Summary

Modelo de trasplante de aórtica cervical murino utilizando una técnica de manguito no sutura modificada

Published: November 02, 2019
doi:

Summary

Aquí, presentamos un protocolo de trasplante aórtico heterotópico en ratones utilizando la técnica del manguito no sutura en un modelo de murina cervical. Este modelo se puede utilizar para estudiar la patología subyacente de la vasculopatía por aloinjerto crónico (CAV) y puede ayudar a evaluar nuevos agentes terapéuticos para prevenir su formación.

Abstract

Con la introducción de potentes protocolos inmunosupresores, se pueden realizar diferentes avances en la prevención y terapia de episodios de rechazo agudo. Sin embargo, sólo se pudo observar una mejora menor en los resultados a largo plazo de los órganos sólidos trasplantados en las últimas décadas. En este contexto, la vasculopatía por aloinjerto crónico (CAV) sigue representando la principal causa de insuficiencia orgánica tardía en el trasplante cardíaco, renal y pulmonar.

Hasta ahora, la patogénesis subyacente del desarrollo de CAV sigue sin estar clara, explicando por qué actualmente faltan estrategias de tratamiento eficaces y haciendo hincapié en la necesidad de modelos experimentales pertinentes para estudiar la fisiopatología subyacente que conduce a Formación de CAV. El siguiente protocolo describe un modelo de trasplante aórtico cervical heterotópico murino utilizando una técnica de manguito no sutura modificada. En esta técnica, un segmento de la aorta torácica se interposiciona en la arteria carótida común derecha. Con el uso de la técnica del manguito no sutura, se puede establecer un modelo fácil de aprender y reproducible, minimizando la posible heterogeneidad de las micro anastomosas vasculares suturadas.

Introduction

En las últimas seis décadas, el trasplante de órganos sólidos ha evolucionado de un procedimiento experimental a un estándar de atención para el tratamiento de la insuficiencia orgánica terminal1. Debido a la mejora de los agentes antimicrobianos, las técnicas quirúrgicas y el avance en los regimientos inmunosupresores, la tasa de éxito temprana del trasplante de órganos sólidos ha aumentado significativamente en las últimas décadas2.

Sin embargo, las tasas de supervivencia del injerto a largo plazo no han mejorado significativamente de la misma manera3. El desarrollo de CAV es el principal factor que limita la supervivencia a largo plazo4,5,6. Esta patología se caracteriza por la formación de una capa neointimal concéntrica que consiste en células musculares lisas, lo que conduce al estrechamiento progresivo del vaso y a la malperfusión consecutiva del órgano sólido trasplantado. En los receptores de trasplante de corazón, las lesiones de CAV se pueden diagnosticar en hasta el 75% de los pacientes 3 años después del trasplante7.

La fisiopatología de CAV aún no se entiende completamente. Parece estar relacionado con numerosos factores inmunológicos y no inmunológicos, lo que conduce a daños endoteliales con posterior activación endotelial y disfunción8. Hasta ahora, no existe ninguna opción de tratamiento causal para la prevención de la CAV, haciendo hincapié en la necesidad de un modelo animal pequeño reproducible con el fin de estudiar la formación y la posible terapia de CAV.

Con el uso de modelos de trasplante aórtico murino, CAV como lesiones se puede ver 4 semanas después del trasplante. Esas lesiones consisten principalmente en células musculares lisas vasculares, por lo tanto, que se asemejan a la patología humana. Debido a una amplia variedad de ratones transgénicos y noqueadores, el uso de modelos de ratón en patologías asociadas al trasplante ofrece una oportunidad única para identificar nuevas opciones terapéuticas y comprender su desarrollo. Debido al pequeño diámetro de los vasos trasplantados sin embargo, el uso de modelos de ratón se asocia comúnmente con largas curvas de aprendizaje y una alta tasa de complicaciones inicial9. Con la introducción de la técnica del manguito no sutura, esta parte más desafiante de la operación se puede facilitar y el diámetro de la anastomosis se mantiene constante10,11.

Protocol

Todos los experimentos se realizaron de acuerdo con las directrices de la ley alemana de bienestar animal (TierSchG.) (AZ: 55.2-1-54-2532.Vet_02-80-2015). 1. Alojamiento animal Para experimentos, utilice ratones machoC57BL/6 y BALB/c que pesen 20-25 g con ratones C57BL/6 como animales receptores y ratones BALB/c como animales donantes. Comprar los animales y la casa en una instalación libre de patógenos de barrera, de acuerdo con las directrices de FELASA para el monitore…

Representative Results

En el modelo de trasplante totalmente mHC-no coincidente, se puede ver una capa neointimal concéntrica 4 semanas después del trasplante(Figura 2). Esta capa consiste principalmente en células musculares lisas vasculares como la tinción inmunohistológica para SM22 (un marcador selectivo para las células musculares lisas vasculares maduras) revelado. Como se indicó anteriormente, estas células musculares lisas vasculares son patognomónicas para las lesiones que se ven en la vasculopat…

Discussion

La vasculopatía crónica de aloinjerto es la principal causa de pérdida tardía del injerto después del trasplante de órganos sólidos del corazón y probables aloinjertos renales y pulmonares8. Hasta el momento, no se podría desarrollar ningún régimen terapéutico causal para prevenir la formación de CAV.

La fisiopatología de CAV es multifactorial e implica aspectos inmunológicos y no inmunológicos16. El uso de modelos de roedores en …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ninguno.

Materials

Balb-c Mice (H2-d) Charles River Strain# 028 Donor animal
Bipolar cautery system ERBE ICC 50 / 20195-023 Bipolar cautery
C57BL/6J (H-2b) Charles River Strain# 027 Recipient animal
Halsey Needle Holders FST 12501-12 Needle Holder
Halsted-Mosquito Forceps AESCULAP BH111R Curved Clamp
Medical Polyimide Tubing Nordson MEDICAL 141-0031 Cuff-Material
Micro Serrefines FST 18055-04 Micro Vessel Clip
Micro-Adson Forceps (serrated) FST 11018-12 Standard Forceps
Micro-Serrefine Clamp Applying Forceps FST 18057-14 Clipapplicator
S&T Forceps – SuperGrip Tips (Angled 45°) S&T 00649-11 Fine Forceps
S&T Vessel Dilating Forceps – Angled 10° (Tip diameter 0.2 mm) S&T 00125-11 Vesseldilatator
Schott VisiLED Set Schott MC 1500 / S80-55 Light
Stereoscopic microscope ZEISS SteREO Discovery.V8 Microscope
Student Fine Scissors / Surgical Scissors – Sharp-Blunt FST 91460-11 / 14001-12 Standard Sissors
Vannas-Tübingen Spring Scissors (curved, 8.5 cm) FST 15004-08 Microsissors (curved)
Vannas-Tübingen Spring Scissors (straight, 8.5 cm) FST 15003-08 Microsissors (straight)

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Cite This Article
Ryll, M., Bucher, J., Drefs, M., Bösch, F., Kumaraswami, K., Schiergens, T., Niess, H., Schoenberg, M., Jacob, S., Rentsch, M., Guba, M., Werner, J., Andrassy, J., Thomas, M. N. Murine Cervical Aortic Transplantation Model using a Modified Non-Suture Cuff Technique. J. Vis. Exp. (153), e59983, doi:10.3791/59983 (2019).

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