Este protocolo descreve um método para facilitar a coleta de amostras de espécimes de prostatectomia radical. O objetivo é mapear, caracterizar e dissecar micro-macro amostras de tecido dos espécimes com base em critérios anatomopatológicos antes de armazená-los em um Biobanco.
A aquisição de amostras de tecido tumoral frescas e bem caracterizadas é fundamental para a realização de estudos “ômicos” de alta qualidade. No entanto, pode ser particularmente desafiador no contexto do câncer de próstata (CP) devido à natureza única desse órgão e à alta heterogeneidade associada a esse tumor. Por outro lado, caracterizar histopatologicamente as amostras antes de seu armazenamento sem causar alterações teciduais significativas também é um desafio intrigante. Nesse contexto, apresentamos um novo método para aquisição, mapeamento, caracterização e microdissecação de tecido prostático ressecado com base em critérios anatomopatológicos.
Ao contrário dos protocolos publicados anteriormente, este método reduz o tempo necessário para a análise histopatológica da peça de próstata sem comprometer sua estrutura, o que é crucial para a avaliação das margens cirúrgicas. Além disso, permite o delineamento e micro-macro dissecção de amostras frescas de tecido prostático, com foco em áreas histológicas de tumores definidas por critérios patológicos como escore de Gleason, lesões precursoras (neoplasia intraepitelial prostática de alto grau – NIP) e lesões inflamatórias (prostatite). Essas amostras são então armazenadas em um Biobanco para análises de pesquisa subsequentes.
O câncer de próstata (CP) é o2º câncer mais frequente em homens e a5ª principal causa de morte em todo o mundo1. O tratamento e o prognóstico do paciente dependem do estadiamento e da classificação (escore de Gleason) do tumor, como evidenciado pelas maiores taxas de sobrevida em 5 anos de tumores localizados e de baixo grau (grau 6 de Gleason) (99%) em comparação com altos graus de Gleason e tumores metastáticos (31%)2.
A recidiva local do PC e a falha do tratamento têm sido associadas à alta heterogeneidade genética intratumoral característica desse tipode tumor 3. Além disso, o PC é considerado uma doença multifocal com vários focos tumorais exibindo diferentes características morfológicas, histológicas e moleculares4, que podem se originar independentemente ou derivar de um ancestral comum de células tumorais5. Estudos anteriores mostraram que a evolução do tumor difere entre os pacientes com base em fatores genéticos específicos que podem promover metástases ou confinar a linhagem celular à próstata5. Portanto, a caracterização molecular dos diferentes focos tumorais é crucial não apenas para fornecer um diagnóstico e prognóstico mais precisos, mas também para adaptar o tratamento eficaz e personalizado para o paciente.
Nesse contexto, a pesquisa biomédica e as abordagens multiômicas integrativas estão oferecendo oportunidades sem precedentes para classificar os cânceres em diferentes subtipos, identificar biomarcadores diagnósticos e prognósticos e descobrir marcadores relacionados à resposta ao tratamento. Além disso, essas abordagens contribuem para uma melhor compreensão da biologia dessa doença 6,7. Amostras biológicas, sejam tecidos ou biofluidos, podem ser analisadas usando várias plataformas multiômicas (genômica, transcriptômica, proteômica, metabolômica, etc.) para descobrir as características biológicas subjacentes à fisiopatologia do câncer, abordando assim as limitações atuais relacionadas à heterogeneidade genética e fenotípica6. No entanto, é importante considerar que a qualidade dos dados derivados de estudos ômicos depende da qualidade das amostras coletadas dos tumores, de sua caracterização precisa e do posterior processamento e armazenamento8.
Nesse contexto, a obtenção de tecido PC fresco para pesquisa apresenta um desafio metodológico devido à dificuldade de amostragem tumoral bem-sucedida9. Os métodos anteriores envolviam amostragem aleatória após prostatectomia radical, com resultados ruins10. No entanto, abordagens mais recentes incorporam protocolos direcionados baseados em dados de ressonância magnética (RM) e biópsia, resultando em maior eficácia na coleta de amostras de tumor11.
Por outro lado, a caracterização histopatológica das amostras antes de seu armazenamento sem alteração tecidual significativa também representa um desafio interessante. Consequentemente, em muitos casos, a determinação histopatológica das amostras é realizada após sua análise (por exemplo, análise metabolômica de RMN HR 1H)12. Essa prática acarreta gastos desnecessários, consumo de tempo e perda de um número significativo de amostras que acabam sendo excluídas da análise (por exemplo, amostras que, após análise histopatológica, acabam não sendo amostras de tumores). Em outros casos, a caracterização histopatológica das amostras é realizada antes de sua análise. De fato, alguns estudos anteriores tentaram padronizar métodos para fornecer amostras de pesquisa representativas de alta qualidade de espécimes de prostatectomia radical para genômica e metabolômica13,14. No entanto, a eficiência da amostragem é significativamente maior quando realizada a partir de cortes já confirmados histologicamente (88%) que rompem o tecido, em comparação com quando realizada a partir de cortes não confirmados (45%)1.
Aqui, uma nova metodologia é apresentada para superar essas limitações, visando obter amostras de PC frescas e bem caracterizadas antes do armazenamento no Biobanco. Este método foi desenvolvido através de esforços colaborativos entre diferentes serviços clínicos (Urologia, Patologia e Biobanco do Hospital La Fe). É importante destacar que os Biobancos desempenham um papel essencial na coleta, processamento, preservação e armazenamento de amostras biológicas, garantindo a alta qualidade das amostras e dados, bem como o cumprimento dos requisitos éticos e legais 8,15,16.
Em qualquer pesquisa, a obtenção de amostras de qualidade é um requisito essencial para reduzir vieses sistemáticos e obter resultados confiáveis22. Portanto, o controle de variáveis pré-analíticas como a temperatura na qual as amostras são processadas e armazenadas, o tempo decorrido desde a coleta até o armazenamento da amostra, o uso de materiais esterilizados ou os efeitos que a adição de conservantes ou outros aditivos pode ter nas amostras deve ser considerado em qualquer protoco…
The authors have nothing to disclose.
A.L. reconhece um contrato de pós-doutorado “Margarita Salas” (número 21-076) e o MAM-T um contrato de pesquisa ‘Maria Zambrano’ (número MAZ/2021/03 UP2021-021). Ambos os contratos foram financiados pela União Europeia-Next Generation EU.
Cadiere forceps | Intuitive | PN1052082-US 10/2021 | Part number: 471049. 18 uses. |
Conventional slides | Knittel Glass | 2021 | Ground/ Frosted end |
Cryostat microtome | Thermo Fisher Scientific | — | Criostato CryoStar NX50 |
Cryotubes | Greiner Bio-One GmbH | Ref.: 122280. | CRYO S. PP, with screw cap, sterile. |
Da Vinci surgical system | Intuitive | PN1052082-US 10/2021 | XI model |
Dissection instruments | Bayer | — | Two tweezers and a surgical blade |
DPX Eukitt | Medizin- und Labortechnik GmbH | 6.00.01.0001.06.01.01 | |
Eosin | Agilent | 157252 | |
Fenestrated bipolar forceps | Intuitive | PN1052082-US 10/2021 | Part number: 471205. 14 lives. |
Force bipolar | Intuitive | PN1052082-US 10/2021 | Part number: 471405. 12 uses. |
Freezers | Thermo Scientific | MODEL 907. -80 ºC | |
Hematoxylin | Agilent | 157251 | |
Inmunohistochemistry Slides | Agilent-Dako | K802021-2 | |
Large needle driver | Intuitive | PN1052082-US 10/2021 | Part number: 471006. 15 uses. |
Maryland bipolar forceps | Intuitive | PN1052082-US 10/2021 | Part number: 471172. 14 uses. |
Microscope | Olympus | — | Olympus cx40 |
Microtome blades | PFM Medical | a35 | |
Monopolar curved scissors | Intuitive | PN1052082-US 10/2021 | Part number: 470179. 10 uses. |
OCT compound | NEG-50 | LOT.117340 | |
PlusSpeed S Single-use Biopsy Device with beveled tip | Peter Pflugbeil GmbH | PSS-1825-S | |
ProGasp forceps | Intuitive | PN1052082-US 10/2021 | Part number: 471093. 18 uses. |
Sample holder Disc | Davidson Cryo Chuck. BradleyProducts | 30 mm | |
Tissue ink | Pelikan | 2021 | Ink 4001 brilliant black (301168) |
Xylol | Quimipur | Ref. 169 |