foi demonstrado que as células GBM invadem o espaço peritumoral através de diferentes rotas; o principal interesse deste artigo é a rota ao longo de tratos de matéria branca (WMTs). As interações das células tumorais com os componentes das células nervosas peritumorais não são bem caracterizadas. Aqui, foi descrito um método que avalia o impacto dos neurônios na invasão celular GBM. Este artigo apresenta um ensaio avançado de cocultura in vitro que imita a invasão de WMT analisando a migração de células-tronco GBM em neurônios. O comportamento das células GBM na presença de neurônios é monitorado usando um procedimento de rastreamento automatizado com software de código aberto e de acesso livre. Este método é útil para muitas aplicações, em particular, para estudos funcionais e mecanicistas, bem como para analisar os efeitos de agentes farmacológicos que podem bloquear a migração celular GBM em neurônios.
Gliomas malignos primários, incluindo GBMs, são tumores devastadores, com uma taxa média de sobrevivência de 12 a 15 meses relatada para pacientes com GBM. A terapia atual conta com grande ressecção de massa tumoral e quimioterapia aliada à radioterapia, que só aumenta a taxa de sobrevivência em poucos meses. As falhas terapêuticas estão intimamente relacionadas ao mau fornecimento de drogas através da barreira hematoencefálica (BBB) e ao crescimento invasivo em espaços perivasculares, meninges e ao longo das OTN1. A invasão perivascular, também chamada de co-opção vascular, é um processo bem estudado, e os mecanismos moleculares estão começando a ser elucidados; no entanto, o processo de invasão de células GBM ao longo de WMTs não é bem compreendido. As células tumorais migram para o cérebro saudável ao longo das estruturas secundárias de Scherer2. De fato, há quase um século, Hans-Joachim Scherer descreveu as rotas invasivas do GBM, que agora são referidas como satellitose perineuronal, satellitose perivascular, propagação subpial e invasão ao longo do WMT (Figura 1A).
Algumas quimiocinas e seus receptores, como o fator de crescimento estroboma derivado de células estromal 1α (SDF1α) e c-X-C, o receptor de quimioterapia 4 (CXCR4), mas não o fator de crescimento endotelial vascular (VEGF), parecem estar implicados na invasão do TNM3. Mais recentemente, um eixo TRANScelular NOTCH1-SOX2 mostrou-se um importante caminho na invasão de WMT de células GBM4. Os autores descreveram como células-tronco GBM invadem o parênquim cerebral em neurônios parcialmente nãoomiados, sugerindo a destruição de baias de mielina por células GBM. Um marco foi alcançado em 2019, quando três artigos foram publicados de forma consecutiva na revista Nature, destacando o papel da atividade elétrica no desenvolvimento do glioma5,6. O trabalho seminal de Monje e colaboradores lançou luz sobre o papel central da atividade elétrica na secreção da neuroligina-3, que promove o desenvolvimento do glioma.
Winkler e colaboradores descreveram as conexões entre as células GBM (microtubos) sendo cruciais em etapas invasivas e, ultimamente, interações entre células GBM e neurônios através de sinapses neuroglioma recém-descritas. Essas estruturas favorecem a estimulação glutamatergica de receptores de ácido α-amino-3-hidroxi-5-metil-4-isoxazolepropionic ácido (AMPA) localizados na membrana celular GBM, que promove o desenvolvimento e invasão do tumor. A invasão de células tumorais é um processo central na disseminação de metástases ou focos secundários distantes, como observado em pacientes com GBM. Vários fatores foram identificados como importantes na invasão do GBM, como o trombospondina-1, um fator de crescimento transformador beta (proteína matricellular regulada por TGFβ, ou o receptor de quimioterapia CXCR3)7,8.
Aqui, um modelo biomimético simplificado foi descrito para estudar a invasão gbm, em que os neurônios são padronizados em trilhas de laminina, e as células GBM são semeadas sobre ele, como células únicas ou como esferoides(Figura 1B). As duas configurações experimentais visam recapitular a invasão sobre neurônios, o que é observado em GBM9,10,11. Tais modelos foram desenvolvidos no passado como biomateriais de nanofibra alinhados (eletropinning de conchas centrais) que permitem estudar a migração celular através da modulação de propriedades mecânicas ou químicas12. O modelo de cocultura descrito neste artigo permite uma melhor compreensão de como as células GBM escapam nos neurônios definindo novas vias moleculares envolvidas nesse processo.
Glioblastomas invadem extensivamente o parenchyma usando diferentes modos: co-opção de vasos sanguíneos circundantes, invasão intersticiacional ou invasão em WMTs18. Este último modo não é bem caracterizado na literatura devido à dificuldade em encontrar modelos in vitro ou in vivo adequados relacionados à invasão de WMT. Aqui, foi proposto um modelo simplificado no qual neurônios de roedores cultivados foram padronizados em superfícies revestidas de laminina, e cél…
The authors have nothing to disclose.
Este trabalho foi apoiado pela Fondation ARC 2020, Ligue Contre le Cancer (Comite de la Gironde), ARTC, Plan Cancer 2021, INCA PLBIO. Alveole é apoiado pela Agence Nationale de la Recherche (Grant Labex BRAIN ANR-10-LABX-43). Joris Guyon é bolsista do Hospital Universitário de Toulouse (CHU Toulouse).
(3-aminopropyl) triethoxysilane | Sigma | 440140-100ML | The amino group is useful for the bioconjugation of mPEG-SVA |
96-well round-bottom plate | Sarstedt | 2582624 | Used to prepare spheroids |
Accutase | Gibco | A11105-01 | Stored at -20 °C (long-term) or 4 °C (short-term), sphere dissociation enzyme |
B27 | Gibco | 12587 | Stored at -20 °C, defrost before use |
Basic Fibroblast Growth Factor | Peprotech | 100-18B | Stored at -20 °C, defrost before use |
Countess Cell Counting ChamberSlides | Invitrogen | C10283 | Used to cell counting |
Coverslips | Marienfeld | 111580 | Cell culture substrate |
Dessicator cartridges | Sigma | Z363456-6EA | Used to reduce mosture during (3-aminopropyl) triethoxysilane treatment |
DPBS 10x | Pan Biotech | P04-53-500 | Stored at 4 °C |
Fiji software, MTrack2 macro | ImageJ | Used to analyze pictures | |
Flask 75 cm² | Falcon | 10497302 | |
HBSS | Sigma | H8264-500ML | |
Heparin sodium | Sigma | H3149-100KU | Stored at 4 °C |
Laminin | 114956-81-9 | Promotes neuronal adhesion | |
Leonardo software | loading of envisioned micropatterns | ||
MetaMorph Software | Molecular Devices LLC | NA | Microscopy automation software |
Methylcellulose | Sigma | M0512 | Diluted in NBM for a 2% final concentration |
Neurobasal medium | Gibco | 21103-049 | Stored at 4 °C |
Nikon TiE (S Fluor, 20x/0.75 NA) | inverted microscope equipped with a motorized stage | ||
Penicillin – Streptomycin | Gibco | 15140-122 | Stored at 4 °C |
PLPP | Alveole | PLPPclassic_1ml | Photoinitiator used to degrade the PEG brush |
Poly(ethylene glycol)-Succinimidyl Valerate (mPEG-SVA) | Laysan Bio | VA-PEG-VA-5000-5g | Used as an anti-fouling coating |
PRIMO | Alveole | PRIMO1 | Digital micromirror device (DMD)-based UV projection apparatus |
Trypan blue 0.4% | ThermoFisher | T10282 | Used for cell counting |
Trypsin-EDTA | Sigma | T4049-100ML | Used to detach adherent cells |