Этот протокол представляет собой автоматизированный высокопроизводительный метод на основе изображений для идентификации соединений, модулирующих естественное уничтожение клеток рака молочной железы, опосредованное естественными клетками-киллерами, в присутствии терапевтического антитела против HER-2.
Иммунотерапия антиген-специфическими антителами или ингибиторами иммунных контрольных точек произвела революцию в терапии рака молочной железы. Клетки рака молочной железы, экспрессирующие рецептор эпидермального фактора роста HER2, могут быть нацелены на антитело против HER-2 трастузумаб. Антителозависимая клеточная цитотоксичность (ADCC) является важным механизмом, участвующим в противоопухолевом действии HER-2. Трастузумаб, связанный с раковыми клетками, может быть распознан Fc-рецепторами эффекторных клеток ADCC (например, естественных клеток-киллеров (NK), макрофагов и гранулоцитов), запуская цитотоксическую активность этих иммунных клеток, приводящую к гибели раковых клеток. Мы решили разработать анализ на основе изображений для количественного определения ADCC для идентификации новых соединений модулятора ADCC с помощью скрининга с высоким содержанием. В анализе сверхэкспрессирующие клетки рака молочной железы HER2 JIMT-1 культивируются совместно с клетками NK-92 в присутствии трастузумаба, а гибель клеток-мишеней количественно определяется с помощью автоматической микроскопии и количественного анализа изображений. Клетки-мишени отличаются от эффекторных клеток на основе их флуоресценции EGFP. Мы показываем, как библиотеки соединений могут быть протестированы в анализе для идентификации препаратов-модуляторов ADCC. Для этой цели была установлена тестовая пластина для библиотеки соединений с использованием случайно выбранных тонких химикатов с лабораторной полки. В библиотеку тестов также были включены три дестабилизирующих соединения микротрубочек (колхицин, винкристин, подофиллотоксин), которые, как ожидается, будут препятствовать миграции и дегрануляции NK-клеток. Тестовый экран идентифицировал все три положительных контрольных соединения как попадания, доказывающие пригодность метода для идентификации ADCC-модифицирующих лекарств в химической библиотеке. С помощью этого анализа можно проводить скрининг библиотеки соединений для идентификации соединений, усиливающих ADCC, которые могут быть использованы в качестве адъювантных терапевтических агентов для лечения пациентов, получающих противоопухолевую иммунотерапию. Кроме того, метод также может быть использован для выявления любых нежелательных побочных эффектов, ингибирующих ADCC терапевтических препаратов, принимаемых онкологическими больными по различным показаниям.
Иммунотерапия противоопухолевыми антителами, ингибиторами иммунных контрольных точек или Т-клетками, экспрессирующими химерные антигенные рецепторы (CAR-T), представляет собой мощный подход к лечению рака 1,2,3. Трастузумаб представляет собой гуманизированное моноклональное антитело против HER-2 (рецептор 2 эпидермального фактора роста человека), используемое для лечения HER-2-положительного рака молочной железы на ранней стадии или метастатического рака молочной железы, а также HER-2-положительного метастатического рака желудка 4,5,6. Он в первую очередь действует путем ингибирования стимулирующего пролиферацию эффекта эпидермального фактора роста4. Однако сообщалось, что трастузумаб эффективно вызывает гибель раковых клеток, даже если раковые клетки утратили свою реакцию на стимуляцию HER-27. Этот парадоксальный эффект антитела обусловлен антителозависимой клеточно-опосредованной цитотоксичностью (ADCC)7. ADCC может быть опосредован естественными клетками-киллерами (NK), гранулоцитами и макрофагами, известными как эффекторные клетки ADCC 8,9. Если антитело, такое как трастузумаб, связывается с опухолевыми клетками, то эти эффекторные клетки используют свои Fc-рецепторы для связывания постоянной (Fc) области антитела. Антитело соединяет опухолевые клетки и эффекторные клетки, несущие Fc-рецептор, вызывая высвобождение их цитотоксических медиаторов10. Естественные клетки-киллеры высвобождают цитотоксический груз своих гранул, содержащих перфорин, для создания пор в клеточной мембране-мишени и гранзима (запускающего сигнальные пути гибели клеток) в иммунный синапс, что приводит к апоптозу раковых клеток (см. рис. 1).
Рисунок 1: Взаимодействие эффекторных и целевых клеток в ADCC. Рецептор Fcγ на клеточной поверхности эффекторной NK-клетки распознает Fc-область антитела к HER2 трастузумабу, специфичную для молекулы HER2, экспрессируемой на поверхности опухолевой клетки. Таким образом, между двумя клетками устанавливается так называемый иммунологический синапс, индуцирующий направленный экзоцитоз цитотоксических гранул эффекторной клетки. Высвобожденные молекулы перфорина и гранзима в конечном итоге приводят к апоптозу клетки-мишени. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Ранее было разработано несколько анализов для количественной оценки цитотоксичности, включая ADCC. Золотым стандартом является метод высвобождения радиоактивного хрома, при котором клетки-мишени помечаются радиоактивным изотопом 51Cr, а ADCC количественно определяется путем измерения радиоактивности надосадочной жидкости лизированных клеток-мишеней11. Из-за очевидных проблем, связанных со строго регулируемым обращением, хранением и утилизацией радиоактивных фармаконов и отходов, этот метод становится все более непопулярным среди ученых-биологов. Кроме того, он также не поддается приложениям с высокой пропускной способностью. Измерение активности ферментов (например, лактатдегидрогеназы), высвобождаемых из убитых клеток-мишеней, может обеспечить нерадиоактивную альтернативу анализу 51Cr12. Эти анализы, однако, не могут различить гибель клеток-мишеней и эффекторных клеток. Электрическое измерение импеданса ячейки и подложки (ECIS) оказалось пригодным для количественной оценки ADCC13, но оборудование ECIS недоступно в большинстве лабораторий, и этот метод несовместим с высокопроизводительными приложениями / скринингом. Флуоресцентно меченные клетки представляют собой популярную альтернативу во многих анализах клеточной биологии и часто используются в проточной цитометрии или приложениях на основе считывателей планшетов14,15,16. Однако эти анализы часто содержат этапы промывки или иным образом несовместимы с высокопроизводительными приложениями (например, методами, основанными на проточной цитометрии). Некоторые популярные анализы цитотоксичности, которые теоретически должны подходить для количественного определения ADCC, не могут надежно определить эффективность ADCC13. В последнее время, с распространением флуоресцентной конфокальной микроскопии, анализы с высоким содержанием изображений становятся все более популярными в различных областях наук о жизни17. С одной стороны, оборудование для визуализации клеток в настоящее время довольно распространено, а с другой стороны, из полученных изображений можно собрать практически бесконечные морфологические параметры. Поэтому мы решили разработать анализ ADCC, совместимый с скринингом с высоким содержанием, и продемонстрировать его пригодность для скрининга составных библиотек.
Здесь мы представляем анализ ADCC на основе изображений и демонстрируем, как этот анализ можно использовать для скрининга с высоким содержанием (HCS) для идентификации соединений, модулирующих ADCC. Модель основана на клетках-мишенях карциномы молочной железы JIMT-1, эффекторных клетках CD16.176V.NK-92 и гуманизированном моноклональном антителе против HER2 трастузумабе. С помощью этого метода можно идентифицировать препараты, которые могут усиливать убивающее опухоль действие NK-клеток, или получить представление о механизме NK-клеточно-опосредованного ADCC путем идентификации малых молекул, интерферирующих ADCC. Мы предполагаем, что ученые-биологи, стремящиеся количественно оценить клеточно-опосредованную цитотоксичность с особым вниманием к ADCC, могут извлечь выгоду из использования этого анализа либо для науки, либо для разработки лекарств. Этот анализ может быть альтернативой, если лаборатория имеет доступ и некоторый опыт в флуоресцентной визуализации и количественном анализе изображений.
Реакция ADCC была описана относительно давно. Также были описаны ключевые молекулярные события процесса19. Методы измерения ADCC варьируются от золотого стандарта анализа высвобождения радиоактивного хрома, анализов высвобождения цитоплазматических ферментов до нескольких…
The authors have nothing to disclose.
LV получила финансирование от грантов Национального управления исследований, разработок и инноваций GINOP-2.3.2-15-2016-00010 TUMORDNS», GINOP-2.3.2-15-2016-00048-STAYALIVE и OTKA K132193, K147482. Клетки CD16.176V.NK-92 были получены от доктора Керри С. Кэмпбелла (Fox Chase Center, Philapedlphia, PA, от имени Brink Biologics, lnc. Сан-Диего, Калифорния), защищены патентами по всему миру и были лицензированы Nantkwest, lnc. Авторы благодарят Дьёрдя Вереба и Арпада Сёёра за помощь в использовании клеточной линии NK-92 и за технические консультации.
5-fluorouracil | Applichem | A7686 | in compound library |
96-well Cell Carrier Ultra plate | PerkinElmer | LLC 6055302 | |
Betulin | Sigma | B9757 | in compound library |
CD16.176V.NK92 cells | Nankwest Inc. | ||
Cerulenin | ChemCruz | sc-396822 | in compound library |
Cisplatin | Santa Cruz Biotechnology | sc-200896 | in compound library |
Colchicine | Sigma | C9754 | in compound library |
Concanavalin-A | Calbiochem | 234567 | in compound library |
Dexamethasone | Sigma | D4902 | in compound library |
DMEM/F-12 medium | Sigma | D8437 | in JIMT-1 EGFP medium |
DMSO | Sigma | D2650 | in compound library |
Etoposide | Sigma | E1383 | E1383 |
Fetal bovine serum (FBS) | Biosera | FB-1090/500 | JIMT-1 EGFP and NK medium |
Fisetin | Sigma | F4043 | in compound library |
Freedom EVO liquid handling robot | TECAN | ||
Gallotannin | Fluka Chemical Corp. | 16201 | in compound library |
Glutamine | Gibco | 35,050–061 | in NK medium |
Harmony software | PerkinElmer | ||
Humanized anti-HER2 monoclonal antibody (Herzuma) | EGIS Pharmaceuticals, Budapest Hungary | N/A | |
Humulin R (insulin) | Eli Lilly | HI0219 | JIMT-1 EGFP medium |
IL-2 | Novartis Hungária Kft. | PHC0026 | in NK medium |
Isatin | Sigma | 114618 | in compound library |
MEM Non-essential Amino Acids (MEM-NEAA) | Gibco | 11,140–050 | in NK medium |
Na-pyruvate | Lonza | BE13-115E | in NK medium |
Naringenin | Sigma | N5893 | in compound library |
NQDI-1 | Sigma | SML0185 | in compound library |
Opera Phenix High-Content Analysis equipment | PerkinElmer | ||
Penicillin–streptomycin | Biosera | LM-A4118 | JIMT-1 EGFP and NK medium |
Pentoxyfilline | Sigma | P1784 | in compound library |
Phosphate buffered saline (PBS) | Lonza | BE17-517Q | to wash the cells |
Podophyllotoxin | Sigma | P4405 | in compound library |
Quercetin | Sigma | Q4951 | in compound library |
Tannic acid | Sigma | T8406 | in compound library |
Temozolomide | Sigma | T2577 | in compound library |
Trypan blue 0.4% solution | Sigma | T8154 | for cell counting |
Vincristine sulfate | Sigma | V0400000 | in compound library |
α-MEM | Sigma | M8042 | in NK medium |