We present a protocol to generate primary cultures of murine and human esophageal stromal cells with a myofibroblast phenotype. Cultured cells have spindle shaped morphology, express α-SMA and vimentin, and lack epithelial, hematopoietic and endothelial cell surface markers. Characterized stromal cells can be used in functional studies of epithelial-stromal interactions.
Murine e umane esofagea miofibroblasti sono generati tramite digestione enzimatica. Neonato (8-12 giorni di età) murino esofago viene raccolto, tritata, lavata, e sottoposto a digestione enzimatica con collagenasi e dispasi per 25 min. I campioni di resezione esofagea umani sono spogliati di muscolare propria e avventizia e la mucosa restante viene macinata, e sottoposti a digestione enzimatica con collagenasi e dispasi per un massimo di 6 ore. Cellule in coltura esprimono α-SMA e vimentina e desmina espresso debolmente o per niente. Condizioni di coltura non sono favorevole alla crescita di epiteliale, ematopoietiche o cellule endoteliali. Cultura purezza è ulteriormente confermata da una valutazione citometria a flusso di espressione marcatore superficie cellulare del potenziale contaminante ematopoietiche ed endoteliali. La tecnica descritta è semplice e si traduce nella generazione coerente non hematopoieitc, cellule stromali non endoteliali. Limitazioni di questa tecnica sono inerenti all'uso dicolture primarie di studi di biologia molecolare, cioè, la variabilità inevitabile incontrato tra le culture stabilite in diversi topi e nell'uomo. Colture primarie, tuttavia, sono una riflessione più rappresentativo dello stato in vivo rispetto alle linee cellulari. Questi metodi forniscono anche gli investigatori la possibilità di isolare e cellule stromali cultura di diverse condizioni cliniche e sperimentali, permettendo il confronto tra gruppi. Cellule stromali esofagee caratterizzato possono essere utilizzati anche in studi funzionali in relazione alle interazioni epiteliali-stroma nei disturbi esofagei.
Interazioni epiteliali-stromale sono coinvolti nella regolazione di una varietà di funzioni del tratto gastrointestinale, tra cui la rigenerazione della mucosa, la riparazione, la fibrosi e la carcinogenesi 1,2. Queste interazioni sono state meglio studiate nel piccolo intestino e colon e possono svolgere un ruolo simile in alterazioni della mucosa esofagea 3. Una sottopopolazione di cellule stromali miofibroblasti intestinali e del colon chiamati è stata dimostrata a partecipare a mediare lesioni dei tessuti, l'infiammazione e la riparazione di 4,5. Nel tratto GI distale, queste cellule fusiformi sono adiacenti alla membrana basale all'interfaccia tra l'epitelio e lamina propria e sono definiti come α-SMA e vimentina positivo, pan-citocheratina negative, e debolmente positivo o negativo desmina 5.
Lo stroma esofagea non è stato rigorosamente caratterizzato a livello cellulare o molecolare. Il nostro lavoro in esofago murino ha demonstrated α-SMA cellule e vimentina nello stroma esofageo, di tanto in tanto soggiacenti alla epitelio squamoso 6. Interazioni epiteliali-stromale sono stati implicati in alterazioni della mucosa esofagea quali gastro-esofageo danno mediato 6 e esofagite eosinofila 3. Stenosi fibrotiche sono anche una complicanza nota di cellule stromali e lesioni esofagee sono stati implicati nella patogenesi della fibrosi gastrointestinale. L'isolamento di queste cellule aiuterà compiere gli studi necessari per indagare vie di segnalazione squilibrati.
Questa presentazione fornisce le tecniche necessarie per stabilire colture primarie di α-SMA positive, miofibroblasti positivi vimentina tale che le lacune esistenti nella conoscenza per quanto riguarda le vie di segnalazione che mediano queste interazioni possono essere affrontati. La tecnica descritta è stata utilizzata con successo dagli autori per stabilire miofibroblasti primari murini colon 7 e further adattato per l'istituzione di murine 6 e cellule stromali esofagee miofibroblasti come umani.
Qui descriviamo le condizioni necessarie per realizzare e caratterizzare queste culture stabilite dal mouse o esofago umano prima dell'uso in studi funzionali futuri. Le culture possono essere coltivate e utilizzate fino a 15 passaggi. Isolamento e la creazione di colture primarie tramite le modalità descritte di seguito genera cellule stromali con fenotipo miofibroblasti; α-SMA, vimentina positivo, e debolmente positivo o negativo per la desmina, e citocheratina negativo. Questo fenotipo è distinto dal fenotipo del fibroblasto esofageo che è prevalentemente vimentina positivo, α-SMA negative 3 o α-SMA positive, vimentina fenotipo negativo della muscolaris mucosae 6.
Le tecniche per la generazione di colture primarie sono generalmente simile usando il tessuto murino o umano con tritare e digestione volte adattati per dimensioni del tessuto. La nostra esperienza con il tessuto murino suggerisce che con i metodi sopra descritti costantemente comporta successo creazione di colture primarie. Passaggi critici nel protocollo comprendono la sterilizzazione di attrezzature chirurgiche e seguendo le tecniche sterili standard di coltura di tessuti. L'età dei topi è anche un passaggio cr…
The authors have nothing to disclose.
Authors have nothing to disclose.
Name | ||
Tissue culture reagents | ||
HBSS | Sigma Aldrich | H6648 |
dispase | GIBCO, Invitrogen | 17105-041 |
collagenase XI | Sigma-Aldrich | C9407 |
DMEM | GIBCO, Invitrogen | 11965-092 |
sorbitol | Sigma-Aldrich | S1876 |
FBS | Sigma) | F42442 |
transferrin | Roche | 10-652-202-001 |
trypsin/EDTA | Corning | 25-052-Cl |
epidermal growth factor | Sigma-Aldrich | E9644 |
trypsin/EDTA | Corning | 25-052-Cl |
Reagents for immunostaining | ||
goat serum | Sigma Aldrich | G9023 |
Mouse mAB to α-SMA | abcam | ab7817 |
Rabbit pAB to vimentin | abcam | ab45939 |
Cy2 conjugated Goat anti Rabbit | Jackson ImmunoResearch | 111-225-144 |
DAPI | sigma-aldrich | D8417 |
CD31 conjugated to eFluor 450 | ebiosciences | 48-0319-410 |
CD90 conjugated to APC | ebiosciences | 17-0909-41 |
Annexin V and 7AAD | BD Pharmigen | 559763 |
mouse Fc block for CD16/CD32 | BD Pharmigen | 2136662 |
Equipment | ||
5 ml tube | eppendorf | 30108310 |
Motic AE31 inverted microscope | Motic AE31 inverted microscope | Motic AE31 inverted microscope |
Nuaire Biosafety Cabinet and Incubators | Nuaire Biosafety Cabinet and Incubators | Nuaire Biosafety Cabinet and Incubators |
4-well chamber slides | Thermo Scientific | 177437 |
Eppendorf Centrifuge 5810R | Eppendorf Centrifuge 5810R | Eppendorf Centrifuge 5810R |
Olympus Vacuum-Driven Filter System | Genesee Scientific | 25-227 |
Nikon Eclipse TE300 Fluorescent Microscope | Nikon Eclipse TE300 Fluorescent Microscope (Tokyo, Japan) | |
6 well plates | Corning | 3516 |
T25 Flasks | TRP | 90026 |
T75 Flasks | Corning | 43064 |
Dissection Scissors | Dissection Scissors | Dissection Scissors |
Dissection Forceps | Dissection Forceps | Dissection Forceps |
Single Tipped Q-Tips | Kendall | 540500 |
T75 Flasks | Corning | 43064 |
Software | ||
Metamorph software (Molecular Devices) | Molecular Devices | |
FACSCAlibur | BD Bioscience | |
FACSVerse | BD Bioscience |