Summary

Een Rapid Filter Insert-gebaseerde 3D Cultuur System for Primary Prostaat Cel Differentiatie

Published: February 13, 2017
doi:

Summary

Here, we present a method for the establishment of a rapid in vitro system that supports the three dimensional culturing and subsequent luminal differentiation of primary prostate epithelial cells.

Abstract

Voorwaardelijk geherprogrammeerd cellen (CRC) een duurzame werkwijze voor primaire celkweek en het vermogen om grote "levende biobanken 'van patiënt afgeleide cellijnen te ontwikkelen. Voor veel soorten epitheliale cellen hebben verschillende driedimensionale (3D) cultuur benaderingen beschreven die een verbeterde gedifferentieerde toestand ondersteunen. Terwijl CRCs hun lineage inzet voor het weefsel waaruit ze worden geïsoleerd behouden, falen ze uit te drukken veel van de differentiatie markers in verband met het weefsel van herkomst wanneer gekweekt onder normale tweedimensionale (2D) kweekomstandigheden. De toepassing van patiënt afgeleide CRC voor prostaatkanker onderzoek te versterken, is een 3D cultuur format gedefinieerd die snel (2 weken totaal) luminale celdifferentiatie in normale en tumor-afgeleide prostaat epitheliale cellen mogelijk maakt. Hierin wordt een filterelement-gebaseerd formaat beschreven voor het kweken en differentiatie van normale en kwaadaardige prostaat CRC. A detailed beschrijving van de voor cellen en -verwerking zijn voor immunohistochemische en immunofluorescentie kleuringen worden voorzien. Gezamenlijk de 3D cultuur format beschreven, in combinatie met de primaire CRC lijnen, een belangrijk middellange doorvoer modelsysteem voor hoog- biospecimen gebaseerde prostate onderzoek.

Introduction

De identificatie en toepassing van kankertherapieën die op maat gemaakt kunnen individuen een hoofddoel in kankeronderzoek. Onlangs zijn er nieuwe benaderingen ontwikkeld die zorgen voor een grotere gemak bij het opzetten van primaire celculturen potentieel verschaffen leibanen van identificeren en testen gepersonaliseerde therapieën. Bijvoorbeeld, de R-spondin gebaseerde prostate organoïde benadering 1 zorgt voor driedimensionale (3D) het kweken van normale en metastatische prostaatkankercellen in commerciële extracellulaire matrix (bijvoorbeeld Matrigel), terwijl de voorwaardelijk herprogrammeren van cellen (CRC) methode ontwikkeld aan Georgetown 2, 3 maakt gebruik van meer standaard 2D kweekomstandigheden. Met name de combinatie van een Rho kinase inhibitor (Y-27632) en bestraalde J2 murine fibroblast voedingscellen tot de onbepaalde kweken van keratinocyten CRC 2. De CRC methodologieextreem robuust, met primaire cellijnen met succes en voor onbepaalde tijd gehandhaafd van de prostaat en vele andere normale en kwaadaardige epitheliale weefsels 3. Belangrijker onze CRC technologie toegestaan ​​voor de snelle identificatie van de etiologische basis voor terugkerend respiratoir papillomatose bij een patiënt die een aantal eerdere medicamenteuze behandelingen hadden gefaald. Voorts worden volgens normale en tumor afgeleide CRC, de succesvolle identificatie van een FDA goedgekeurde geneesmiddel, Vorinostat werd binnen twee weken na de initiële biopsie weefsel. De patiënt werd op vorinostat, waardoor de succesvolle behandeling van hun ziekte 4.

De normale prostaat bestaat uit luminale, basale en de zeldzame neuroendocriene cellen 5. Luminale cellen vormen de kolomvormige epitheellaag van de klier en drukken de androgeenreceptor (AR), en andere luminale merkers zoals cytokeratine 8 en 18 en prostate-specifiek antigeen (PSA) 6. Omgekeerd worden basale cellen gelokaliseerd onder de luminale laag en te uiten cytokeratine 5 en p63, maar lage niveaus van de AR 5. We 7, 8, 9 en 10 anderen hebben met succes gebruik prostate CRC's in preklinische mechanistische geneesmiddelgevoeligheid onderzoeken. Echter, wanneer gekweekt onder standaard 2D weefselkweekomstandigheden deze cellen niet volledig aangrijpen AR 10 signalering. Belangrijker nog, toen onder de renale capsule van immunodeficiënte muizen geplaatst, de CRC's weer normale prostaat klier architectuur en functie aan te geven dat de prostaat CRCs behouden hun lineage betrokkenheid bij plaatsing in een tolerante omgeving. De ontwikkeling van het filterelement gebaseerde celcultuur beschreven maakt de snelle (2 weken) in vitro differentiatie van prostate CRC zoals blijkt by de verhoogde expressie van de AR en AR doelwitgenen en verlaagde p63.

De filterpatronen gebruikt bevatten polycarbonaat membranen (poriegrootte 0,4 pm) die het kweken van zoogdiercellen kan ondersteunen. Het systeem, zoals ontwikkeld, maakt gebruik van normale en kwaadaardige prostaat CRC, 6 putjes en het filter inserts. Celkweekmedia J2 geconditioneerd door cellen 11 wordt in de onderste kamer en prostaatkanker differentiatie media in de bovenste kamer. De technieken die hierin beschreven ondersteunen prostaat lumen celdifferentiatie binnen een 2 week termijn, in overeenstemming met de doelstellingen van gepersonaliseerde geneeskunde. Het was ook noodzakelijk om de methoden waarmee de uitgebreide moleculaire, genetische en cellulaire profilering van de kweken te ontwikkelen. Werkwijzen voor het isoleren van DNA, RNA en eiwit uit cellen vrijgemaakt uit het filteroppervlak ontwikkeld en gestroomlijnd accurate tweede monster verwerking. Finally, de methodologie die nodig is voor het verwijderen van het filter om inbedding mogelijk te maken, snijden en voor H & E, immunohistochemische en immunofluorescentie kleuring, wordt volledig beschreven.

Protocol

1. De vaststelling van de 3D-Cell Culture Insert System Plaats 2 polycarbonaat celkweek inserts in een omgekeerde oriëntatie (filter zijde naar boven) in een plaat met 6 putjes (Figuur 1A). Een dunne laag van 0,1% gelatine in water aan de onderzijde van het inzetstuk en laten drogen (10-20 min) in een biologische veiligheidskast om steriliteit te handhaven. Herhaal stap 1.2 twee keer voor een totaal van 3 toepassingen van 0,1% gelatine op de inzetstukken. NB: De ge…

Representative Results

De celkweek insert systeem is een relatief eenvoudige en snelle procedure voor het produceren van 3D-kweken prostate CRC's die luminale celdifferentiatie ondersteunt. Een schema van het systeem wordt getoond (Figuur 1A) aandacht voor de toepassing van de gelatine coating op het onderoppervlak van het filterelement. De inzetstukken zijn alleen vernietigd voor de toepassing van de gelatine. In figuur 1B de filters in de juiste richting voor het kweken….

Discussion

Primaire cellijnen zijn een belangrijke en zich snel ontwikkelende platform voor kankeronderzoek. De cultuur insert-gebaseerde 3D-cultuur systeem ondersteunt de differentiatie van primaire prostaat CRCs binnen twee weken termijn. De CRC filter methode vertegenwoordigt een nieuwe, medium throughput methode voor prostaatkanker onderzoek. Bestaande muis PDX merken tijdrovend en zeer duur, en veel van de PDX monsters niet in kweek, beperken onderzoeker geïnitieerde experimenten en hun nut. Bovendien, terwijl slagingspercen…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit onderzoek werd gesteund door T32 (CA 9686-18) en TL1 (TL1TR001431) postdoctorale opleiding subsidie ​​awards (LT), DOD PC140268 (CA), W81XWH-13-1-0327 (CA) TR000102-04 (CA), alsmede U01 PAR-12-095 (Kumar) en P30 CA051008-21 (Weiner). Monster fixatie, snijden en kleuring werd uitgevoerd in de Lombardi Comprehensive Cancer Center histologie en Tissue Shared Resource. Wij danken Richard Schlegel voor nuttige discussies. De inhoud is uitsluitend de verantwoordelijkheid van de auteurs en niet noodzakelijkerwijs het officiële standpunt van het National Cancer Institute en de National Institutes of Health.

Materials

Corning Costar Snapwell Culture Inserts Corning 3801
Millicell Cell Culture Inserts Millipore PIHP01250
Multiwell 6 Well Falcon 353046
Gelatin 0.1% in water Stemcell Technologies 7903
Sterile Saftey Scapel 10 Blade Integra Miltex 4-510
Sterile Standard Scalpel 11 Blade Integra Miltex 4411
RIPA Lysis and Extraction Buffer Thermofisher Scientific 89900
Sodium Fluoride Fishcer Scientific S299-100
Sodium Vanadate Fishcer Scientific 13721-39-6
Dithiothreitol Sigma-Aldrich 3483123
Protease Inhibitor Cocktail (AEBSF, Aprotinin, Bestatin, E-64, Leupeptin and Pepstatin A) Sigma-Aldrich P8340
0.25% Trypsin-EDTA (1x) Thermofisher Scientific 25200-056
DMEM Thermofisher Scientific 11965-092
FBS Sigma-Aldrich F2442
Glutamine Thermofisher Scientific 25030081 
Penicillin Streptomycin Thermofisher Scientific 15140-122
F-12 Nutrient Mix Media Thermofisher Scientific 11765054
Y-27632 dihydrochloride Rock inhibitor Enzo ALX-270-333-M025
Hydrocortisone Sigma-Aldrich H0888
EGF Thermofisher Scientific PHG0315
Insulin Thermofisher Scientific 12585-014
Cholera Toxin Sigma-Aldrich C3012
Gentamicin Thermofisher Scientific 15710-064
Fungizone Fisher Scientific BP264550
Trizol Reagent Invitrogen 15596026
Histogel Specimen Processing Gel (hydroxyethyl agarose (HEA)) Thermo Scientific HG-4000-012
Non-Adherent Dressing Telfa KDL2132Z
Cell Culture Dish Sigma SIAL0167
HISTOSETTE II Tissue Processing / Embedding Cassettes Crystalgen CG-M492

References

  1. Gao, D., et al. Organoid cultures derived from patients with advanced prostate cancer. Cell. 159 (1), 176-187 (2014).
  2. Chapman, S., Liu, X., Meyers, C., Schlegel, R., McBride, A. A. Human keratinocytes are efficiently immortalized by a Rho kinase inhibitor. J Clin Invest. 120 (7), 2619-2626 (2010).
  3. Liu, X., et al. ROCK inhibitor and feeder cells induce the conditional reprogramming of epithelial cells. Am J Pathol. 180 (2), 599-607 (2012).
  4. Yuan, H., et al. Use of reprogrammed cells to identify therapy for respiratory papillomatosis. N Engl J Med. 367 (13), 1220-1227 (2012).
  5. Signoretti, S., et al. p63 is a prostate basal cell marker and is required for prostate development. Am J Pathol. 157 (6), 1769-1775 (2000).
  6. Lang, S. H., Frame, F. M., Collins, A. T. Prostate cancer stem cells. J Pathol. 217 (2), 299-306 (2009).
  7. Ringer, L., et al. The induction of the p53 tumor suppressor protein bridges the apoptotic and autophagic signaling pathways to regulate cell death in prostate cancer cells. Oncotarget. 5 (21), 10678-10691 (2014).
  8. Pollock, C. B., et al. Strigolactone analogues induce apoptosis through activation of p38 and the stress response pathway in cancer cell lines and in conditionally reprogrammed primary prostate cancer cells. Oncotarget. 5 (6), 1683-1698 (2014).
  9. Crogliom, M., et al. Analogs of the Novel Phytohormone, Strigolactone, Trigger Apoptosis and Synergy with PARP1 Inhibitors by Inducing DNA Damage and Inhibiting DNA Repair. Oncotarget. , (2016).
  10. Saeed, K., et al. Comprehensive Drug Testing of Patient-derived Conditionally Reprogrammed Cells from Castration-resistant Prostate Cancer. Eur Urol. , (2016).
  11. Palechor-Ceron, N., et al. Radiation induces diffusible feeder cell factor(s) that cooperate with ROCK inhibitor to conditionally reprogram and immortalize epithelial cells. Am J Pathol. 183 (6), 1862-1870 (2013).
  12. Coffey, A., Johnson, M. D., Berry, D. L. SpOT the Correct Tissue Every Time in Multi-tissue Blocks. J Vis Exp. (99), e52868 (2015).
  13. Hidalgo, M., et al. Patient-derived xenograft models: an emerging platform for translational cancer research. Cancer Discov. 4 (9), 998-1013 (2014).
  14. Drost, J., et al. Organoid culture systems for prostate epithelial and cancer tissue. Nat Protoc. 11 (2), 347-358 (2016).

Play Video

Cite This Article
Tricoli, L., Berry, D. L., Albanese, C. A Rapid Filter Insert-based 3D Culture System for Primary Prostate Cell Differentiation. J. Vis. Exp. (120), e55279, doi:10.3791/55279 (2017).

View Video