방법 중 하나를 사용하여 인간의 치과 펄프의 줄기 세포 (hDPSCs)의 분리 및 특성 설명<strong펄프> 효소 분해 (DPSC-ED)</strong> 또는<strong펄프 조직 explants에서 줄기 세포> 직접 가지 (DPSC-OG). 그런 다음</strong><em> 체외에서</emodontoblasts에 hDPSCs 두 종류의> 비교 차별화.
줄기 세포는 멀티 효력과 자기 갱신 15 두명의 놀라운 기능을 가지고 clonogenic 세포입니다. 다른 replicative의 potencies 모든 줄기 세포 중에서 출생 후의 줄기 세포와 같은 치과 줄기 세포 때문에 자신의 접근성, 소성 및 기타 성인 줄기 세포 16에 비해 높은 proliferative 능력의 최근 관심을 모으고있다. 특질 상, 중간 엽 줄기 세포와 유사한, 치과 펄프의 줄기 세포는 여러 차별화를 mesenchyme로 용량 및 / 또는 체외 및 생체에서 모두 비 mesenchyme lineages을 가지고 자기편 clonogenic 세포입니다. 1-8,17,18 DPSCs에 의해 식별됩니다 자신의 부정적인 조혈 항원의 표현 (예를 들어, CD45, CD34, CD14) 및 CD90의 긍정적 인 표현, CD29, CD73, CD105, CD44 및 STRO-1. 19,20
최소 통증 및 병적 쉽게 얻을 가능성이 valu로 인간 DPSCs을MSCS의 수 출처는 골수 중간 엽 줄기 세포 21로 보통 소스에 비해. 일반적으로 DPSCs는 두 가지 방법, 즉 펄프 조직 explants (DPSC-OG) 22-24과 /이나 효소 소화 (DPSC-ED) 4,6,25에 의한 줄기 세포의 이동에 의해 격리되었습니다. 이전 연구는 격리 방법과 문화 조건 체외 통로 26,27의 아래에 다른 인구 나 lineages을 일으킬 수 것으로 나타났습니다. 영구 치아 (pDPSCs)의 경우, 황 외이 효소 소화 pDPSCs이 강해 DPSCs에 비해 높은 확산 가능성이있는 것으로 밝혀졌습니다. 또한 26, 낙엽 치아 (dDPSCs)의 경우,이 입증 된 그 STRO-1 & CD34 마커 dDPSC-OG에 비해 dDPSC-ED에 더 많은 표현. 또한, dDPSC-ED는 정의 osteo / odonto 매체에 높은 mineralization 속도를 표시. 따라서 27으로 인해 연구에서 DPSCs의 뛰어난 잠재력egenerative 약을 더 연구는 서로 다른 분리 방법에서 파생됩니다 가능한 다양한 인구를 더 잘 이해해야합니다.
여기, 펄프 추출의 과정을 촉진 한 단계 치과 다이아몬드 디스크를 사용하여, 펄프 추출의 쉬운 방법을 소개하려고했습니다. 또한, ED 또는 OG 방법을 적용하여 인간의 펄프 – 파생 줄기 세포의 분리 후, 두 그룹 사이의 일반적인 특성 및 차별화 용량도 조사했다.
이 프로토콜은 두 가지 방법, 효소 분해 및 펄프 조직 explants에서 줄기 세포를 직접 가지를 사용하여 치과 펄프에서 hDPSCs의 절연 및 특성화 과정을 설명합니다. 또한, odontoblasts에 이러한 세포의 체외 차별화에 정량 알리자린 레드 S 검정 & QPCR에 의해 평가되었다.
인간의 치아에서 펄프 조직을 분리에 대한 기존 프로토콜은 이러한 플라이어 (뼈 포셉) 9 근절 바늘 2…
The authors have nothing to disclose.
우리는 굉장히 자신의 기술 지원에 대한 자신의 중요한 원반 씨 모하마드 레자 Khadem 샤리프에 박사 라일라 Shakeri 및 박사 Aref Dournaei을 인정합니다.
Name of the reagent | Company | Catalogue or Lot. number | Comments (optional) |
α-MEM | GIBCO | 11900-073 | |
Collagenase type I | Sigma-Aldrich | C0130-100MG | |
Dispase | GIBCO | 17105-041 | |
Penicillin/streptomycin | GIBCO | 15140-122 | |
Amphotericin B | GIBCO | 15290-018 | |
Fetal Bovine serum defined (FBS) | HyClone | SH30070.03 | |
L-ascorbic acid 2-phosphate | Sigma | A8960-5G | |
L-glutamine | GIBCO | 25030-024 | |
Dexamethasone | Sigma | D4902 | |
β-Glycerol phosphate disodium salt hydrate, BioUltra | Sigma | G9422-100G | |
Potassium phosphate monobasic | Sigma-Aldrich | P5655 | |
Osteogenesis Assay Kit | Millipore | PS01802031 | |
Mouse IgG2b-PE isotype control | BD pharmingen | 50808088029 | |
FITC mouse IgG2b isotype control | BD pharmingen | 559532 | |
FITC mouse IgG1 κ isotype | BD pharmingen | 11471471 | |
FITC/PE mouse anti-human CD34/CD45 | BD pharmingen | 341071 | |
PE anti-human CD146 | BD pharmingen | 550315 | |
Monoclonal mouse anti-human CD90/FITC | Daka | 00034418 | |
PE mouse anti-human CD73 | BD pharmingen | 550257 | |
Anti-h CD105/Endoglin PE | BD pharmingen | FAB10971P | |
PE mouse anti-human CD11b/Mac1 | BD pharmingen | 5553888 | |
CD44 PE mouse anti human | BD pharmingen | 555479 | |
Phosphate buffer Solution (PBS) | GIBCO | 003000 | |
70-μm cell strainer | Falcon | 352360 | |
0.2 μm syringe filter | Millex-GV | SLGV033RB | |
25 cm2 culture flask | Sigma-Aldrich | Z707481 | |
EQUIPMENT | |||
BD FACSCalibur | BD | 342975 | |
multiskan microplate spectrophotometer | Thermo scientific | 51119200 | |
Fleurcense Microscope | Olympus | ||
Flowing Software version 2.3.1 |