Summary

ניטור צמיחת סרטן השד והיווצרות מושבה גרורתית בעכברים באמצעות Bioluminescence

Published: November 05, 2021
doi:

Summary

כאן אנו מתארים שיטת ניטור לא פולשנית הכוללת לוציפראז וביטוי חלבון פלואורסצנטי ירוק בקווים שונים של תאי סרטן השד. פרוטוקול זה מספק טכניקה לניטור היווצרות גידולים והתיישבות גרורתית בזמן אמת בעכברים.

Abstract

סרטן השד הוא ממאירות הטרוגנית תכופה והגורם השני המוביל לתמותה אצל נשים, בעיקר עקב גרורות איברים מרוחקות. מספר מודלים של בעלי חיים נוצרו, כולל מודלים של עכברים אורתוטופיים הנמצאים בשימוש נרחב, שבהם מוזרקים תאים סרטניים לתוך כרית השומן של החלב. עם זאת, מודלים אלה אינם יכולים לסייע במעקב אחר קינטיקה של גדילת גידולים והתיישבות גרורתית. כלים חדשניים לניטור תאים סרטניים בזמן אמת בעכברים יקדמו באופן משמעותי את ההבנה של הביולוגיה של הגידול.

כאן נוצרו קווי תאי סרטן השד המבטאים ביציבות לוציפראז וחלבון פלואורסצנטי ירוק (GFP). באופן ספציפי, טכניקה זו מכילה שני שלבים רציפים היזומים על ידי מדידת פעילות הלוציפראז במבחנה ולאחר מכן השתלת התאים הסרטניים לתוך כריות שומן יונקים של עכברי כשל חיסוני משולב (NOD-SCID) שאינם סוכרתיים חמורים. לאחר ההזרקה, הן צמיחת הגידול והן ההתיישבות הגרורתית מנוטרות בזמן אמת על ידי מערכת ההדמיה הביו-לומינסנציה הלא פולשנית. לאחר מכן, הכימות של גרורות המבטאות GFP בריאות ייבדק על ידי מיקרוסקופיה פלואורסצנטית כדי לאמת את תוצאות הביולומינסנציה שנצפו. מערכת מתוחכמת זו המשלבת לוציפראז וכלי גילוי מבוססי פלואורסצנציה מעריכה גרורות סרטניות in vivo, שיש לה פוטנציאל גדול לשימוש בטיפולים בסרטן השד ובניהול מחלות.

Introduction

סרטן השד הוא סוגים שכיחים של סרטן ברחבי העולם, עם כ -250,000 מקרים חדשים מאובחנים מדי שנה בארצות הברית1. למרות ההיארעות הגבוהה שלה, קבוצה חדשה של תרופות נגד סרטן שיפרה באופן משמעותי את התוצאות של חולות סרטן השד2. עם זאת, טיפולים אלה עדיין אינם מספיקים, שכן חולים רבים חווים הישנות מחלות והתפשטות גרורתית לאיברים חיוניים2, שהיא הגורם העיקרי לתחלואה ולתמותה של המטופלים. לכן, אחד האתגרים המרכזיים בחקר סרטן השד הוא זיהוי המנגנונים המולקולריים המווסתים את היווצרותן של גרורות דיסטליות כדי לפתח אמצעים חדשים לעיכוב התפתחותן.

גרורות סרטניות הן תהליך דינמי שבו תאים מתנתקים מהגידול הראשוני ופולשים לרקמות שכנות דרך זרימת הדם. לפיכך, מודלים של בעלי חיים שבהם התאים עוברים מפל גרורתי דומה יכולים להקל על זיהוי המנגנונים השולטים בתהליך זה 3,4. בנוסף, מודלים אלה של in vivo חיוניים לפיתוח חומרים טיפוליים לסרטן השד 5,6. עם זאת, מודלים אורתוטופיים אלה אינם יכולים להצביע על קינטיקה של גדילת הגידול בפועל מכיוון שההשפעה נקבעת רק עם סיום הלימודים. לכן, הקמנו כלי מבוסס לוציפראז כדי לזהות התפתחות גידולים והתיישבות גרורתית בזמן אמת. בנוסף, תאים אלה מבטאים GFP כדי לזהות את המושבות הגרורות. גישה זו היא פשוטה יחסית ואינה כרוכה בהליכים פולשניים3. לפיכך, שילוב של לוציפראז וזיהוי פלואורסצנציה הוא אסטרטגיה מועילה לקידום המחקרים הפרה-קליניים של טיפולים בסרטן השד וניהול מחלות.

Protocol

כל הניסויים בעכברים בוצעו במסגרת הפרוטוקול המוסדי לטיפול בבעלי חיים ולשימוש בבעלי חיים של האוניברסיטה העברית MD-21-16429-5. בנוסף, האוניברסיטה העברית מוסמכת על ידי האגודה להערכה והסמכה של טיפול בחיות מעבדה (AAALAC). 1. תחזוקת קו סלולרי הערה: קווי תאי סרטן השד האנושיים (M…

Representative Results

יצרנו קווי תאים של סרטן השד (MDA-MB-231, MCF-7 ו-MDA-MB-468) המבטאים וקטורים של GFP ולוציפראז. באופן ספציפי, זה הושג על ידי זיהום רציף. ראשית, קווי תאי סרטן השד היו נגועים בווקטור לנטי-וירוס המבטא GFP פלואורסצנטי. התאים החיוביים ל-GFP (GFP+) מוינו יומיים לאחר ההדבקה (איור 1A,B) ונדבק?…

Discussion

ניסויים בבעלי חיים הם חובה לחקר הסרטן 7,8,9, ואכן פותחו פרוטוקולים רבים 3,6,10,11,12,13,14. עם זאת, רוב המחקרים הללו קבעו…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים לחברי מעבדת Y.D.S. ברצוננו להודות למכון וואהל לרפואה תרגומית במרכז הרפואי הדסה בירושלים על אספקת המתקן להדמיית בעלי חיים קטנים. מחקר זה נתמך על ידי פרס פיתוח קריירה מחקרית מטעם הקרן לחקר הסרטן.

Materials

1.7 mL eppendorf tubes Lifegene LMCT1.7B-500
10 µL tips Lifegene LRT10
1000 µL tips Lifegene LRT1000
15 mL tubes Lifegene LTB15-500
200 µL tips Lifegene LRT200
6 well cell culture plate COSTAR 3516
96 well Plates BLACK flat bottom Bar Naor BN30496
Automated Cell Counters Thermofisher A50298
BD FACSAria III sorter BD
BD Microlance 3 Needles 27 G (3/4'') BD 302200
BD Plastipak Syringes 1 mL x 120 BD 303172
Corning 100 mm x 20 mm Style Dish CORNING 430167
Corning 150 mm x 20 mm Style Dish CORNING 430599
Countess cell counting chamber slides Thermofisher C10228
Dulbecco's modified Eagle's medium (DMEM), high glucose, no glutamine Biological Industries 01-055-1A
Eclipse 80i microscope Nikon
eppendorf Centrifuge 5810 R Sigma Aldrich EP5820740000
Fetal Bovine Serum (FBS) Biological Industries 04-127-1A
FUW GFP Gifted from Dr. Yossi Buganim's lab (Hebrew University of Jerusalem)
HEK293T Gifted from Dr. Lior Nissim's lab (Hebrew University of Jerusalem)
Isoflurane, USP Terrell Piramal NDC 66794-01-25
IVIS Spectrum In Vivo Imaging System Perkin Elmer 124262
L-Glutamine Solution Biological industries 03-020-1A
Living Image Software PerkinElmer bioluminescence measurement
MCF-7 ATCC ATCC HTB-22
MDA-MB-231 ATCC ATCC HTB-26
MDA-MB-468 ATCC ATCC HTB-132
Pasteur pipettes NORMAX 2430-475
PBS Hylabs BP655/500D
pCMV-dR8.2-dvpr Addgene #8455 Provided by David M. Sabatini’s lab (Whitehead institute, Boston, USA)
pCMV-VSV-G Addgene #8454 Provided by David M. Sabatini’s lab (Whitehead institute, Boston, USA)
Penicillin-Streptomycin Solution Biological Industries 03-031-1B
Petri dish 90 mm (90×15) MINI PLAST 820-090-01-017
Pipettes 10ml Lifegene LG-GSP010010S
Pipettes 25ml Lifegene LG-GSP010050S
Pipettes 5ml Lifegene LG-GSP010005S
pLX304 Luciferase-V5 blast plasmid Addgene #98580
Polybrene Sigma Aldrich #107689
Prism 9 GraphPad
Reagent Reservoirs Bar Naor BN20621STR200TC
SMZ18 Stereo microscopes Nikon
Sodium Chloride Bio-Lab 190359400
Syringe filters Lifegene LG-FPV403030S
Trypan Blue 0.5% solution Biological industries 03-102-1B
Trypsin EDTA Solution B (0.25%), EDTA (0.05%) Biological Industries 03-052-1a
Vacuum driven Filters SOFRA LIFE SCIENCE SPE-22-500
Virusolve disinfectant
VivoGlo Luciferin, In Vivo Grade Promega P1043
X-tremeGENE HP DNA Transfection Reagent Sigma Aldrich #6366236001

References

  1. Waks, A. G., Winer, E. P. Breast cancer treatment: A review. JAMA. 321 (3), 288-300 (2019).
  2. Jin, X., Mu, P. Targeting breast cancer metastasis. Breast Cancer: Basic and Clinical Research. 9, 23-34 (2015).
  3. Saha, D., et al. In vivo bioluminescence imaging of tumor hypoxia dynamics of breast cancer brain metastasis in a mouse model. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (56), e3175 (2011).
  4. Rashid, O. M., et al. Is tail vein injection a relevant breast cancer lung metastasis model. Journal of Thoracic Disease. 5 (4), 385-392 (2013).
  5. Fantozzi, A., Christofori, G. Mouse models of breast cancer metastasis. Breast Cancer Research. 8 (4), 212 (2006).
  6. Kocatürk, B., Versteeg, H. H. Orthotopic injection of breast cancer cells into the mammary fat pad of mice to study tumor growth. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (96), e51967 (2015).
  7. Baker, M. The whole picture. Nature. 463 (7283), 977-979 (2010).
  8. Wang, Y., Tseng, J. -. C., Sun, Y., Beck, A. H., Kung, A. L. Noninvasive imaging of tumor burden and molecular pathways in mouse models of cancer. Cold Spring Harbor Protocols. 2015 (2), 135-144 (2015).
  9. Kim, J. E., Kalimuthu, S., Ahn, B. -. C. In vivo cell tracking with bioluminescence imaging. Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 49 (1), 3-10 (2015).
  10. Paschall, A. V., Liu, K. An orthotopic mouse model of spontaneous breast cancer metastasis. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (114), (2016).
  11. Morten, B. C., Scott, R. J., Avery-Kiejda, K. A. Comparison of Three Different Methods for Determining Cell Proliferation in Breast Cancer Cell Lines. Journal of Visualized Experiments. (115), e54040 (2016).
  12. Zimmerman, M., Hu, X., Liu, K. Experimental metastasis and CTL adoptive transfer immunotherapy mouse model. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (45), e2077 (2010).
  13. Lv, X., et al. Orthotopic transplantation of breast tumors as preclinical models for breast cancer. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (159), e61173 (2020).
  14. Cheng, R. Y. S., et al. Studying triple negative breast cancer using orthotopic breast cancer model. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (157), e60316 (2020).
  15. Bajikar, S. S., et al. Tumor-suppressor inactivation of GDF11 occurs by precursor sequestration in triple-negative breast cancer. Developmental Cell. 43 (4), 418-435 (2017).
  16. Khatib, A., et al. The glutathione peroxidase 8 (GPX8)/IL-6/STAT3 axis is essential in maintaining an aggressive breast cancer phenotype. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 117 (35), 21420-21431 (2020).

Play Video

Cite This Article
Solaimuthu, B., Hayashi, A., Khatib, A., Shaul, Y. D. Monitoring Breast Cancer Growth and Metastatic Colony Formation in Mice using Bioluminescence. J. Vis. Exp. (177), e63060, doi:10.3791/63060 (2021).

View Video