호중구 이동은 화학 유인 물질 및 세포 외 미세 환경과의 상호 작용에 대한 반응으로 원형질막의 빠르고 지속적인 리모델링에 의존합니다. 본원에서는 마취된 마우스의 귀에 주입된 호중구에서 막 리모델링의 역학을 조사하기 위한 Intravital Subcellular Microscopy에 기초한 절차가 설명됩니다.
조직에서의 면역 세포 모집 및 기능에 대한 연구는 지난 20년 동안 매우 활발한 분야였습니다. 호중구는 염증 부위에 도달하고 감염 또는 조직 손상 시 선천성 면역 반응에 참여하는 첫 번째 면역 세포 중 하나입니다. 지금까지 호중구 이동은 균일한 자극 또는 아가로스 또는 미세유체 채널 하에서의 제한된 이동을 기반으로 하는 다양한 시험관 내 실험 시스템을 사용하여 성공적으로 시각화되었습니다. 그러나 이러한 모델은 호중구가 생체 내에서 만나는 복잡한 미세환경을 재현하지 않습니다. 생체 내 세포 내 현미경(ISMic)과 같은 다광자 현미경(MPM) 기반 기술의 개발은 생리학적 조건에서 세포 내 해상도에서 호중구 역학을 시각화하고 조사할 수 있는 고유한 도구를 제공합니다. 특히, 살아있는 마취된 쥐의 귀는 접근성이 용이하고 외과적 노출이 없기 때문에 호중구 간질 이동을 실시간으로 추적할 수 있는 실험적 이점을 제공합니다. ISMic은 시간이 지남에 따라 세포 및 더 중요하게는 세포 내 과정을 3D(4D)로 추적하는 데 필요한 광학 해상도, 속도 및 획득 깊이를 제공합니다. 또한, 간질 미세환경(즉, 혈관, 상주 세포, 세포외 기질)의 다중 모드 이미징은 선별된 형광 마커를 발현하는 형질전환 마우스, 형광 프로브를 통한 외인성 라벨링, 조직 고유 형광 및 2차/3차 고조파 생성 신호의 조합을 사용하여 쉽게 달성할 수 있습니다. 이 프로토콜은 1) 마우스 귀로의 입양 전달을 위한 호중구 준비, 2) 최적의 세포 내 이미징을 위한 다양한 설정, 3) 생리적 반응을 유지하면서 모션 아티팩트를 최소화하는 전략, 4) ISMic을 사용하여 호중구에서 관찰된 막 리모델링의 예, 5) 생체 내 호중구 이동에서 멤브레인 리모델링의 정량 분석을 위한 워크플로우를 설명합니다.
지시된 세포 이동은 발달, 면역 반응, 조직 복구, 종양 시작, 진행 및 전파를 포함한 다양한 생리학적 및 병리학적 과정에서 발생하는 중요한 사건입니다 1,2. 이 과정은 원형질막에서 동족 수용체가 감지한 다음 복잡한 세포 내 신호로 변환되는 특정 세포외 화학주성 신호에 의존합니다. 이러한 경로는 차례로 세포골격의 국소 활성화, 막 이동 및 리모델링, 세포 분극을 포함한 일련의 반응을 통해 세포 이동을 활성화합니다3. 세포 이동의 두 가지 뚜렷한 유형, 즉 중간엽(mesenchymal)과 아메바이드(amoeboid)가 잘 규명되어 있다4. 중간엽 이동은 상대적으로 느리고(10μm/min) 약한 접착력을 사용하여 ECM을 탐색합니다. 양상에 관계없이, 세포 이동은 원형질막의 지속적인 리모델링을 필요로 하며, 그 결과 세포의 전방 가장자리에 돌출 구조가 생성되며, 이는 후방1에서 막의 수축과 긴밀하게 조정됩니다.
이러한 sub-cellular process의 기저에 있는 분자 메커니즘을 밝히기 위해서는 이동하는 세포에서 막의 역학을 적절한 시간적, 공간적 해상도로 시각화하는 것이 필수적입니다. 더욱이, 막 리모델링은 이동하는 세포를 둘러싼 조직 미세환경의 특성에 큰 영향을 받기 때문에 이 과정을 살아있는 동물 내의 네이티브 조직에서 직접 이미지화하는 것이 중요합니다. 이는 생체 내 현미경(IVM)을 사용하여 수행됩니다5. 최초의 IVM 이미징은 ~200년 전에 수행되었으며, 이때 간단한 투광 현미경6을 사용하여 백혈구 유출을 시각화했으며 그 후 IVM은 주로 제브라피시 및 초파리 7,8과 같은 반투명 모델 유기체에 사용되었습니다. 지난 20년 동안 IVM은 생쥐, 쥐 및 돼지와 같은 더 큰 포유류의 세포 과정을 조사하는 데 성공적으로 사용되었습니다 5,9. 이는 1) 컨포칼 및 다광자(MP) 현미경의 중요한 발전과 2) CRISPR-Cas9과 같은 유전자 편집 기술의 향상으로 인해 다양한 동물 모델의 신속한 엔지니어링을 통해 형광 태그가 부착된 단백질과 리포터를 발현할 수 있게 되었습니다. 게다가, 종양 시작, 세포 이동 및 면역 반응과 같은 과정 동안 개별 세포 및 그들의 미세환경의 시각화는 혈관 구조10,11을 표지하기 위한 염료의 체계적 도입과 같은 외인성 라벨링의 다른 형태와 SHG(Second Harmonic Generation)10를 통한 콜라겐과 같은 내인성 분자의 여기(excitation)에 의해 가능해졌습니다. 12 및 제 3 고조파 생성 (THG)을 통한 신경 섬유 11,13. 마지막으로, 심장 박동 및 호흡으로 인한 움직임 아티팩트를 최소화하는 기술의 개선으로 생체 내 세포 내 현미경(ISMic)이 개발되었으며, 이를 통해 연구자들은 시험관 내에서 관찰된 것과 유사한 해상도 수준으로 살아있는 동물에서 직접 여러 세포 내 이벤트를 이미지화하고 조사할 수 있게 되었습니다 14,15,16,17 . ISMic의 예로는 exocytosis 14,15,16,17 및 endocytosis15 동안의 세포골격 역학 조사, 세포 이동 중 세포골격 동적 리모델링(17,18), 미토콘드리아 국소화 및 대사(19,20), 뇌의 칼슘 신호전달(21) 등이 있습니다.
이 프로토콜은 ISMic을 사용하여 살아있는 마우스의 귀 피부에서 호중구 이동 중 세포 내 해상도에서 세포막 리모델링을 조사하기 위한 다양한 단계와 절차를 자세히 설명합니다. 이 접근법은 앞서 설명한 프로토콜22,23을 기반으로 하며 더 높은 공간적, 시간적 해상도를 달성하도록 조정됩니다.
세포 이동 및 막 리모델링 분야에서 수십 년 동안 발전했음에도 불구하고 살아있는 동물의 세포 내 특징을 시각화하기 위해 IVM을 사용한 연구는 거의 없습니다. 이 프로토콜에 설명된 절차는 살아있는 동물의 호중구 이동, 특히 이 과정 중 원형질막 리모델링에 대한 새로운 통찰력을 얻을 수 있는 강력한 도구를 제공합니다. 이 접근법은 조직 미세환경의 고유한 복잡성을 고려하여 생리학적 조건에서 호중구 이동을 조사할 수 있게 합니다. 실제로, MPM을 사용하면 선택된 형광 마커를 발현하는 마우스 균주, 외인성 조직 라벨링, 내인성 형광의 여기 및 SHG 또는 THG12,13을 통해 생성된 신호의 조합을 사용하여 숙주 조직 내의 여러 기능을 시각화할 수 있습니다.
이 절차에서 고려해야 할 한 가지 잠재적인 문제는 광손상입니다. MPM이 일반적으로 광표백 및 광독성과 관련하여 컨포칼 현미경보다 안전하지만, 살아있는 조직을 이미징할 때 주의를 기울여야 한다34. 광독성은 작고 밝은 반점에서 손상된 조직의 더 넓은 영역에 이르기까지 다양한 이미징 아티팩트를 생성하거나 다양한 세포 내 경로를 억제/자극함으로써 결과를 크게 방해할 수 있습니다. 광독성을 방지하기 위해 레이저 출력을 최소한으로 유지해야 하며 생리적 조건(예: 혈류 측정, 산화 스트레스 프로브)이 유지되는지 확인할 수 있도록 적절한 제어를 설계해야 합니다35,36. 더욱이, 피부와 관련된 이 특정 절차에서는 어두운 코팅 동물에 존재하는 멜라닌이 광독성에 더 민감하기 때문에 알비노 균주가 적극 권장됩니다 36,37,38.
이 절차의 주요 제한 사항 중 하나는 사용된 현미경 시스템과 호중구의 특성입니다. MPM을 사용하면 다른 광학 현미경 기술(예: 공초점, 회전 디스크)과 비교할 때 조직 이미징의 깊이가 크게 증가하지만 귀에서 세포 내 역학을 시각화하는 능력은 조직의 가장 바깥층(80-100μm)으로 제한됩니다. 이는 두꺼운 ECM 층에 의해 생성되는 강렬한 광 산란으로 인해 더 깊은 층에서의 이동을 조사하기 어렵기 때문입니다. 또 다른 한계는 호중구는 수명이 매우 짧고 유전자 편집 기술을 수행할 수 있을 만큼 충분히 오래 배양할 수 없다는 사실입니다. 이는 특정 유전자가 없거나 선택된 돌연변이를 품고 있는 호중구를 생산하도록 마우스를 엔지니어링함으로써 극복할 수 있으며, 이는 물론 연구 비용과 기간을 증가시킵니다.
여기에 설명된 절차는 막 역학을 조사하기 위해 고안되었지만, 호중구뿐만 아니라 다른 면역 세포 유형 및 이동 세포의 모든 세포 생물학적 문제를 해결하도록 조정할 수 있습니다. 세포 행동(예: 이동 표현형, 세포 속도 및 방향성22)에 대한 저배율 IVM을 통해 수집된 정보는 세포 기관 재배치, 단백질 분비, 세포내이입, 핵 역학, 칼슘 역학, 세포골격 조직 및 네토시스에 대한 ISMic을 통해 얻은 기계론적 정보와 보완되고 상관될 수 있습니다. 약리학적 및/또는 유전자 조작의 사용은 관심 과정에서 특정 분자 경로의 역할을 강조할 수 있으므로 이는 독특하고 매우 강력한 접근 방식입니다.
The authors have nothing to disclose.
이 연구는 미국 국립보건원(National Institutes of Health), 국립암연구소(National Cancer Institute), 암연구센터(Center for Cancer Research)의 교내 연구 프로그램의 지원을 받았습니다.
1.5 mL tubes | USA Scientific | 4036-3204 | |
15 mL tubes | Corning | 430766 | |
1 mL syringe | Covidien | 8881501400 | |
27 G needle | Kendall | 827112 | |
27 G winged infusion set | Terumo | SV*27EL | |
30x objective | Olympus | UPLSAPO30XS | 1.05 NA, silicon oil immersion |
40x objective | Olympus | UPLSAPO40XS | 1.23 NA, silicon oil immersion |
60 mm dishes | Falcon | 353002 | |
6 mL syringe | Kendall | 8881516937 | |
Acepromazine (10 mg/mL) | Vet one | 13985-587-50 | |
ACK lysis buffer | Quality Biological | 118-156-101 | |
Balance | AND | EK-1200A | |
BSA | Sigma Aldrich | A9647 | |
Cell strainer 40 µm | Sigma Aldrich | CLS431750 | |
Fiji | ImageJ | N/A | Image visualization/analysis software |
Fluoview Software | Olympus | N/A | Acquisition software |
FVB mouse strain | Jackson | N/A | FVB background |
Gas Anesthesia system | Patterson veterinary | 07-8915712 | Link 7 model |
Green Cell tracker | Thermo | C2925 | Solubilized in cell culture grade DMSO to reach 1 mM concentration (1000x) |
Hair removal cream | Nair | N/A | |
HBSS (w/o Ca2+, Mg2+) | Gibco | 14175-095 | |
HEPES 1 M pH 7.3 | Quality Biological | 118-089-721 | |
Histopaque 1077 | Sigma Aldrich | 10771-100ML | |
Histopaque 1991 | Sigma Aldrich | 11191-100ML | |
Imaris | Bitplane | N/A | Image visualization/analysis software |
Isoflurane | Vet one | 13985-528-40 | |
Ketamine (100 mg/mL) | Vet one | 13985-584-10 | |
LyzM-cre x mT/mG | generated in the lab | N/A | C57BL/6J background |
Manual micromanipulator | WPI | M3301R | |
MATLAB | MatWorks | N/A | Analysis software |
mtomato mouse strain | generated in the lab | N/A | mT/mG, FVB background |
Multiphoton laser | Spectra Physics | Insight DS+ | |
Multiphoton Microscope | Olympus | MPE-RS | |
Nanofil 10 µL syringe | WPI | NANOFIL | |
Nanofil 33 G needle | WPI | NF33BV-2 | |
Objective heater | Bioptechs | N/A | |
Objective heater controller | Bioptechs | 150803 | |
Ophtalmic ointment | Major | NDC 0904-6488-38 | |
Oxygen concentrator | Caire | VisionAire 5 | |
PBS (w/o Ca2+, Mg2+) | Quality Biological | 114-058-131 | |
Saline | Quality Biological | 114-055-101 | |
Stage heater | Okolab | N/A | |
Stage heater controller | Okolab | H401-T | |
Surgical tape | 3M | 1538-1 | Hypoallergenic |
Syringe driver | Harvard Apparatus | PHD Ultra | |
Warming Pads | Parkland Scientific | A2789B | |
Warming Pump | Parkland Scientific | TP-700 | |
Xylazine (100 mg/mL) | Vet one | 13985-704-10 |