Optimized procedures for the isolation of single follicles, cytoplasmic RNA microinjections, the removal of surrounding cell layers, and protein expression in Xenopus oocytes are described. In addition, a simple method for fast solution changes in electrophysiological experiments with ligand-gated ion channels is presented.
Xenopus ооцитов в качестве гетерологичной системе экспрессии белков, впервые был описан Гэрдон соавт. 1 и широко используются с момента его открытия ( Список литературы 2 – 3, и ссылки в ней). Характерным , что делает ооцитов привлекательным для экспрессии чужеродных канала является низкое обилие эндогенных ионных каналов 4. Эта система экспрессии, оказалась полезной для характеристики многих белков, среди которых лиганд-ионные каналы.
Экспрессия рецепторов ГАМК А в Xenopus ооцитах , и их функциональных характеристик описана здесь, в том числе выделения ооцитов, микроинъекций кРНК, удаление фолликулярной клеточных слоев и быстрых изменений решений в электрофизиологических экспериментах. Процедуры были оптимизированы в этой лаборатории 5,6 и отклоняются от тех , которые обычно используются 7-9. Традиционно обнаженные ооциты получаютс длительной обработки коллагеназой яичника долей при комнатной температуре, и эти оголенных ооцитов микроинъекции мРНК. Используя оптимизированные методы, различные мембранные белки были выражены и изучены с помощью этой системы, такие как рекомбинантные рецепторы ГАМК А 10-12, рекомбинантный человеческий хлорид каналов 13, трипаносом калиевые каналы 14 и мио -inositol транспортером 15, 16.
Методы , подробно описанные здесь , могут быть применены к экспрессии любого белка выбора в Xenopus ооцитах, а также быстрое изменение раствор может быть использован для изучения других ионных каналов лигандами.
Xenopus ооциты широко используются в качестве системы экспрессии (Ссылки 2 – 3 и ссылки в ней). Они способны правильно собрать и включить функционально активные белки мультисубъединичный в их плазматических мембран. С помощью этой системы можно функционально исследовать мембранные белки, по отдельности или в сочетании с другими белками, с целью изучения свойств мутировавших, химерные или сцепленных белков, а также для скрининга потенциальных лекарственных средств.
Преимущества использования ооцитов по сравнению с другими гетерологичных системах экспрессии включают простую обработку гигантских клеток, высокую долю клеток, экспрессирующих иностранную генетическую информацию, простое управление окружающей средой ооцита с помощью ванны перфузией, а также контроль мембранного потенциала ,
Недостатком этой системы экспрессии является сезонное изменение наблюдается во многих лабораториях 17-20. Причиной этого изменениядалеко не ясно. Кроме того, качество ооцитов часто наблюдается в сильно различаться. Традиционные методы 7-9 включили изоляцию яичник долей, подверженность яичник долей к коллагеназы в течение некоторого ч, выбор оголенных ооцитов, и ооцитов микроинъекции. Здесь целый ряд альтернативных, быстрых процедур сообщили, что позволили нам работать с этим выражением системы в течение более 30 лет без сезонных колебаний и небольшим изменением качества ооцитов.
Модифицированные и усовершенствованные способы , описанные здесь , для выделения ооцитов, микроинъекции с кРНК, и удаления фолликулярной клеточных слоев могут быть использованы для экспрессии любого белка выбора в ооцитах Xenopus. Самый простой способ для быстрого изменения растворе среды вокруг ооцита могут быть применены к изучению любого лиганда ионными канала и носителей.
Методы , описанные в этой статье , отклоняются от тех , которые используются традиционно 7-9. Общепринято подвергать мочки яичника 1 до 2 ч лечения 8 коллагеназы; изолировать неповрежденные, денудированные ооцитов; и вводят их с мРНК с использованием коммерческих устройств для …
The authors have nothing to disclose.
This work was supported by the Swiss National Science Foundation grant 315230_156929/1. M.C.M. is a recipient of a fellowship (Beca Chile Postdoctorado from CONICYT, Ministerio de Educacion, Chile).
NaCl | Sigma | 71380 | |
KCl | Sigma | P-9541 | |
NaHCO3 | Sigma | S6014 | |
MgSO4 | Sigma | M-1880 | |
CaCl2 | Sigma | 223560 | |
Ca(NO3)2 | Sigma | C1396 | |
HEPES | Sigma | H3375 | |
Penicilin/streptomycin | Gibco | 15140-148 | 100 μg penicillin/ml and 100 μg streptomycin/ml |
Platinum wire loop | home-made | ||
Micropipette puller | Zeitz-Instruments GmBH | DMZ | |
Hamilton syringe | Hamilton | 80300 | 10 μl, Type 701N |
Thick walled polytetrafluoroethylene tubing | Labmarket GmBH | 1.0 mm OD | |
Paraffin oil | Sigma | 18512 | |
Nylon net, gauge 0.8 mm | ZBF Züricher Beuteltuchfabrik AG | ||
Borosilicate glass tube | Corning | 99445-12 | PYREX |
Collagenase NB Standard Grade | SERVA | 17454 | |
Trypsin inhibitor type I-S | Sigma | T-9003 | |
EGTA | Sigma | E3389 | |
Glass capillary | Jencons (Scientific ) LTD. | H15/10 | 1.35 ID mm (for perfusion), alternative company: Harvard Apparatus Limited |
Borosilicate glass capillary | Harvard Apparatus Limited | 30-0019 | 1.0 OD X 0.58 ID X 100 Length mm (for microinjection) |
Borosilicate glass capillary | Harvard Apparatus Limited | 30-0044 | 1.2 OD X 0.69 ID X 100 Length mm (for two-electrode voltage clamp) |
γ-Aminobutyric acid (GABA) | Sigma | A2129 | |
3α,21-Dihydroxy-5α-pregnan-20-one (THDOC) | Sigma | P2016 | |
grill motor | Faulhaber | DC micromotor Type 2230 with gear Type 22/2 | |
micrometer screw | Kiener-Wittlin | 10400 | TESA, AR 02.11201 |
Sterile plastic transfer pipettes | Saint-Amand Mfg. | 222-20S |