Optimisé fibrine billes de gel d'analyse pour l'étude de l'angiogenèse

Summary

Cette vidéo montre le protocole d'un essai angiogenèse in vitro que les stades récapitule plusieurs de l'angiogenèse. Time-lapse images de la germination, la formation de lumière, la ramification et anastomose – caractéristiques essentielles de l'angiogenèse – sont présentés.

Abstract

L'angiogenèse est un complexe multi-étapes, où, en réponse aux stimuli angiogéniques, les nouveaux navires sont créés à partir de la vascularisation existante. Ces étapes comprennent: la dégradation de la membrane basale, la prolifération et la migration (germination) des cellules endothéliales (CE) dans la matrice extracellulaire, l'alignement de la CE en cordons, de branchement, la formation de lumière, anastomose, et la formation d'une nouvelle membrane basale. Beaucoup d'essais in vitro ont été développées pour étudier ce processus, mais la plupart ne reproduisent certaines étapes de l'angiogenèse, et morphologiquement les vaisseaux dans les dosages ne sont souvent pas ressembler à des navires in vivo. Basé sur des travaux antérieurs et Nehls Drenckhahn, nous avons optimisé un dosage de l'angiogenèse in vitro qui utilise la veine ombilicale humaine CE et les fibroblastes. Ce modèle reprend toutes les étapes clés au début de l'angiogenèse et, surtout, les vaisseaux d'affichage des brevets lumens intercellulaire entouré par polarisée CE. CE sont enduites sur microporteurs Cytodex et intégrés dans un gel de fibrine. Les fibroblastes sont en couches sur le dessus du gel, où ils assurent nécessaires facteurs solubles qui favorisent la germination CE de la surface des billes. Après plusieurs jours, de nombreux navires sont actuellement qui peut facilement être observée sous contraste de phase et de la microscopie time-lapse. Cette vidéo montre les étapes clés à mettre en place ces cultures.

Protocol

CELLULES PRÉPARATION Amener HUVEC et des fibroblastes en M199/10% de FBS / Pen-Strep (1:100) 1-2 jours avant perles. Interrupteur à moyen et à EGM-2 (Clonetics) la veille pour le perlage HUVEC et le jour avant l'intégration des fibroblastes. Une concentration de ~ 400 billes par HUVEC est nécessaire. 20000 fibroblastes par puits est nécessaire. REVÊTEMENT les billes avec HUVEC – Jour -1 Trypsiniser HUVEC. Autoriser …

Discussion

Il ya un consensus croissant selon lequel trois dimensions (3D) dans les essais angiogenèse in vitro offrent un modèle qui est beaucoup plus proche de l'environnement réel in vivo que peut être réalisé en utilisant des cultures 2D. Il est évident que la supériorité des systèmes 3D doit être reproductible et être capable d'imiter plusieurs des grandes étapes de l'angiogenèse. Bien que plusieurs dosages précédents 3D ont été développés, beaucoup de ces soit utiliser difficiles à obtenir des cellules microvascu…

Materials

Material Name	Type	Company	Catalogue Number	Comment
Cytodex-3 Beads	Reagent	Amersham Pharmacia	17-0485-01	10 g/bottle. 1. 0.5 g of dry beads are hydrated and swollen in 50 mL PBS (pH=7.4) for at least 3 hours at RT. Use a 50 mL tube and place it on the rocker. 2. Let the beads settle down (~ 15 min). Discard the supernatant and wash the beads for a few minutes in fresh PBS (50 mL). 3. Discard the PBS and replace with fresh PBS: 25 mL -> 20 mg/mL => 60000 beads/mL or 50 mL -> 10 mg/mL => 30000 beads/ mL 4. Place the bead suspension in a siliconized glass bottle (Windshield Wiper or Sigmacote). 5. Sterilize the beads by autoclaving for 15 min at 115C. 6. Store it at 4C.
Aprotinin	Reagent	Sigma	A-1153	10mg/bottle. Reconstitute lyophilized aprotinin at 4 U/mL in DI water. Sterile filter. Make aliquots of 1 mL each. Store at -20C.
Fibrinogen Type I	Reagent	Sigma	F-8630	1g. Dissolve 2 mg/mL fibrinogen in DPBS Note clottable protein % and adjust accordingly Heat in a 37C-water bath to dissolve the fibrinogen. Mix by inverting the tube. Do not vortex. Sterile filter through 0.22 um
Thrombin	Reagent	Sigma	T-3399	22 mg=1000 units. Reconstitute in sterile water at 50 U/mL. Make aliquots of 0.5 mL each. Store at -20C.