Aquí, se desarrollan modelos animales basados en ratones y conejos para lesiones mecánicas y químicas del epitelio corneal para detectar nuevas terapias y el mecanismo subyacente.
La lesión corneal en la superficie ocular, incluyendo quemaduras químicas y traumatismos, puede causar cicatrices graves, simblefarón, deficiencia de células madre limbares corneales y provocar un defecto epitelial corneal grande y persistente. El defecto epitelial con la siguiente opacidad corneal y la neovascularización periférica resultan en una discapacidad visual irreversible y dificultan el manejo futuro, especialmente la queratoplastia. Dado que el modelo animal se puede utilizar como una plataforma efectiva de desarrollo de fármacos, aquí se desarrollan modelos de lesión corneal en el ratón y quemaduras alcalinas en el epitelio corneal del conejo. El conejo blanco de Nueva Zelanda se utiliza en el modelo de quema alcalina. Se pueden aplicar diferentes concentraciones de hidróxido de sodio en el área circular central de la córnea durante 30 s bajo anestesia intramuscular y tópica. Después de una copiosa irrigación salina normal isotónica, se eliminó el epitelio corneal suelto residual con rebaba corneal profundamente hasta la capa de Bowman dentro de esta área circular. La cicatrización de heridas se documentó mediante tinción con fluoresceína bajo luz azul cobalto. Se utilizaron ratones C57BL/6 en el modelo traumático de epitelio corneal murino. La córnea central murina se marcó con un punzón de piel, de 2 mm de diámetro, y luego se desbridó con un removedor de anillo de óxido corneal con una rebaba de 0,5 mm bajo un microscopio estereoscópico. Estos modelos se pueden utilizar prospectivamente para validar el efecto terapéutico de gotas para los ojos o agentes mixtos como las células madre, que potencialmente facilitan la regeneración epitelial corneal. Al observar la opacidad corneal, la neovascularización periférica y la congestión conjuntival con estereomicroscopio y software de imágenes, se pueden monitorear los efectos terapéuticos en estos modelos animales.
La córnea humana consta de cinco capas principales y desempeña un papel fundamental en la refracción ocular para mantener la agudeza visual y la integridad estructural para proteger los tejidos intraoculares1. La parte más externa de la córnea es el epitelio corneal, compuesto por cinco a seis capas de células que se diferencian secuencialmente de las células basales y se mueven hacia arriba para desprenderse de la superficie ocular1. En comparación con la córnea en humanos y conejos de Nueva Zelanda, la córnea de ratón tiene una estructura corneal similar, pero una periferia más delgada que la parte central debido a un grosor reducido en el epitelio y el estroma2. Debido a su posición única en el sistema óptico ocular, muchos insultos externos como lesiones mecánicas, inoculación bacteriana y agentes químicos pueden poner en peligro fácilmente la integridad epitelial y provocar un defecto epitelial que amenaza la visión, queratitis infecciosa, fusión corneal e incluso perforación corneal.
Aunque varios agentes terapéuticos, como lubricantes, antibióticos, agentes antiinflamatorios, productos de autosuero y membrana amniótica ya se han utilizado para mejorar la reepitelización y reducir las cicatrices, otras posibles modalidades de tratamiento que pueden permitir la cicatrización de heridas, reducir la inflamación y suprimir la formación de cicatrices todavía se están desarrollando y probando en diferentes plataformas. Se han propuesto varios modelos animales para la cicatrización de heridas epiteliales corneales, incluida la eliminación del epitelio corneal con un removedor de anillo de óxido corneal en ratón diabético3, rasguños lineales sobre el epitelio corneal del ratón mediante una aguja estéril de 25 G para la inoculación bacteriana4, eliminación asistida por trepines del epitelio corneal mediante removedor de anillo de óxido corneal5, cauterización epitelial sobre la mitad de la córnea y el limbo6 , abrasión corneal de conejo facilitada por trefina por una hoja de bisturí opaca7, y lesión de la córnea bovina por congelación repentina en nitrógeno líquido8.
Además de la lesión mecánica al epitelio corneal, los agentes químicos también son insultos comunes a la superficie ocular, especialmente los agentes ácidos y alcalinos. El hidróxido de sodio (NaOH, 0.1-1 N para 30-60 s) es uno de los productos químicos comúnmente utilizados en modelos murinos y de conejo de quemaduras químicas corneales 9,10,11,12,13. El etanol al 100% también se había aplicado a la córnea en el modelo de quemadura química de rata, seguido de un desguace mecánico adicional utilizando una cuchilla quirúrgica14. Dado que el mantenimiento de una superficie ocular sana depende de unidades funcionales, incluidos los párpados, las glándulas de Meibomio, el sistema lagrimal, la conjuntiva y la córnea, los modelos animales in vivo tienen algunos méritos sobre las células epiteliales de córnea cultivadas ex vivo o los tejidos corneales. En este artículo, se demuestra el modelo de ratón de la herida por abrasión corneal y el modelo de conejo de quemadura alcalina corneal.
Los modelos de ratón y conejo de lesión corneal proporcionan una plataforma útil ex vivo e in vivo para monitorear la cicatrización de heridas, probar nuevas terapias y estudiar los mecanismos subyacentes de las vías de curación y tratamiento de heridas. Se pueden utilizar diferentes modelos animales para un experimento a corto o largo plazo, dependiendo del propósito de la investigación. Por ejemplo, después de crear un defecto epitelial en la córnea de ratón in vivo, se podría usa…
The authors have nothing to disclose.
El estudio fue financiado por el Consejo de Energía Atómica de Taiwán (Subvención No. A-IE-01-03-02-02), el Ministerio de Ciencia y Tecnología (Subvención No. NMRPG3E6202-3) y el Proyecto de Investigación Médica Chang Gung (Subvención No. CMRPG3H1281).
6/0 Ethicon vicryl suture | Ethicon | 6/0VICRYL | tarsorrhaphy |
Barraquer lid speculum | katena | K1-5355 | 15 mm |
Barraquer needle holder | Katena | K6-3310 | without lock |
Barron Vacuum Punch 8.0 mm | katena | K20-2108 | for cutting filter paper |
C57BL/6 mice | National Laboratory Animal Center | RMRC11005 | mouse strain |
Castroviejo forceps 0.12 mm | katena | K5-2500 | |
Corneal rust ring remover with 0.5 mm burr | Algerbrush IITM; Alger Equipment Co., Inc. Lago Vista, TX | CHI-675 | for debridement of the corneal epithelium |
Filter paper | Toyo Roshi Kaisha,Ltd. | 1.11 | |
Fluorescein sodum ophthalmic strips U.S.P | OPTITECH | OPTFL100 | staining for corneal epithelial defect |
Ketamine hydrochloride | Sigma-Aldrich | 61763-23-3 | intraperitoneal or intramuscular anesthetics |
New Zealand White Rabbits | Livestock Research Institute, Council of Agriculture,Executive Yuan | Rabbit models | |
Normal saline | TAIWAN BIOTECH CO., LTD. | 100-120-1101 | |
Proparacaine | Alcon | ALC2UD09 | topical anesthetics |
Skin biopsy punch 2mm | STIEFEL | 22650 | |
Sodium chloride (NaOH) | Sigma-Aldrich | 1310-73-2 | a chemical agent for alkali burn |
Stereomicroscope | Carl Zeiss Meditec, Dublin, CA | SV11 | microscope for surgery |
Westcott Tenotomy Scissors Medium | katena | K4-3004 | |
Xylazine hydrochloride 23.32 mg/10 mL | Elanco animal health Korea Co., LTD. | 047-956 | intraperitoneal or intramuscular anesthetics |