Summary

Symmetric Bihemispheric Postmortem cerveau de coupe pour étudier en santé et états pathologiques du cerveau chez les humains

Published: December 18, 2016
doi:

Summary

procédures de coupe du cerveau organisés sont nécessaires pour corréler les phénomènes neuropsychiatriques spécifiques avec des diagnostics neuropathologiques définitives. boutures de cerveau sont effectuées différemment selon diverses éventualités clinico-académique. Ce protocole décrit une procédure de coupe du cerveau bihemispheric symétrique pour étudier les différences hémisphériques dans les pathologies du cerveau humain et de maximiser les techniques biomoléculaire / neuroimagerie actuelles et futures.

Abstract

Neuropathologistes, parfois, se sentent intimidés par la quantité de connaissances nécessaires pour produire des diagnostics définitifs des phénomènes neuropsychiatriques complexes décrits chez les patients pour lesquels une autopsie du cerveau a été demandée. Bien que les progrès des sciences biomédicales et neuroimagerie ont révolutionné le domaine neuropsychiatrique, ils ont également généré l'idée trompeuse que les autopsies du cerveau ont seulement une valeur de confirmation. Cette idée fausse a créé une réduction drastique des taux d'autopsie et, par conséquent, une possibilité réduite d'effectuer des enquêtes neuropathologiques plus détaillées et approfondies, qui sont nécessaires pour comprendre de nombreux aspects normaux et pathologiques encore inconnus du cerveau humain. La méthode déductive traditionnelle de corrélation entre les phénomènes neuropsychiatriques observés et correspondant localisation / caractérisation de leurs corrélats neurohistologiques possibles continue d'avoir une valeur indéniable. Dans le contexte de neuropsychimaladies triques, la méthode clinicopathologique traditionnelle est toujours la meilleure méthodologie possible (et souvent le seul disponible) pour relier les caractéristiques neuropsychiatriques uniques à leurs substrats neuropathologiques correspondants, puisqu'il repose précisément sur l'évaluation physique directe des tissus du cerveau. L'évaluation des cerveaux post mortem est basée sur le cerveau des procédures qui varient entre les différents centres de neuropathologie de coupe. boutures de cerveau sont effectuées d'une manière relativement extensive et systématique sur la base des diverses éventualités cliniques et universitaires présents dans chaque établissement. Une méthodologie de coupe du cerveau bi-hémisphérique plus anatomiquement inclusive et symétrique devrait au moins être utilisé à des fins de recherche en neuropathologie humaine pour étudier de manière cohérente, en profondeur, des conditions normales et pathologiques avec les particularités du cerveau humain (c. -à- spécialisation hémisphérique et latéralisation pour particulier les fonctions). Une telle méthode offrirait une colle plus complètection des cerveaux neuropathologique bien caractérisés disponibles pour les techniques de la biotechnologie et de neuroimagerie actuels et futurs. Nous décrivons une procédure de coupe du cerveau bi-hémisphérique symétrique pour l'étude des différences hémisphériques dans les pathologies du cerveau humain et pour une utilisation avec le courant, ainsi que les futures techniques biomoléculaire / neuroimagerie.

Introduction

Neuropathologistes ont le privilège scientifique, l'honneur intellectuelle, et l'obligation de diagnostic pour évaluer les cerveaux humains. Pendant de nombreuses décennies, les descriptions cliniques détaillées des maladies du cerveau et des efforts importants pour individualisent leurs corrélats neurohistologiques possibles dans le cerveau post-mortem humains ont été entreprises. Historiquement, ces efforts représentent la modalité la plus productive par lequel les sciences médicales et la neurologie, en particulier, ont progressé dans l'ère moderne. Merci à neuropathologistes précédents éminents et leur dévouement, la détermination, la bourse, et étonnante capacité de discriminer entre les tissus cérébraux normaux et anormaux (en utilisant souvent des outils très rudimentaires), nous pouvons maintenant étudier et des maladies telles que la maladie d'Alzheimer-Perusini cibles (injustement seulement appelé la maladie d'Alzheimer maladie; APD / AD) 1, la maladie de Parkinson (PD) 2, la maladie de Creutzfeldt-Jakob (MCJ) 3, la maladie de Lou Gehrig / sclérose latérale Sclerosis (ALS) 4, et Guam maladies 5, pour ne citer que quelques – uns.

Des techniques avancées de neuroimagerie, tels que la haute définition tomodensitométrie (c. -à- scan en spirale multisection CT; angiographie CT) (c. -à- IRMf, diffusion-IRM, tractographie-IRM, etc.) tomographie par émission, l' imagerie par résonance magnétique fonctionnelle et morphologique, Positron (TEP), l'imagerie par ultrasons à base, et d'autres, ont certainement modifié notre approche générale sur la façon de diagnostiquer et guérir les patients neurologiques et psychiatriques. Néanmoins, bien que les techniques de neuroimagerie sont capables de visualiser le cerveau d'une personne de son vivant, ils ne proposent pas la possibilité, pour le moment se produire, d'analyser directement les structures cellulaires et sous-cellulaires hautement complexes de cellules, telles que les neurones; ou de visualiser, d'une marque, et de quantifier des types spécifiques de lésions intracellulaires; ou pour indiquer avec précision leur localisation neuroanatomique ou sous-régional à circuital et sousniveaux anatomiques Circuital. Par exemple, les techniques de neuroimagerie ne peuvent pas identifier ou localiser corps de Lewy (LB) dans les neurones pigmentées de la substantia nigra (SN), une caractéristique pathologique commune associée à PD, ou les dégénérescences neurofibrillaires (NFT) dans le cortex entorhinal, une caractéristique classique de la MA et d'autres pathologies cérébrales. enquêtes neuropathologiques associées à la microscopie numérique de pointe sont encore unreplaceable des corrélations clinicopathologiques détaillées et, par conséquent, pour les diagnostics définitifs.

En raison des propriétés particulières anatomo-fonctionnelle du cerveau humain, et en particulier à sa localisation anatomique (qui est, à l' intérieur du crâne, un système de protection naturelle qui ne permet pas l'examen direct de son contenu), l'introduction de techniques in vivo de neuroimagerie ont les cliniciens et les chercheurs extraordinairement aidé à trouver des réponses initiales à quelques-uns des mystères de ce tissu complexe. Cependant, il n'y a aucune preuve clinique ou neuroimagiméthodologie ng qui peut remplacer l'occasion unique d'analyser directement les tissus du cerveau lors d'une autopsie. Seule la collecte organisée, la préservation et la catégorisation des cerveaux humains peut permettre de diriger des enquêtes et systématiques des cellules neuronales et non neuronales, leurs constituants subcellulaires, intracellulaire et des lésions pathologiques extracellulaires, et tout type d'anomalie dans le cerveau pour confirmer, modifier ou redéfinir les diagnostics cliniques et de découvrir de nouvelles corrélations clinicopathologiques. Une des limitations apparentes concernant l'évaluation du cerveau à l'autopsie a été le fait que cette procédure est une méthode transversale. Il y aura toujours un délai entre un processus continu neuropathologique (manifeste ou non clinique) et la possibilité, le cas échéant, de le définir au niveau neurohistologique. Ceci est principalement dû à l'incapacité du cerveau humain à se régénérer. Il est actuellement impossible d'obtenir les tissus du cerveau in vivo sans créer de pedommages rmanent. Par conséquent, il est impossible d'évaluer longitudinalement et sur le plan neuropathologique le même cerveau / personnes. Toutefois, les procédures cerveau bancaires normalisées et une prise de conscience accrue pour le don du cerveau auprès du grand public pourrait grandement contribuer à la résolution des problèmes de synchronisation cerveau autopsie par augmentation constante du nombre de cas pour recueillir et analyser. De cette manière, un nombre plus adéquat de cerveaux post-mortem ont pu être obtenus pour définir des motifs constants d'origine pathologique et la progression de chaque type de lésion cérébrale associée à chaque maladie du cerveau humain. Cela nécessiterait le don et la collecte d'autant de cerveaux que possible de patients touchés par un trouble neuropsychiatrique, ainsi que des sujets témoins en bonne santé à tous les âges. Une méthode possible pourrait être la collecte autant de cerveaux post mortem que possible des centres médicaux généraux et spécialisés comme une routine standard. La nécessité pour les dons du cerveau a été récemment exprimépar ceux qui étudient la démence et vieillissement normal 6. La même nécessité doit être exprimée par le champ neuropsychiatrique dans son ensemble.

Pour ce qui précède et pour d'autres raisons, une mise à jour des procédures de coupe du cerveau en cours est nécessaire. En outre, le cerveau des procédures de coupe doit être universellement standardisée entre les différents centres de recherche de neuropathologie à travers le monde, en prenant également en compte la possibilité d'utiliser des techniques biotechnologiques actuelles et futures pour mieux enquêter et, espérons-le, de comprendre définitivement, les causes et les mécanismes des maladies du cerveau dans humains.

Ici, principalement à des fins de recherche, nous décrivons une méthode symétrique pour le cerveau post-mortem de coupe chez les humains. Cette procédure propose la collecte de régions plus cérébral que fait normalement et des deux hémisphères cérébraux et cérébelleux. Une procédure de coupe du cerveau bi-hémisphérique symétrique conviendra beaucoup mieux avec nos connaissances actuelles de l'hommeneuroanatomie, neurochimie, et neurophysiologie. Cette méthode permet également la possibilité d'analyser les caractéristiques uniques neuropathologique du cerveau humain, tels que la spécialisation hémisphérique et la latéralisation qui sont associés à des fonctions cognitives et non cognitives supérieures typiquement ou exclusivement présente dans notre espèce. Qu'il y ait des relations pathogéniques spécifiques entre l'hémisphère spécialisation / latéralisation et des types spécifiques de lésions cérébrales, ou si un événement pathogénique neuropsychiatrique particulière est d'abord, prévalente, ou exclusivement associés à un hémisphère spécifique et la fonction ne sont pas actuellement connus. En décrivant cette procédure de coupe du cerveau symétrique, nous nous efforçons de proposer une méthode mise à jour de la dissection du cerveau humain qui pourrait aider à mieux comprendre les conditions normales et pathologiques dans un tissu hautement spécialisé, le cerveau. Cette méthode prend également en considération les aspects de l'hémisphère morpho-fonctionnelles qui existent seulement chez les humains.

Protocol

Les procédures impliquant des tissus humains post-mortem ont été examinés par le comité d'examen institutionnel et exemptés en vertu de 45 CFR (Code of Federal Regulations). NOTE: Le protocole décrit une procédure de coupe du cerveau bihemispheric symétrique pour l'évaluation du cerveau post-mortem finalisé pour les études neuropathologiques chez les humains. Des descriptions détaillées des appareils, instruments, matériaux et fournitures nécessaires pour effectuer la coupe du cerveau humain seront exclus. Ma…

Representative Results

Protocole Longueur Le temps passé pour une procédure de coupe unique symétrique bihemispheric fixe du cerveau est estimé à 1 h (hors temps passé la mise en place de la table de dissection, des outils et surfaces de coupe; étiquetage;. Etc). Le temps nécessaire à une seule alternance bi-hémisphérique symétrique gelé et le cerveau fixe la procédure de coupe est estimée à 2 h. Il peut prendre au moins entre …

Discussion

Cette méthode de cerveau de coupe peut être adaptée aux besoins spécifiques de chaque laboratoire de neuropathologie (par exemple, en réduisant le nombre de régions cérébrales pour évaluer pour chaque hémisphère), tout en conservant la procédure de coupe symétrique bihemispheric comme l'une de ses principales caractéristiques. Ce protocole proposé pourrait être utilisé pour des procédures de routine (centres neuropathologiques orientés vers la recherche) ou seulement lorsque cela est nécessaire (…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank the thousands of brain donors, patients, families, and neuroscientists around the world who, during the last two centuries and through their generous gifts and intellectual efforts, helped to discover how the human brain works, to understand devastating brain diseases, and to develop treatments thereof. We particularly thank Mrs. Cecilia V. Feltis for editing and reviewing this manuscript.

Materials

Copy of signed informed consent allowing autopsy and brain donation for research use.
Detailed clinical history of the subject which should include a detailed description of any neurologic and psychiatric symptoms and signs.
Medical or not-medical video-recordings when available (especially useful in movement disorders field). Next-of-kin’s consent required.
Neuroimaging, neurophysiology, neuropsychiatric and assessment or clinicometric scales.
Genetic and family history data. Genetic reports review, if neurogenetic diseases were diagnosed.
Histology Container ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES 64233-24
Histology Cassettes VWR 18000-142 (orange)
Histology Cassettes VWR 18000-132 (navy)
Knife Handles and Disposable Blades ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES 62560-04
Long Blades ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES 62561-20
Disposable Blade Knife Handles ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES 72040-08
Scalpel Blades ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES 72049-22
Accu-Punch 2 mm ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES 69038-02 
Polystyrene Containers – Sterile ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES 64240-12
Dissecting Board ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES 63307-30
Formalin solution, neutral buffered, 10% Sigma-Aldrich HT501128 SIGMA
Hematoxylin Solution, Gill No. 2 Sigma-Aldrich GHS280 SIGMA
Eosin Y solution, aqueous Sigma-Aldrich HT1102128 SIGMA
anti-beta-amyloid Covance, Princeton, NJ SIG-39220 1  500
anti-tau Thermo Fisher Scientific MN1020 1  500
anti-alpha-synuclein Abcam ab27766 1  500
anti-phospho-TDP43 Cosmo Bio Co. TIP-PTD-P02 1 2000
Digital Camera Any
Head Impulse Sealing machine  Grainger 5ZZ35

References

  1. Braun, B., Stadlober-Degwerth, M., Hajak, G., Klunemann, H. H. 100th anniversary of Perusini’s second case: patient RM and his kindred. Am. J. Alzheimers Dis. Other Demen. 25, 189-192 (2010).
  2. Jellinger, K. A. Neuropathology of sporadic Parkinson’s disease: evaluation and changes of concepts. Mov Disord. 27, 8-30 (2012).
  3. Head, M. W. Human prion diseases: molecular, cellular and population biology. Neuropathology. 33, 221-236 (2013).
  4. Hirano, A. Neuropathology of ALS: an overview. Neurology. 47, S63-S66 (1996).
  5. Oyanagi, K., Wada, M. Neuropathology of parkinsonism-dementia complex and amyotrophic lateral sclerosis of Guam: an update. J. Neurol. 246 (Suppl 2), 19-27 (1999).
  6. Montine, T. J., et al. Recommendations of the Alzheimer’s disease-related dementias conference. Neurology. 83, 851-860 (2014).
  7. Yong-Hing, C. J., Obenaus, A., Stryker, R., Tong, K., Sarty, G. E. Magnetic resonance imaging and mathematical modeling of progressive formalin fixation of the human brain. Magn Reson Med. 54, 324-332 (2005).
  8. Love, S., Perry, A., Ironside, I., Budka, H. . Greenfield’s Neuropathology. , (2015).
  9. Davis, R. L., Robertson, D. M. . Textbook of Neuropathology. , (1996).
  10. Dickson, D. W., et al. Neuropathological assessment of Parkinson’s disease: refining the diagnostic criteria. Lancet Neurol. 8 (12), 1150-1157 (2009).
  11. Nieuwenhuys, R., Voogd, J., van Huijzen, C. . The Human Central Nervous System: A Synopsis and Atlas. , (2008).
  12. Netter, F. H. . Atlas of Human Anatomy. , (2005).
  13. Brown, R. W. . Histologic Preparations: Common Problems and Their Solutions. , (2009).
  14. Durrenberger, P. F., et al. Effects of antemortem and postmortem variables on human brain mRNA quality: a BrainNet Europe study. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 69, 70-81 (2010).
  15. Hyman, B. T., et al. National Institute on Aging-Alzheimer’s Association guidelines for the neuropathologic assessment of Alzheimer’s disease. Alzheimers Dement. 8, 1-13 (2012).
  16. Gelb, D. J., Oliver, E., Gilman, S. Diagnostic criteria for Parkinson disease. Arch Neurol. 56, 33-39 (1999).
  17. McKeith, I. G., et al. Diagnosis and management of dementia with Lewy bodies: third report of the DLB Consortium. Neurology. 65, 1863-1872 (2005).
  18. Cairns, N. J., et al. Neuropathologic diagnostic and nosologic criteria for frontotemporal lobar degeneration: consensus of the Consortium for Frontotemporal Lobar Degeneration. Acta Neuropathol. 114, 5-22 (2007).
  19. Litvan, I., et al. Validity and reliability of the preliminary NINDS neuropathologic criteria for progressive supranuclear palsy and related disorders. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 55, 97-105 (1996).
  20. Gilman, S., et al. Second consensus statement on the diagnosis of multiple system atrophy. Neurology. 71, 670-676 (2008).
  21. McKee, A. C., et al. The first NINDS/NIBIB consensus meeting to define neuropathological criteria for the diagnosis of chronic traumatic encephalopathy. Acta Neuropathol. 131, 75-86 (2016).
  22. Rahimi, J., Kovacs, G. G. Prevalence of mixed pathologies in the aging brain. Alzheimer’s Res Ther. 6, 82 (2014).
  23. Jellinger, K. A., Attems, J. Challenges of multimorbidity of the aging brain: a critical update. J. Neural. Transm. (Vienna). 122, 505-521 (2015).
  24. Crary, J. F., et al. Primary age-related tauopathy (PART): a common pathology associated with human aging. Acta Neuropathol. 128, 755-766 (2014).
  25. Kovacs, G. G., et al. Aging-related tau astrogliopathy (ARTAG): harmonized evaluation strategy. Acta Neuropathol. 131, 87-102 (2016).
  26. Nelson, P. T., et al. 34;New Old Pathologies": AD, PART, and Cerebral Age-Related TDP-43 With Sclerosis (CARTS). J Neuropathol Exp Neurol. 75 (6), 82-98 (2016).
  27. Tomlinson, B. E., Blessed, G., Roth, M. Observations on the brains of non-demented old people. J. Neurol. Sci. 7, 331-356 (1968).
  28. Katzman, R., et al. Clinical, pathological, and neurochemical changes in dementia: A subgroup with preserved mental status and numerous neocortical plaques. Ann. Neurol. 23, 138-144 (1988).
  29. Crystal, H., et al. Clinicopathologic studies in dementia: Nondemented subjects with pathologically confirmed Alzheimer’s disease. Neurology. 38, 1682-1687 (1988).
  30. Knopman, D. S., et al. Neuropathology of cognitively normal elderly. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 62, 1087 (2003).
  31. Troncoso, J. C., et al. Neuropathology in controls and demented subjects from the Baltimore Longitudinal Study of Aging. Neurobiol. Aging. 17, 365-371 (1996).
  32. Mirra, S. S., et al. The Consortium to Establish a Registry for Alzheimer’s Disease (CERAD). Part II. Standardization of the neuropathologic assessment of Alzheimer’s disease. Neurology. 41 (4), 479-486 (1991).
  33. Braak, H., Braak, E. Neuropathological stageing of Alzheimer-related changes. Acta Neuropathol. 82 (4), 239-259 (1991).
  34. Frings, L., et al. Asymmetries of amyloid-β burden and neuronal dysfunction are positively correlated in Alzheimer’s disease. Brain. 138 (Pt 10), 3089-3099 (2015).
  35. Leroy, F., et al. New human-specific brain landmark: the depth asymmetry of superior temporal sulcus. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 112 (4), 1208-1213 (2015).
  36. Fink, M., et al. Lateralization of the serotonin-1A receptor distribution in language areas revealed by PET. Neuroimage. 45 (2), 598-605 (2009).
  37. Miller, A. K. H., Alston, R. L., Mountjoy, C. Q., Corsellis, J. A. N. Automated differential cell counting on a sector of the normal human hippocampus: the influence of age. Neuropathol. Appl. Neurobiol. 10, 123-142 (1984).
  38. Brettschneider, J., Del Tredici, K., Lee, V. M., Trojanowski, J. Q. Spreading of pathology in neurodegenerative diseases: a focus on human studies. Nat. Rev. Neurosci. 16 (2), 109-120 (2015).
  39. Nolan, M., Troakes, C., King, A., Bodi, I., Al-Sarraj, S. Control tissue in brain banking: the importance of thorough neuropathological assessment. J. Neural. Transm. (Vienna). 12, (2015).
  40. Wilcock, G. K., Esiri, M. M. Asymmetry of pathology in Alzheimer’s disease. J. Neurol. Neurosurg. Psychiatry. 50 (10), 1384-1386 (1987).
  41. Janota, I., Mountjoy, C. Q. Asymmetry of pathology in Alzheimer’s disease. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 51 (7), 1011-1012 (1988).
  42. Stefanits, H., Budka, H., Kovacs, G. G. Asymmetry of neurodegenerative disease related pathologies: a cautionary note. Acta Neuropathol. 123 (3), 449-452 (2012).
  43. King, A., Bodi, I., Nolan, M., Troakes, C., Al-Sarraj, S. Assessment of the degree of asymmetry of pathological features in neurodegenerative diseases. What is the significance for brain banks?. J Neural Transm. (Vienna). 122 (10), 1499-1508 (2015).
  44. Schmitz, C., Hof, P. R. Design-based stereology in neuroscience. Neuroscience. 130, 813-831 (2005).
  45. Kristiansen, S. L., Nyengaard, J. R. Digital stereology in neuropathology. APMIS. 120, 327-340 (2012).
  46. Erskine, D., Khundakar, A. A. Stereological approaches to dementia research using human brain tissue. J Chem Neuroanat. , (2016).
  47. Lees, A. J. Unresolved issues relating to the shaking palsy on the celebration of James Parkinson’s 250th birthday. Mov. Disord. 22 (Suppl 17), S327-S334 (2007).
  48. Iacono, D., et al. Parkinson disease and incidental Lewy body disease: Just a question of time?. Neurology. 85, 1670-1679 (2015).
  49. Geuna, S., Herrera-Rincon, C. Update on stereology for light microscopy. Cell Tissue Res. 360 (1), 5-12 (2015).
  50. Drummond, E. S., Nayak, S., Ueberheide, B., Wisniewski, T. Proteomic analysis of neurons microdissected from formalin-fixed, paraffin-embedded Alzheimer’s disease brain tissue. Sci. Rep. 5, 15456 (2015).
  51. Brickell, K. L., et al. Clinicopathological concordance and discordance in three monozygotic twin pairs with familial Alzheimer’s disease. J. Neurol. Neurosurg. Psychiatry. 78 (10), 1050-1055 (2007).
  52. Xiromerisiou, G., et al. Identical twins with Leucine rich repeat kinase type 2 mutations discordant for Parkinson’s disease. Mov. Disord. 27 (10), 1323 (2012).
  53. Iacono, D., et al. Neuropathologic assessment of dementia markers in identical and fraternal twins. Brain Pathol. 24 (4), 317-333 (2014).
  54. Iacono, D., et al. Same Ages, Same Genes: Same Brains, Same Pathologies?: Dementia Timings, Co-Occurring Brain Pathologies ApoE Genotypes in Identical and Fraternal Age-matched Twins at Autopsy. Alzheimer Dis. Assoc. Disord. , (2015).
  55. Rentería, M. E. Cerebral asymmetry: a quantitative, multifactorial, and plastic brain phenotype. Twin Res. Hum. Genet. 15 (3), 401-413 (2012).
  56. Bishop, D. V. Cerebral asymmetry and language development: cause, correlate, or consequence?. Science. 340 (6138), (2013).
  57. Mendez, M. F., et al. Observation of social behavior in frontotemporal dementia. Am. J. Alzheimers Dis. Other Demen. 29 (3), 215-221 (2014).

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Iacono, D., Geraci-Erck, M., Peng, H., Bouffard, J. P. Symmetric Bihemispheric Postmortem Brain Cutting to Study Healthy and Pathological Brain Conditions in Humans. J. Vis. Exp. (118), e54602, doi:10.3791/54602 (2016).

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