Summary

Isolamento de Subpopulações de Células Estromais Adipogênicas e Fibro-Inflamatórias de Depósitos Adiposos Intra-Abdominais Murinos

Published: August 16, 2020
doi:

Summary

Este protocolo descreve a abordagem técnica para isolar subpopulações de células estromais adipogênicas e fibroinflamatórias de depósitos de tecido adiposo branco intra-abdominal murino (WAT) por classificação de células ativadas por fluorescência ou separação de esferas imunomagnéticas.

Abstract

A fração estromal-vascular (FVS) do tecido adiposo branco (TAB) é notavelmente heterogênea e consiste em vários tipos de células que contribuem funcionalmente para a expansão e remodelação do TAB na idade adulta. Uma tremenda barreira para estudar as implicações dessa heterogeneidade celular é a incapacidade de isolar prontamente subpopulações celulares funcionalmente distintas do WAT SVF para análises in vitro e in vivo. A tecnologia de sequenciamento de célula única identificou recentemente subpopulações de células perivasculares PDGFRβ+ fibroinflamatórias e adipogênicas funcionalmente distintas em depósitos intra-abdominais de WAT de camundongos adultos. Os progenitores fibro-inflamatórios (denominados “FIPs”) são células produtoras de colágeno não adipogênico que podem exercer um fenótipo pró-inflamatório. As células precursoras de adipócitos PDGFRβ+ (APCs) são altamente adipogênicas tanto in vitro quanto in vivo após o transplante de células. Aqui, descrevemos vários métodos para o isolamento dessas subpopulações de células estromais de depósitos intra-abdominais murinos de WAT. FIPs e APCs podem ser isolados por classificação de células ativadas por fluorescência (FACS) ou aproveitando a tecnologia de esferas imunomagnéticas baseadas em anticorpos biotinilados. As células isoladas podem ser usadas para análise molecular e funcional. Estudar as propriedades funcionais da subpopulação de células estromais isoladamente expandirá nosso conhecimento atual da remodelação do tecido adiposo sob condições fisiológicas ou patológicas no nível celular.

Introduction

O tecido adiposo branco (TAB) representa o principal local de armazenamento de energia em mamíferos. Dentro desse tecido, os adipócitos, ou “células de gordura”, armazenam o excesso de calorias na forma de triglicerídeos, embalados em grandes gotículas lipídicas uniloculares. Além disso, os adipócitos secretam uma infinidade de fatores que regulam vários aspectos da homeostase energética 1,2,3. Os adipócitos constituem a maior parte do volume de TAB; no entanto, os adipócitos representam apenas menos de 50% do total de células encontradas no WAT 4,5. O compartimento não adipócitos do TAB, ou fração estromal-vascular (SVF), é bastante heterogêneo e contém células endoteliais vasculares, células imunes residentes em tecidos, fibroblastos e populações de células precursoras de adipócitos (APC).

O WAT é excepcional em sua notável capacidade de expandir em tamanho à medida que a demanda por armazenamento de energia aumenta. A manutenção dessa plasticidade tecidual é essencial, pois o armazenamento adequado de lipídios no WAT protege contra a deposição de lipídios ectópicos deletérios em tecidos não adiposos6. A maneira pela qual os depósitos individuais de WAT sofrem essa expansão em resposta ao excesso calórico é um determinante crítico da sensibilidade à insulina no cenário de obesidade7. A expansão patológica do TAB, observada em indivíduos obesos com síndrome metabólica, é caracterizada pela expansão preferencial dos depósitos viscerais do TAB em detrimento do tecido adiposo subcutâneo metabolicamente favorável. Além disso, a resistência à insulina na obesidade está associada ao remodelamento patológico do TAB. Caracteriza-se por crescimento hipertrófico dos adipócitos existentes (aumento de tamanho), angiogênese inadequada, inflamação metabólica crônica, acúmulo de componentes da matriz extracelular (fibrose) e hipóxia tecidual 8,9. Esses fenótipos de obesidade WAT estão associados à esteatose hepática e resistência à insulina, semelhante ao que é observado na condição de lipodistrofia (ausência de WAT funcional). Em contraste, a expansão saudável do WAT é observada na população obesa metabolicamente saudável e é caracterizada pela expansão preferencial do WAT subcutâneo protetor e expansão do depósito através da hiperplasia dos adipócitos10. O recrutamento de novos adipócitos é mediado pela diferenciação de adipócitos de novo de células precursoras de adipócitos (APCs) (denominada “adipogênese”). A hiperplasia de adipócitos coincide com graus relativamente mais baixos de fibrose WAT e inflamação metabólica 6,11. Uma infinidade de tipos de células dentro do microambiente WAT influencia diretamente a saúde e a capacidade de expansão do WAT na obesidade12. Como tal, definir a função dos vários tipos de células presentes no WAT continua sendo uma alta prioridade para o campo.

Na última década, várias estratégias foram empregadas para definir e isolar APCs nativos de WAT SVF13 humano e de camundongo. Tais estratégias isolam APCs com base na expressão da superfície celular de marcadores comuns de células-tronco/progenitoras mesenquimais usando técnicas de separação celular baseadas em anticorpos. Essas abordagens incluem classificação de células ativadas por fluorescência (FACS), usando anticorpos marcados com fluoróforo, ou separação de esferas imunomagnéticas (ou seja, anticorpos quimicamente modificados). As proteínas de superfície celular direcionadas para o isolamento de APCs incluem PDGFRα, PDGFRβ, CD34 e SCA-1. Essas abordagens ajudaram a enriquecer os APCs; no entanto, as populações de células isoladas com base nesses marcadores são bastante heterogêneas. Estudos muito recentes de sequenciamento de RNA de célula única (scRNA-seq) destacaram a heterogeneidade molecular e funcional das células estromais dentro da fração estromal-vascular isolada (SVF) do WAT murino 14,15,16,17. A partir de nosso próprio scRNA-seq e análises funcionais, identificamos e caracterizamos subpopulações de células perivasculares PDGFRβ+ imunomoduladoras e adipogênicas funcionalmente distintas no compartimento estromal do WAT intra-abdominal em camundongos adultos15. Os precursores fibroinflamatórios, ou FIPs, representam uma subpopulação proeminente de células PDGFRβ+ e podem ser isolados com base na expressão de LY6C (células LY6C+ PDGFRβ+)15. As PIF carecem de capacidade adipogênica, exercem forte resposta pró-inflamatória a vários estímulos, produzem colágeno e secretam fatores antiadipogênicos15. A atividade pró-inflamatória e fibrogênica dessas células aumenta em associação com a obesidade em camundongos, implicando essas células como reguladoras do remodelamento do WAT. A subpopulação LY6C- CD9- PDGFRβ+ representa células precursoras de adipócitos (APCs). Essas APCs são enriquecidas na expressão de Pparg e outros genes pró-adipogênicos e prontamente se diferenciam em adipócitos maduros in vitro e in vivo15. Aqui, fornecemos um protocolo detalhado para o isolamento dessas populações de células distintas de depósitos intra-abdominais de WAT de camundongos adultos usando FACS e separação de esferas imunomagnéticas com anticorpos biotinilados. Este protocolo pode ser usado para isolar subpopulações progenitoras adiposas funcionalmente distintas de vários depósitos intra-abdominais de WAT de camundongos machos e fêmeas adultos15. Estudar essas populações de células funcionalmente distintas isoladamente pode contribuir muito para nossa compreensão atual dos mecanismos moleculares que regulam a adipogênese e a remodelação do tecido adiposo intra-abdominal na saúde e na doença.

O protocolo abaixo detalha o isolamento de progenitores adiposos do WAT epididimal murino; no entanto, o mesmo procedimento pode ser usado para isolar as células correspondentes dos depósitos de WAT mesentérico e retroperitoneal de camundongos machos e fêmeas15. Um protocolo detalhado sobre como identificar e isolar esses depósitos em camundongos pode ser encontrado em Bagchi et al.18. Este protocolo foi otimizado para o uso de camundongos de 6 a 8 semanas de idade. A frequência e a capacidade de diferenciação das APCs podem diminuir em associação com o envelhecimento.

Protocol

Todos os protocolos e procedimentos com animais foram aprovados pelo Comitê Institucional de Uso e Cuidados com Animais do Centro Médico do Sudoeste da Universidade do Texas. 1. Isolamento da fração vascular estromal (SVF) do tecido adiposo branco gonadal Disseque o tecido adiposo branco gonadal de camundongos de 6 a 8 semanas de idade e coloque as almofadas de gordura em 1x solução de PBS. Combine até 4 depósitos de gordura (recomenda-se 2-4 depósitos de 1-2 camun…

Representative Results

Este protocolo descreve duas estratégias que permitem o isolamento de populações distintas de células estromais de depósitos intra-abdominais de WAT de camundongos adultos. APCs e FIPs podem ser isolados por FACS (Figura 1) ou separação imunomagnética de esferas com anticorpos biotinilados (Figura 2). Ambas as abordagens utilizam reagentes e anticorpos que estão disponíveis comercialmente. A separação imunomagnética do grânulo leva à separação d…

Discussion

A cepa de camundongos C57BL/6 é a cepa de camundongo mais usada em estudos de obesidade induzida por dieta. Camundongos C57BL/6 ganham peso rapidamente quando colocados em uma dieta rica em gordura (HFD) e desenvolvem algumas das características proeminentes da síndrome metabólica associada à obesidade (por exemplo, resistência à insulina e hiperlipidemia). Notavelmente, a expansão do WAT que ocorre em associação com a alimentação com dieta rica em gordura (HFD) ocorre de maneira específica do depósito 19,2…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Os autores agradecem a Lisa Hansen e Kirsten Vestergaard pela excelente assistência técnica, e a P. Scherer, N. Joffin e C. Crewe pela leitura crítica do manuscrito. Os autores agradecem ao Núcleo de Citometria de Fluxo da UTSW pela excelente orientação e assistência no desenvolvimento dos protocolos descritos aqui. R.K.G. é suportado pelo NIH NIDDK R01 DK104789, NIDDK RC2 DK118620 e NIDDK R01 DK119163. J.P. é patrocinado por um prêmio de pré-doutorado do Innovation Fund Denmark.

Materials

Mechanical Tissue Preparation and SVF Isolation
40 and 100 µm cell strainers Fisher Scientific 352340/352360
1X Phosphate buffered saline (PBS) Fisher Scientific 21040CV
5ml polypropylene tubes Fisher Scientific 352053
Digestion Buffer (for 10mL)
10 ml HBSS Sigma H8264
10 mg Collagenase D (1 mg/ml final cc.) Roche 11088882001
0.15 g BSA (1.5 % final cc.) Fisher Scientific BP1605-100
Immunomagnetic separation of APCs and non-APCs
5X MojoSort Buffer (MS buffer) BioLegend 480017
5 ml MojoSort Magnet (MS magnet) BioLegend 480019
100 µL MojoSort Streptavidin Nanobeads BioLegend 480015
Purity Check and FACS
10X Red Blood Cell Lysis Buffer eBioscience 00-4300-54
Fc block (Mouse CD16/CD32) eBioscience 553141
Antibodies
Biotin CD45 BioLegend 103103 Concentration: ≤ 0.25 µg per 10^6 cells
Species: Mouse
Clone: 30-F11
Biotin CD31 BioLegend 102503 Concentration: ≤ 0.25 µg per 10^6 cells
Species: Mouse
Clone: MEC13.3
Biotin CD9 BioLegend 124803 Concentration: ≤ 0.25 µg per 10^6 cells
Species: Mouse
Clone: MZ3
Biotin LY6C BioLegend 128003 Concentration: ≤ 0.25 µg per 10^6 cells
Species: Mouse
Clone: HK1.4
CD31-PerCP/Cy5.5 BioLegend 102419 Concentration: Dilution 1:400
Species: Mouse
Clone: 390
CD45-PerCP/Cy5.5 BioLegend 103131 Concentration: Dilution 1:400
Species: Mouse
Clone: 30-F11
CD140b PDGFRβ-PE BioLegend 136006 Concentration: Dilution 1:50
Species: Mouse
Clone: APB5
LY6C-APC BioLegend 128016 Concentration: Dilution 1:400
Species: Mouse
Clone: HK1.4
CD9-FITC BioLegend 124808 Concentration: Dilution 1:400
Species: Mouse
Clone: MZ3
Cell Culture and Differentiation
Gonadal APC Culture media (for 500mL)
288 mL DMEM with 1 g/L glucose Corning 10-014-CV
192 mL MCDB201 Sigma M6770
10 mL Fetal bovine serum (FBS)** lot#14E024 Sigma 12303C
5 mL 100% ITS premix BD Bioscience 354352
5 mL 10 mM L-ascorbic acid-2-2phosphate Sigma A8960-5G
50 µL 100 g/ml FGF-basic R&D systems 3139-FB-025/CF
5 mL Pen/Strep Corning 30-001-CI
500 µL Gentamycin Gibco 15750-060
**NOTE: The adipogenic capacity of primary APCs can vary from lot to lot of commercial FBS. Multiple lots/sources of FBS should be tested.

References

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Peics, J., Vishvanath, L., Zhang, Q., Shan, B., Pedersen, T. Å., Gupta, R. K. Isolation of Adipogenic and Fibro-Inflammatory Stromal Cell Subpopulations from Murine Intra-Abdominal Adipose Depots. J. Vis. Exp. (162), e61610, doi:10.3791/61610 (2020).

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