Se presenta aquí un método sencillo para el aislamiento y análisis de citometría de flujo de células mononucleares de sangre periférica de glioma infiltrantes que produce datos cuantitativos dependientes del tiempo sobre el número y el estado de activación de las células inmunes que entran en el microambiente tumoral temprano del cerebro.
Nuestro laboratorio ha demostrado recientemente que las células asesinas naturales (NK) son capaces de erradicar ortotópicamente implantado GL26 de ratón y de rata CNS-1 gliomas malignos pronto después del injerto intracraneal si las células cancerosas se vuelven deficientes en su expresión de la galectina lectina β-galactósido vinculante -1 (gal-1). Un trabajo más reciente ahora demuestra que una población de células mieloides Gr-1 + / CD11b + es fundamental en este sentido. Para comprender mejor los mecanismos por los cuales NK y células mieloides cooperan para conferir el rechazo del tumor gal-1-deficiente hemos desarrollado un protocolo completo para el aislamiento y análisis de las células mononucleares de sangre periférica de glioma infiltrantes (PBMC). El método se demuestra aquí comparando PBMC infiltración en el microambiente tumoral de gal-1 que expresan GL26 gliomas con los prestados gal-1-deficientes través shRNA desmontables. El protocolo comienza con una descripción de cómo la cultura y preparar GL26 ceLLS para la inoculación en el singénico C57BL / 6J cerebro de ratón. A continuación, se explican los pasos que intervienen en el aislamiento y el flujo de análisis de citometría de glioma de PBMCs infiltrarse desde el microambiente tumoral temprano del cerebro. El método es adaptable a una serie de diseños experimentales in vivo en el que se requieren los datos temporales sobre la infiltración inmune en el cerebro. El método es sensible y altamente reproducible, como PBMCs de glioma infiltrantes pueden ser aislados de tumores intracraneales tan pronto como 24 hr injerto post-tumor con recuentos de células similares observados desde el punto emparejado tumores tiempo a lo largo experimentos independientes. Un único experimentador puede realizar el método de la cosecha cerebro para análisis citométrico de flujo de PBMCs de glioma infiltrantes en aproximadamente 4-6 horas, dependiendo del número de muestras a analizar. Modelos alternativos de glioma y / o anticuerpos de detección de células específicas también pueden utilizarse a discreción de los experimentadores 'para evaluar la infiltración de varios otros immuntipos e celulares de interés sin la necesidad de modificaciones en el procedimiento general.
Los gliomas son una clase de cánceres de cerebro neuroepiteliales derivadas de la glía transformado dentro del sistema nervioso central (SNC). De todos los gliomas, Organización Mundial de la Salud (OMS) glioma de grado IV, o glioblastoma (GBM), es el más común y letal 1. GBM es altamente refractaria a la atención estándar de corriente que consta de la resección del tumor a la medida de lo posible seguida de radiación y quimioterapia concomitante y adyuvante con temozolomida 2. Estos cánceres mortales tienen un pronóstico sombrío de sólo 15 a 18 meses de supervivencia desde el momento del diagnóstico inicial con sólo el 5% de los pacientes que sobreviven la enfermedad después de 5 años 3.
La presencia de la barrera hematoencefálica (BBB), la falta de células presentadoras de antígenos profesionales (APC), y la existencia previamente no identificado de estructuras linfáticas de buena fe dentro del cerebro 4 han dado lugar a la noción de GBM como inmune privilegiados. Sin embargo, numerosos estudios ahora show que estos cánceres de cerebro de hecho generan el reclutamiento de células inmunes periféricos que son predominantemente de origen mieloide, que incluyen monocitos, macrófagos y células supresoras mieloides derivadas de MDSCs (5). GBM también influye en la actividad de la microglia del cerebro residente para convertirse en pro-tumorigénico 6,7. Las células linfoides tales como células T CD8 + 8 y CD56 células + asesinas naturales 9 también están presentes en el microambiente del tumor, pero en mucho menor número, un hecho piensa que es debido a la función inmunosupresora instigado por factores de glioma derivado de macrófagos asociados al tumor ( TAM) 10. Las células T CD4 + también están presentes en GBM, pero gran parte de esta población también expresa CD25 y FoxP3, los responsables de inmunosupresora T reguladoras (Treg) células 11. El estado inmunosupresor general de GBM culmina en la promoción de evasión inmunológica y la progresión tumoral 12.
<p class= "jove_content"> Una mejor comprensión de los mecanismos de GBM inmunosupresión es fundamental para el desarrollo de estrategias inmunoterapéuticas eficaces para estimular el sistema inmune contra el tumor. En los últimos 15 años, nuestro laboratorio ha trabajado para superar los mecanismos de immunosuppresson tumor cerebral con el fin de desarrollar eficaces nuevas inmunoterapias anti-MBG 13-19. La culminación de este trabajo ha dado lugar a un ensayo clínico diseñado para evaluar un citotóxico combinado y terapéutico inmune-estimulantes para los pacientes con diagnóstico reciente (Identificador ClinicalTrials.gov: NCT01811992) GBM.Nuestro trabajo más reciente muestra que GL26 de ratón y de rata CNS-1 células GBM bloquean antitumoral de las células NK vigilancia inmunológica mediante la producción de grandes cantidades de la lectina de unión a β-galactosidasa-galectina-1 (Gal-1) 20. Esto se demostró mediante la supresión de la expresión de gal-1 en células de glioma usando mediada por shRNA desmontables gen. In vitro experiments mostraron que las células de glioma-gal 1-deficiente proliferaron normalmente en cultivo, sin embargo, fueron sometidos a rechazo rápido pronto después del injerto singénico intracraneal en ratones C57BL / 6J o RAG1 – / – ratones, estableciendo así la independencia de T o células B en esta forma de el rechazo del tumor. Immunodepletion células NK con anti-asialo GM 1 anti-suero o anticuerpos monoclonales NK1.1 llevó a la restauración completa de glioma intracraneal crecimiento gal-1-deficientes, se crea la función de las células NK en gal-1-deficiente rechazo glioma. Ahora demuestran que immunodepletion de las células mieloides GR-1 + / CD11b + es suficiente para prevenir el rechazo de glioma gal-1-deficiente a pesar de la presencia de células NK, revelando así un papel auxiliar indispensable para las células mieloides en la ayuda a la gal mediada por NK lisis tumoral -1-deficiente (datos no publicados). Este resultado inesperado nos ha llevado a desarrollar un protocolo integral para el aislamiento y el análisis de las células mononucleares de sangre periférica (CMSP) queinfiltrarse en el microambiente del tumor cerebral poco después el injerto intracraneal para que podamos caracterizar mejor los eventos de infiltración inmunes que predican el rechazo glioma gal-1-deficientes.
El método se demuestra aquí utilizando células de glioma GL26 de ratón que la proteína fluorescente mCitrine expresan constitutivamente, llamado GL26-Cit, que permite la visualización directa de las células tumorales mediante microscopía de fluorescencia 21. Estas células se estereotácticamente injertaron en el cerebro de singénicos ratones C57BL / 6J y se dejaron crecer durante 24, 48, o 72 hr antes de la eutanasia del ratón. PBMCs glioma infiltrantes son entonces aislados y immunolabeled utilizando anti -CD45, -GR-1, -CD11b y -NK1.1 anticuerpos de la superficie celular, junto con immunolabeling intracelular de granzima B (GzmB). Esta combinación específica de anticuerpos permite la identificación de Gr-1 + / + células CD11b infiltrantes de tumores mieloides y NK1.1 +, células NK, los tipos de células que tenemos been implicado en el rechazo del tumor gal-1-deficientes. El perfil inmunológico de la infiltración gal-1-deficiente GL26-Cit glioma, se hace referencia aquí como GL26-Cit-gal1i, se compara entonces con la de gliomas que expresan niveles normales de gal-1 llamado GL26-Cit-NT que contienen un no- focalización de control shRNA horquilla. El protocolo comienza con una descripción de cómo la cultura células GL26-Cit glioma in vitro, que es seguido por una explicación sobre cómo injertar ortotópicamente estas células en el cuerpo estriado de singeneicos C57BL / 6J. A continuación, procede a enumerar los pasos implicados en el aislamiento y la inmunomarcación de PBMCs de glioma infiltrantes para el análisis de citometría de flujo. El protocolo concluye con una explicación de análisis de datos estándar y representación gráfica.
La manifestación revela que tanto Gr-1 + / CD11b + células mieloides y células NK1.1 + NK preferentemente acumularse dentro del microambiente del tumor cerebral gal-1-deficientes dentro de 48h de la implantación del tumor, un resultado que ayuda a explicar por qué estos tumores se someten rápidamente lisis tumoral completa aproximadamente 1 semana injerto post-tumoral 20. El método es fácilmente adaptable a una serie de diferentes diseños experimentales in vivo en el que se requieren los datos temporales sobre la infiltración inmune en el cerebro. Un único experimentador puede realizar el protocolo de recolección cerebro para análisis citométrico de flujo de PBMCs de glioma infiltrantes en aproximadamente 4-6 horas, dependiendo del número de muestras a analizar. El método también se puede combinar con experimentos destinados para caracterizar el perfil de la circulación de PBMCs en ratones portadores de tumor para la comparación con los que se infiltran en el cerebro para identificar fenotipos de inmunosupresión específicamente inducidos por el microambiente tumoral. La aplicación de este y otros métodos debería facilitar una mejor comprensión de los factores que intervienen en el tráfico de células inmunes periféricas en el microambiente del tumor cerebral.
Este protocolo describe un método robusto y reproducible para el análisis de citometría de flujo y el aislamiento de PBMCs que se han infiltrado en el microambiente tumoral temprano del ratón cerebro. Suspensiones celulares de glioma se generan a una concentración especificada por el experimentador que se estereotácticamente injertado en el cuerpo estriado del cerebro de ratón. Los ratones son entonces sacrificados en puntos de tiempo predeterminados especificados por el diseño experimental y sus cerebros se cos…
The authors have nothing to disclose.
Esta obra fue financiada por los Institutos Nacionales de Salud / Instituto Nacional de Trastornos Neurológicos y Accidentes Cerebrovasculares (NIH / NINDS) otorga R01-NS074387, R01-R21-NS057711 y NS091555 al MGC; NIH / NINDS otorga R01-NS061107, R01-NS076991, R01-R21-NS082311 y NS084275 de PRL; subvenciones de Leah Corazones Felices, Universidad de Michigan Comprehensive Cancer Center adjudicado a MGC y PRL; el Departamento de Neurocirugía de la Universidad de la Escuela de Medicina de Michigan; el Instituto Michigan de Investigación Clínica y de la Salud, con el apoyo de NIH subvención 2UL1-TR000433; la Beca de Formación de Biología de la Universidad de Michigan cáncer apoyado por el NIH / NCI (National Cancer Institute) subvención T32-CA009676; la Universidad de Michigan en Capacitación Clínica y Neurociencia Básica apoyado por el NIH / NINDS conceder T32-NS007222; y la Universidad de Programa de Entrenamiento Científico Michigan Medical apoyado por el NIH / NIGMS (Instituto Nacional de Medicina General de Ciencias) conceder T32-GM007863. Los autores de unre agradecidos por el liderazgo académico y el apoyo recibido del Dr. Karin Muraszko y el Departamento de Neurocirugía; M. Dahlgren, D. TOMFORD, y S. napolitana de apoyo administrativo excelente; M. Dzaman para la asistencia técnica en circulación; y Phil F. Jenkins para el generoso apoyo para la compra de un microscopio electrónico de barrido Zeiss 3D. También reconocemos el laboratorio Kuchroo en la Escuela de Medicina de Harvard de la que se ha elaborado una versión modificada de la estrategia de los medios de comunicación mediada por centrifugación de densidad para el aislamiento de células mononucleares cerebrales.
Dulbecco’s Modification of Eagles Medium | Gibco | 12430-054 | with 4.5g/L D-glucose, L-glutamine, 25mM HEPES and phenol red |
Dulbecco’s Phosphate-buffered Saline | Gibco | 14190-144 | without calcium chloride or Magnesium chloride |
Fetal bovine serum | Omega Scientific Inc. | FB-11 | |
Penicillin Streptomycin | Gibco | 15140-122 | 10,000U/ml Penicillin; 10,000μg/ml Streptomycin |
L-glutamine | Gibco | 25030-081 | 200mM |
G418 sulfate | Omega Scientific Inc. | GN-04 | |
Puromycin dihydrochloride | Sigma-Aldrich | P8833 | from Streptomyces alboniger |
HyClone HyQTase non-mammalian trypsin alternative | Thermo Scientific | SV30030.01 | in DPBS with EDTA |
Phase contrast hemocytometer | Sigma-Aldrich | Z359629 | 0.1mm deep |
Trypan blue stain | Gibco | 15250-061 | |
Sterile 0.9% NaCl injection, USP | Hospira | NDC: 0409-4888 | 10ml vials |
0.6ml conical polypropylenemi microtubes | Genesee Scientific | 22-272 | |
Atipamezole hydrochloride injection | Orion Pharma | NDC: 52483-6298 | 5mg/ml solution |
Ketamine hydrochloride injection | Fort Dodge | NDC: 0409-2051 | 100mg/ml solution |
Dexmedetomidine hydrochloride injection | Zoetis | NDC: 54771-2805 | 0.5mg/ml solution |
Xylazine hydrochloride injection | Lloyd | NDC: 61311-481 | 100mg/ml solution |
Carprofen injection | Pfizer | NDC: 61106-8501 | 50mg/ml solution |
Buprenorphine hydrochloride injection | Reckitt Benckiser | NDC: 12496-0757 | 0.3mg/ml ampuls |
1ml tuberculin syringes | Covidien | 8881501400 | |
26G x ½ (0.45mm x 13mm) syringe needles | BD | 305111 | |
Surgical clippers | 3M | 9661 | |
Providone-iodine solution | Aplicare | 82-217 | NDC: 52380-1905 |
Sterile petrolatum ophthalmic ointment | Dechra | NDC: 17033-211 | |
70% isopropyl alcohol prep pads | Kendall | 6818 | |
Sterile gauze | Covidien | 8044 | non-woven, 4" x 4", 4-ply |
1.7ml conical polypropylene microtubes | Genesee Scientific | 22-281 | |
Mouse stereotactic frame | Stoelting | 51730 | |
Surgical lamp | Philips Burton | CS316W | Coolspot II Variable Spotlight |
Curved dissecting forceps | Ted Pella Inc. | 5431 | |
Colibri retractors | FST | 17000-03 | |
Cordless precision power drill | Dremel | 1100-01 | Stylus model; 7.2-Volt Lithium-Ion with Docking Station |
Engraving Cutter | Dremel | 105 | 1/32" or 0.8 mm bit diameter |
Microliter syringe | Hamilton | 75 | Hamilton Microliter® Syringes 700 series; 5μl volume |
Microliter syringe needles | Hamilton | 7762-06 | 33G, small hub RN NDL, 1.5 in, point style 3, 6/PK |
Ethilon 3-0 black monofilament nylon sutures | Ethicon | 1663 | |
Magnetic stir bar | VWR | 74950-296 | 7.9mm diameter x 50mm length (5/16" diameter x 2" length) |
1L glass screw-cap storage bottle | Corning | 1395 | Type 1, Class A borosilicate glass |
Heparin sodium | Sagent | NDC: 25021-400 | 1,000U/ml solution |
Peristaltic pump | Cole Parmer Instruments Group | 77200-60 | Master Flex Easy Load II console drive |
compressed carbogen (95% O2 / 5% CO2) | available from local vendor | N/A | A-type, large cylinder |
20G x 1 ½" aluminum hub blunt needles | Kendall | 8881202363 | 0.9mm x 38.1mm |
Polyurethane ice bucket | Fisherbrand | 02-591-45 | Capacity: 0.152 oz. (4.5L) |
Collagenase (Type I-S) | Sigma Aldrich | C1639 | from Clostridium histolyticum |
Deoxyribonuclease I | Worthington Biochemical Corp. | LS002007 | >2,000 Kunitz units per mg dry weight |
Antistatic polystyrene hexagonal weighing dishes | Ted Pella Inc. | 20157-3 | top I.D. 115mm, base I.D. 85mm, 203ml volume |
Stainless steel single edged razor blades | Garvey | 40475 | |
Bone rongeurs | FST | 16001-15 | |
Hemostat | FST | 13014-14 | |
Large dissection scissors | Ted Pella Inc. | 1316 | |
Small dissection scissors | FST | 14094-11 | |
Blunt end forceps | Ted Pella Inc. | 13250 | |
7ml glass Dounce tissue grinder | Kontes | KT885300-0007 | |
Percoll Density Centrifugation Media | GE Healthcare | GE17-0891-01 | |
10 mL serological pipettes | Genesee Scientific | 12-104 | single use; sterile |
70μm sterile nylon mesh cell strainers | Fisherbrand | 22363548 | |
Alexa Fluor 700-conjugated rat anti-mouse CD45 (clone: 30-F11) | Biolegend | 103128 | |
APC-conjugated mouse anti-mouse NK1.1 (clone: PK136) | eBiosciences | 17-5941-82 | |
PE-conjugated rat anti-mouse Gr-1 (clone:RB6-8C5) | BD Pharmigen | 553128 | |
PerCP/Cy5.5-conjugated rat anti-mouse CD11b (clone: M1/70) | Biolegend | 101228 | |
Alexa Fluor 700-conjugated rat IgG2b, κ (clone: RTK4530) isotype control | Biolegend | 400628 | |
APC-conjugated mouse IgG2a, κ (clone: eBM2a) isotype control | eBioscience | 17-4724 | |
PE-conjugated rat IgG2b, κ (clone: eB149/10H5) isotype control | eBioscience | 12-4031-82 | |
PerCP/Cy5.5-conjugated rat IgG2b, κ (clone: RTK4530) isotype control | Biolegend | 400632 | |
Pacific Blue-conjugated mouse anti-mouse granzyme B (Clone: GB11) | Biolegend | 515403 | |
Pacific Blue-conjugated mouse IgG1, κ (Clone: MOPC-21) isotype control | Biolegend | 400151 | |
Cytofix/Cytoperm | BD | 554714 | |
15ml polypropylene centrifuge tubes | Genesee Scientific | 21-103 | conical bottom |
50ml polypropylene centrifuge tubes | Genesee Scientific | 21-108 | conical bottom |
12x75mm round-bottom polypropylene FACS tubes | Fisherbrand | 14-956-1B | |
FACSAria Special Order Research Product flow cytometer/cell sorter | BD | 650033 | |
Class II Biological Safety Cabinet | The Baker Company | SG603 | model: SterilGARD III Advance |