Summary

Xenopus ооциты: Оптимизированные методы микроинъекции, Удаление тироцит слоев и быстрые изменения в Решение электрофизиологических экспериментов

Published: December 31, 2016
doi:

Summary

Optimized procedures for the isolation of single follicles, cytoplasmic RNA microinjections, the removal of surrounding cell layers, and protein expression in Xenopus oocytes are described. In addition, a simple method for fast solution changes in electrophysiological experiments with ligand-gated ion channels is presented.

Abstract

Xenopus ооцитов в качестве гетерологичной системе экспрессии белков, впервые был описан Гэрдон соавт. 1 и широко используются с момента его открытия ( Список литературы 2 – 3, и ссылки в ней). Характерным , что делает ооцитов привлекательным для экспрессии чужеродных канала является низкое обилие эндогенных ионных каналов 4. Эта система экспрессии, оказалась полезной для характеристики многих белков, среди которых лиганд-ионные каналы.

Экспрессия рецепторов ГАМК А в Xenopus ооцитах , и их функциональных характеристик описана здесь, в том числе выделения ооцитов, микроинъекций кРНК, удаление фолликулярной клеточных слоев и быстрых изменений решений в электрофизиологических экспериментах. Процедуры были оптимизированы в этой лаборатории 5,6 и отклоняются от тех , которые обычно используются 7-9. Традиционно обнаженные ооциты получаютс длительной обработки коллагеназой яичника долей при комнатной температуре, и эти оголенных ооцитов микроинъекции мРНК. Используя оптимизированные методы, различные мембранные белки были выражены и изучены с помощью этой системы, такие как рекомбинантные рецепторы ГАМК А 10-12, рекомбинантный человеческий хлорид каналов 13, трипаносом калиевые каналы 14 и мио -inositol транспортером 15, 16.

Методы , подробно описанные здесь , могут быть применены к экспрессии любого белка выбора в Xenopus ооцитах, а также быстрое изменение раствор может быть использован для изучения других ионных каналов лигандами.

Introduction

Xenopus ооциты широко используются в качестве системы экспрессии (Ссылки 2 – 3 и ссылки в ней). Они способны правильно собрать и включить функционально активные белки мультисубъединичный в их плазматических мембран. С помощью этой системы можно функционально исследовать мембранные белки, по отдельности или в сочетании с другими белками, с целью изучения свойств мутировавших, химерные или сцепленных белков, а также для скрининга потенциальных лекарственных средств.

Преимущества использования ооцитов по сравнению с другими гетерологичных системах экспрессии включают простую обработку гигантских клеток, высокую долю клеток, экспрессирующих иностранную генетическую информацию, простое управление окружающей средой ооцита с помощью ванны перфузией, а также контроль мембранного потенциала ,

Недостатком этой системы экспрессии является сезонное изменение наблюдается во многих лабораториях 17-20. Причиной этого изменениядалеко не ясно. Кроме того, качество ооцитов часто наблюдается в сильно различаться. Традиционные методы 7-9 включили изоляцию яичник долей, подверженность яичник долей к коллагеназы в течение некоторого ч, выбор оголенных ооцитов, и ооцитов микроинъекции. Здесь целый ряд альтернативных, быстрых процедур сообщили, что позволили нам работать с этим выражением системы в течение более 30 лет без сезонных колебаний и небольшим изменением качества ооцитов.

Модифицированные и усовершенствованные способы , описанные здесь , для выделения ооцитов, микроинъекции с кРНК, и удаления фолликулярной клеточных слоев могут быть использованы для экспрессии любого белка выбора в ооцитах Xenopus. Самый простой способ для быстрого изменения растворе среды вокруг ооцита могут быть применены к изучению любого лиганда ионными канала и носителей.

Protocol

Эксперименты на животных были одобрены местным комитетом кантона Берн Kantonstierarzt, Kantonaler Veterinärdienst Берн (BE85 / 15). 1. Приготовление Xenopus ооцитов Поддержание лягушки (Xenopus Laevis) на 12 ч / 12 ч цикл свет / темнота в воде, строго выдерживают при температуре 20 ° С. Удал…

Representative Results

Xenopus ооциты механически выделены с использованием платиновой петлей (Рисунок 1). Яйцеклетки были микроинъекции с мРНК , кодирующей GABA A субъединицы рецептора альфа 4, агонист 2, б, 0,5: 0,5: 2,5 фмоль / ооцитов (рисунок 2). После 4 дней, фол?…

Discussion

Методы , описанные в этой статье , отклоняются от тех , которые используются традиционно 7-9. Общепринято подвергать мочки яичника 1 до 2 ч лечения 8 коллагеназы; изолировать неповрежденные, денудированные ооцитов; и вводят их с мРНК с использованием коммерческих устройств для …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by the Swiss National Science Foundation grant 315230_156929/1. M.C.M. is a recipient of a fellowship (Beca Chile Postdoctorado from CONICYT, Ministerio de Educacion, Chile).

Materials

NaCl Sigma 71380
KCl Sigma P-9541
NaHCO3 Sigma S6014
MgSO4  Sigma M-1880
CaCl2  Sigma 223560
Ca(NO3)2  Sigma C1396
HEPES Sigma H3375
Penicilin/streptomycin Gibco 15140-148 100 μg penicillin/ml and 100 μg streptomycin/ml
Platinum wire loop home-made
Micropipette puller Zeitz-Instruments GmBH DMZ
Hamilton syringe  Hamilton 80300 10 μl, Type 701N
Thick walled polytetrafluoroethylene tubing Labmarket GmBH 1.0 mm OD 
Paraffin oil Sigma 18512
Nylon net, gauge 0.8 mm  ZBF Züricher Beuteltuchfabrik AG
Borosilicate glass tube  Corning 99445-12 PYREX
Collagenase NB Standard Grade SERVA 17454
Trypsin inhibitor type I-S Sigma T-9003
EGTA Sigma E3389
Glass capillary Jencons (Scientific ) LTD. H15/10 1.35 ID mm (for perfusion), alternative company: Harvard Apparatus Limited
Borosilicate glass capillary Harvard Apparatus Limited 30-0019 1.0 OD X  0.58 ID X 100 Length mm (for microinjection) 
Borosilicate glass capillary  Harvard Apparatus Limited 30-0044 1.2 OD X 0.69 ID X 100 Length mm (for two-electrode voltage clamp)
γ-Aminobutyric acid (GABA) Sigma A2129
3α,21-Dihydroxy-5α-pregnan-20-one (THDOC) Sigma P2016
grill motor Faulhaber  DC micromotor Type 2230 with gear Type 22/2
micrometer screw Kiener-Wittlin 10400 TESA, AR 02.11201
Sterile plastic transfer pipettes Saint-Amand  Mfg. 222-20S

References

  1. Gurdon, J. B., Lane, C. D., Woodland, H. R., Marbaix, G. Use of frog eggs and oocytes for the study of messenger RNA and its translation in living cells. Nature. 233 (5316), 177-182 (1971).
  2. Soreq, H. The biosynthesis of biologically active proteins in mRNA-microinjected Xenopus oocytes. CRC Crit Rev Biochem. 18 (3), 199-238 (1985).
  3. Sigel, E. Use of Xenopus oocytes for the functional expression of plasma membrane proteins. J Membr Biol. 117 (3), 201-221 (1990).
  4. Dascal, N. The use of Xenopus oocytes for the study of ion channels. CRC Crit Rev Biochem. 22 (4), 317-387 (1987).
  5. Sigel, E. Properties of single sodium channels translated by Xenopus oocytes after injection with messenger ribonucleic acid. J Physiol. 386, 73-90 (1987).
  6. Sigel, E., Minier, F. The Xenopus oocyte: system for the study of functional expression and modulation of proteins. Mol Nutr Food Res. 49 (3), 228-234 (2005).
  7. Colman, A., Hames, B. D., Higgins, S. J. Expression of exogenous DNA in Xenopus oocytes. Transcription and Translation’A Practical Approach. , 49-69 (1984).
  8. Sive, H. L., Grainger, R. M., Harland, R. M. Defolliculation of Xenopus oocytes. Cold Spring Harb Protoc. 2010 (12), 1377-1379 (2010).
  9. Smart, T. G., Krishek, B. J., Boulton, A. A., Baker, ., Wolfgang, W. a. l. z. Xenopus oocyte microinjection and ion-channel expression. Patch-Clamp Applications and Protocols. , 259-305 (1995).
  10. Maldifassi, M. C., Baur, R., Sigel, E. Functional sites involved in modulation of the GABA receptor channel by the intravenous anesthetics propofol, etomidate and pentobarbital. Neuropharmacology. 105, 207-214 (2016).
  11. Maldifassi, M. C., Baur, R., Pierce, D., Nourmahnad, A., Forman, S. A., Sigel, E. Novel positive allosteric modulators of GABAA receptors with anesthetic activity. Sci Rep. 6, 25943 (2016).
  12. Wongsamitkul, N., Baur, R., Sigel, E. Towards understanding functional properties and subunit arrangement of α4β2δ GABAA receptors. J Biol Chem. 291 (35), 18474-18483 (2016).
  13. Burgunder, J. M., et al. Novel chloride channel mutations leading to mild myotonia among Chinese. Neuromuscul Disord. 18 (8), 633-640 (2008).
  14. Steinmann, M. E., Gonzalez-Salgado, A., Butikofer, P., Maser, P., Sigel, E. A heteromeric potassium channel involved in the modulation of the plasma membrane potential is essential for the survival of African trypanosomes. FASEB J. 29 (8), 3228-3237 (2015).
  15. Gonzalez-Salgado, A., et al. myo-Inositol uptake is essential for bulk inositol phospholipid but not glycosylphosphatidylinositol synthesis in Trypanosoma brucei. J Biol Chem. 287 (16), 13313-13323 (2012).
  16. Gonzalez-Salgado, A., et al. Trypanosoma brucei Bloodstream Forms Depend upon Uptake of myo-Inositol for Golgi Complex Phosphatidylinositol Synthesis and Normal Cell Growth. Eukaryot Cell. 14 (6), 616-624 (2015).
  17. Wu, M., Gerhart, J. Raising Xenopus in the laboratory. Methods Cell Biol. 36, 3-18 (1991).
  18. Gurdon, J. B., Wilt, F. H., Wessels, N. K. American clawed frogs. Methods in developmental biology. , 75-84 (1967).
  19. Elsner, H. A., Honck, H. H., Willmann, F., Kreienkamp, H. J., Iglauer, F. Poor quality of oocytes from Xenopus laevis used in laboratory experiments: prevention by use of antiseptic surgical technique and antibiotic supplementation. Comp Med. 50 (2), 206-211 (2000).
  20. Green, S. L. Factors affecting oogenesis in the South African clawed frog (Xenopus laevis). Comp Med. 52 (4), 307-312 (2002).
  21. Dumont, J. N. Oogenesis in Xenopus laevis (Daudin). I. Stages of oocyte development in laboratory maintained animals. J Morphol. 136 (2), 153-179 (1972).
  22. Kressmann, A., Celis, J. E., Grassmann, A., Loyter, A. Birnstiel M.L. Surrogate genetics. Transfer of Cell Constituents into Eucaryotic Cells. , 388-407 (1980).
  23. Middendorp, S. J., Maldifassi, M. C., Baur, R., Sigel, E. Positive modulation of synaptic and extrasynaptic GABAA receptors by an antagonist of the high affinity benzodiazepine binding site. Neuropharmacology. 95, 459-467 (2015).
  24. Dumont, J. N., Brummett, A. R. Oogenesis in Xenopus laevis (Daudin). V. Relationships between developing oocytes and their investing follicular tissues. J Morphol. 155 (1), 73-97 (1978).
  25. Dascal, N., Landau, E. M., Lass, Y. Xenopus oocyte resting potential, muscarinic responses and the role of calcium and guanosine 3′,5′-cyclic monophosphate. J Physiol. 352, 551-574 (1984).
  26. Buckingham, S. D., Pym, L., Sattelle, D. B. Oocytes as an expression system for studying receptor/channel targets of drugs and pesticides. Methods Mol Biol. 322, 331-345 (2006).
  27. Sigel, E., Baur, R., Trube, G., Möhler, H., Malherbe, P. The effect of subunit combination of rat brain GABAA receptors on channel function. Neuron. 5, 703-711 (1990).

Play Video

Cite This Article
Maldifassi, M. C., Wongsamitkul, N., Baur, R., Sigel, E. Xenopus Oocytes: Optimized Methods for Microinjection, Removal of Follicular Cell Layers, and Fast Solution Changes in Electrophysiological Experiments. J. Vis. Exp. (118), e55034, doi:10.3791/55034 (2016).

View Video