Este vídeo demonstra o protocolo de um ensaio in vitro angiogênese que recapitula vários estágios de angiogênese. Lapso de tempo imagens de germinação, formação de lúmen, ramificação e anastomose – características-chave da angiogênese – são mostrados.
Abstract
A angiogênese é um processo de várias etapas complexas, onde, em resposta a estímulos angiogênicos, novos vasos são criados a partir da vasculatura existente. Estes passos incluem: degradação da membrana basal a proliferação e migração (sprouting) das células endoteliais (CE) na matriz extracelular, o alinhamento da CE em cordas, ramificação, formação de lúmen, a anastomose, e formação de uma nova membrana basal. Muitos ensaios in vitro têm sido desenvolvidos para estudar este processo, mas a maioria apenas imitar determinadas fases da angiogênese, e morfologicamente os vasos dentro dos ensaios muitas vezes não se assemelham a vasos in vivo. Baseado em trabalhos anteriores por Nehls e Drenckhahn, temos otimizado um ensaio in vitro que utiliza a angiogênese umbilical humano veia CE e fibroblastos. Este modelo recapitula todas as etapas chave no início da angiogênese e, sobretudo, os vasos mostrar patente lumens intercelular cercado por CE polarizada. CE são revestidos em microcarregadores Cytodex e incorporados em um gel de fibrina. Os fibroblastos são camadas em cima do gel, onde eles fornecem necessárias fatores solúveis que promovem CE brotando da superfície das esferas. Depois de vários dias, numerosos vasos estão presentes que podem ser facilmente observado sob contraste de fase e microscopia de lapso de tempo. Este vídeo demonstra os passos-chave na criação dessas culturas.
Protocol
CÉLULAS PREPARAÇÃO Trazer HUVEC e fibroblastos em M199/10% FBS / Pen-Strep (1:100) 1-2 dias antes beading. Interruptor de médio a EGM-2 (CLONETICS) no dia anterior beading para HUVEC e no dia anterior a incorporação de fibroblastos. A concentração de ~ 400 HUVEC por talão é necessário. 20.000 fibroblastos por poço é necessário. REVESTIMENTO as contas com HUVEC – -1 dia Trypsinize HUVEC. Permitir contas para resol…
Discussion
Há um consenso crescente de que em três dimensões (3D) em ensaios de angiogênese in vitro oferecer um modelo que é muito mais próximo do ambiente real in vivo do que pode ser conseguido usando culturas 2D. É evidente que sistemas 3D superiores deve ser reprodutível, e ser capaz de imitar vários dos principais passos da angiogênese. Apesar de vários ensaios anteriores 3D têm sido desenvolvidos, muitos destes usar difíceis de obter células microvascular, ou apenas recapitular algumas das etapas. Neste vídeo, descrevemos e reali…
Materials
Material Name
Type
Company
Catalogue Number
Comment
Cytodex-3 Beads
Reagent
Amersham Pharmacia
17-0485-01
10 g/bottle.
1. 0.5 g of dry beads are hydrated and swollen in 50 mL PBS (pH=7.4) for at least 3 hours at RT.
Use a 50 mL tube and place it on the rocker.
2. Let the beads settle down (~ 15 min). Discard the supernatant and wash the beads for a few minutes in fresh PBS (50 mL).
3. Discard the PBS and replace with fresh PBS:
25 mL -> 20 mg/mL => 60000 beads/mL or
50 mL -> 10 mg/mL => 30000 beads/ mL
4. Place the bead suspension in a siliconized glass bottle (Windshield Wiper or Sigmacote).
5. Sterilize the beads by autoclaving for 15 min at 115C.
6. Store it at 4C.
Aprotinin
Reagent
Sigma
A-1153
10mg/bottle. Reconstitute lyophilized aprotinin at 4 U/mL in DI water. Sterile filter. Make aliquots of 1 mL each. Store at -20C.
Fibrinogen Type I
Reagent
Sigma
F-8630
1g. Dissolve 2 mg/mL fibrinogen in DPBS
Note clottable protein % and adjust accordingly
Heat in a 37C-water bath to dissolve the fibrinogen. Mix by inverting the tube. Do not vortex.
Sterile filter through 0.22 um
Thrombin
Reagent
Sigma
T-3399
22 mg=1000 units. Reconstitute in sterile water at 50 U/mL. Make aliquots of 0.5 mL each. Store at -20C.
Nakatsu, M. N., Davis, J., Hughes, C. C. Optimized Fibrin Gel Bead Assay for the Study of Angiogenesis. J. Vis. Exp. (3), e186, doi:10.3791/186 (2007).