כאן, מודלים של בעלי חיים המבוססים על עכבר וארנב מפותחים עבור פגיעה מכנית וכימית של אפיתל הקרנית כדי לסנן טיפולים חדשים ואת המנגנון הבסיסי.
פגיעה בקרנית בפני השטח של העין, כולל כוויה כימית וטראומה, עלולה לגרום לצלקות קשות, סימפלפרון, מחסור בתאי גזע לימבליים בקרנית, ולגרום לפגם אפיתל גדול ומתמשך בקרנית. פגם אפיתל עם אטימות הקרנית הבאה וניאו-וסקולריזציה היקפית גורמים לליקוי ראייה בלתי הפיך ומעכבים ניהול עתידי, במיוחד קרטופלסטיקה. מכיוון שהמודל החייתי יכול לשמש כפלטפורמה יעילה לפיתוח תרופות, מפותחים כאן מודלים של פגיעה בקרנית העכבר וצריבה אלקלית לאפיתל קרנית ארנבת. ארנב לבן ניו זילנדי משמש במודל הכוויה האלקלי. ריכוזים שונים של נתרן הידרוקסידי יכולים להיות מיושמים על האזור המעגלי המרכזי של הקרנית במשך 30 שניות תחת הרדמה תוך שרירית ומקומית. לאחר השקיה איזוטונית תקינה של מי מלח, הוסר אפיתל קרנית רופף שאריות עם בור הקרנית עמוק עד לשכבת באומן בתוך אזור מעגלי זה. ריפוי פצעים תועד על ידי כתמים פלואורסצאין תחת אור כחול קובלט. עכברי C57BL/6 שימשו במודל הטראומטי של אפיתל קרנית מורין. הקרנית המרכזית של המורין סומנה באמצעות ניקוב עור, בקוטר 2 מ”מ, ולאחר מכן פוזרה על ידי מסיר טבעת חלודה בקרנית עם בור 0.5 מ”מ תחת סטריאוסקופ. מודלים אלה יכולים לשמש באופן פרוספקטיבי כדי לאמת את ההשפעה הטיפולית של טיפות עיניים או סוכנים מעורבים כגון תאי גזע, אשר עשויים להקל על התחדשות אפיתל הקרנית. על ידי התבוננות באטימות הקרנית, ניאו-וסקולריזציה היקפית וגודש בלחמית באמצעות סטריאומיקרוסקופ ותוכנות הדמיה, ניתן לנטר השפעות טיפוליות במודלים אלה של בעלי חיים.
הקרנית האנושית מורכבת מחמש שכבות עיקריות וממלאת תפקיד מרכזי בשבירת העין לשמירה על חדות הראייה והשלמות המבנית להגנה על רקמות תוך עיניות1. החלק החיצוני ביותר של הקרנית הוא אפיתל הקרנית, המורכב מחמש עד שש שכבות של תאים המתמיינים ברצף מתאי הבסיס ונעים כלפי מעלה כדי לנשור מפני השטח של העין1. בהשוואה לקרנית בבני אדם ובארנבים ניו זילנדיים, לקרנית העכבר מבנה קרנית דומה, אך פריפריה דקה יותר מהחלק המרכזי בשל עובי מופחת באפיתל ובסטרומה2. בגלל מיקומו הייחודי במערכת האופטית העינית, עלבונות חיצוניים רבים כגון פגיעה מכנית, חיסון חיידקי וחומרים כימיים עלולים לסכן בקלות את שלמות האפיתל ולהוביל עוד יותר לפגם אפיתל מסכן ראייה, קרטיטיס זיהומיות, המסת קרנית ואפילו ניקוב הקרנית.
למרות שחומרים טיפוליים שונים, כגון חומרי סיכה, אנטיביוטיקה, חומרים אנטי דלקתיים, מוצרי אוטו-סרום וקרומי מי שפיר כבר שימשו לשיפור אפיתל מחדש ולהפחתת צלקות, שיטות טיפול פוטנציאליות אחרות שיכולות לאפשר ריפוי פצעים, להפחית דלקת ולדכא היווצרות צלקות עדיין מפותחות ונבחנות על פלטפורמות שונות. הוצעו מודלים שונים של בעלי חיים לריפוי פצעי אפיתל בקרנית, ביניהם הסרת אפיתל קרנית באמצעות מסיר טבעות חלודה בקרנית בעכבר סוכרתי3, שריטות ליניאריות מעל אפיתל הקרנית של עכבר על ידי מחט סטרילית 25 גרם לחיסון חיידקי4, הסרה בעזרת טרפין של אפיתל הקרנית על ידי מסיר טבעת חלודה בקרנית5, צריבה אפיתל מעל מחצית הקרנית ולימבוס6 שחיקת קרנית ארנב בסיוע טרפין על ידי להב אזמל עמום7, ופגיעה בקרנית בקר על ידי הקפאת הבזק בחנקן נוזלי8.,
מלבד פגיעה מכנית באפיתל הקרנית, חומרים כימיים הם גם עלבונות נפוצים בפני השטח של העין, במיוחד חומרים חומציים ואלקליים. נתרן הידרוקסידי (NaOH, 0.1-1 N עבור 30-60 שניות) הוא אחד הכימיקלים הנפוצים במודלים של מורין וארנב של כוויות כימיות בקרנית 9,10,11,12,13. 100% אתנול הוחל גם על הקרנית במודל הכוויה הכימית של חולדה, ולאחר מכן גריטה מכנית נוספת באמצעות להב כירורגי14. מכיוון ששמירה על משטח עיני בריא מסתמכת על יחידות תפקודיות, כולל העפעפיים, בלוטות המייבומיאן, מערכת הדמעות, הלחמית והקרנית, למודלים של בעלי חיים in vivo יש כמה יתרונות על פני תאי אפיתל של הקרנית בתרבית ex vivo או רקמות הקרנית. במאמר זה, מודל העכבר של פצע שחיקה הקרנית, ואת מודל ארנב של כוויה אלקלית הקרנית מודגמים.
מודלים של עכברים וארנבים של פגיעות בקרנית מספקים פלטפורמה שימושית של ex vivo ו-in vivo למעקב אחר ריפוי פצעים, בדיקת טיפולים חדשים ולימוד מנגנונים בסיסיים של ריפוי פצעים ומסלולי טיפול. מודלים שונים של בעלי חיים יכולים לשמש לניסוי לטווח קצר או ארוך, בהתאם למטרת המחקר. לדוגמה, לאחר יצירת פ…
The authors have nothing to disclose.
המחקר מומן על ידי המועצה לאנרגיה אטומית של טייוואן (מענק מס’ A-IE-01-03-02-02), משרד המדע והטכנולוגיה (מענק מס’ NMRPG3E6202-3) ופרויקט המחקר הרפואי צ’אנג גונג (מענק מס’ CMRPG3H1281).
6/0 Ethicon vicryl suture | Ethicon | 6/0VICRYL | tarsorrhaphy |
Barraquer lid speculum | katena | K1-5355 | 15 mm |
Barraquer needle holder | Katena | K6-3310 | without lock |
Barron Vacuum Punch 8.0 mm | katena | K20-2108 | for cutting filter paper |
C57BL/6 mice | National Laboratory Animal Center | RMRC11005 | mouse strain |
Castroviejo forceps 0.12 mm | katena | K5-2500 | |
Corneal rust ring remover with 0.5 mm burr | Algerbrush IITM; Alger Equipment Co., Inc. Lago Vista, TX | CHI-675 | for debridement of the corneal epithelium |
Filter paper | Toyo Roshi Kaisha,Ltd. | 1.11 | |
Fluorescein sodum ophthalmic strips U.S.P | OPTITECH | OPTFL100 | staining for corneal epithelial defect |
Ketamine hydrochloride | Sigma-Aldrich | 61763-23-3 | intraperitoneal or intramuscular anesthetics |
New Zealand White Rabbits | Livestock Research Institute, Council of Agriculture,Executive Yuan | Rabbit models | |
Normal saline | TAIWAN BIOTECH CO., LTD. | 100-120-1101 | |
Proparacaine | Alcon | ALC2UD09 | topical anesthetics |
Skin biopsy punch 2mm | STIEFEL | 22650 | |
Sodium chloride (NaOH) | Sigma-Aldrich | 1310-73-2 | a chemical agent for alkali burn |
Stereomicroscope | Carl Zeiss Meditec, Dublin, CA | SV11 | microscope for surgery |
Westcott Tenotomy Scissors Medium | katena | K4-3004 | |
Xylazine hydrochloride 23.32 mg/10 mL | Elanco animal health Korea Co., LTD. | 047-956 | intraperitoneal or intramuscular anesthetics |