この方法は、リフトバレー熱ウイルス(RVFV)MP-12株による感染の後、宿主細胞転写の変化を測定するためにクリックケミストリーの使用を記載している。結果は、蛍光顕微鏡を介して、定性的に可視化またはフローサイトメトリーを介して定量的に得ることができる。この方法は、他のウイルスとの使用に適合可能である。
多くのRNAウイルスは、細胞の防御を回避する手段として、宿主細胞の転写を阻害する能力を進化させてきた。これらのウイルスの研究のために、感染細胞において転写活性を測定する迅速かつ信頼できる方法を有することが重要である。伝統的に、転写はH-ウリジンは、このような免疫を介して検出が続き、5 -ブロモウリジン(BRU)などのハロゲン化ウリジン類似体のオートラジオグラフィーまたはシンチレーション計数、または組み込みを介した検出が続く3などの放射性ヌクレオシドの取り込みのいずれかにより測定された。 BRUの検出が煩雑になることができ、低感度に苦しむかもしれない放射性同位体の使用は、しかしながら、特殊な装置を必要とし、実験室の設定の数には不可能である。
アジドとアルキンから銅触媒トリアゾール形成を含む最近開発されたクリックケミストリーは、今では迅速かつhighlを提供していますこれら2つの方法にyを敏感代わる。クリックケミストリーは、新生RNAは、第1の蛍光アジドとの標識の検出に続いてアナログウリジン-5 – ethynyluridine(EU)の取り込みにより標識された2段階プロセスである。これらのアジドは可視化のためのオプションの広い範囲を可能にする、いくつかの異なる蛍光体として利用可能です。
このプロトコルは、クリックケミストリーを用いたリフトバレー熱ウイルス(RVFV)株MP-12に感染した細胞内で転写抑制を測定する方法を説明しています。同時に、これらの細胞におけるウイルスタンパク質の発現は、古典的な細胞内の免疫染色によって決定される。 4詳細手順1〜8詳細を通して、フローサイトメトリーを介した転写抑制を定量化する方法を、手順5ながら、蛍光顕微鏡を介した転写抑制を可視化する方法。このプロトコルは、他のウイルスとの使用に容易に適応可能である。
伝統的に、転写活性は、放射性(3 H-ウリジン)1のいずれかの取り込みを介して測定または新生RNAに(BRU)2ヌクレオシドハロゲン化されています。これらウリジン類似体は、細胞に取り込まヌクレオシドサルベージ経路を介しウリジン三リン酸(UTP)に変換され、続いて新たに合成されたRNAに組み込ま。3 H-ウリジンは、時間がかかることがオートラジオグラフィー、またはシンチレーションによって検出することができているカウント、特殊な装置を必要とします。さらに、放射性同位元素の使用が高い封じ込めバイオ研究所を含め、実験室の設定の数には実用的ではないかもしれない。 BRUは、RNA二次構造は、抗体結合のための立体障害かもしれないとして、RNAの核または部分変性に対する抗体のアクセスを確保するため厳しい透過処理が必要になる場合があります抗BRU抗体による免疫染色で検出することができます。
_content ">ここで記述されたプロトコルは、最近RVFV株MP-12に感染した細胞内で転写活性を測定する化学3をクリックして開発した。クリックケミストリーは非常に選択的かつ効率的な銅(I)触媒によるアルキンとの間の付加環化反応に依存して利用4,5アジド部分は、このプロトコルでは、感染細胞における新生RNAは、第ウリジンアナログEUの取り込みを介して標識される。第二 工程では、取り込まれたEU、蛍光アジドとの反応により検出される。この方法の主な利点はそれは放射性同位元素の使用を必要とせず、それはRNAの過酷な透過又は変性を必要としないこと。50μm未満Daの分子量と(2)、蛍光アジドのアクセスが不十分なことによって妨げられない(1)ということである透過またはRNAの二次構造。クラスにRNAの検出を組み合わせた場合また、研究者は一次抗体の彼らの選択に限定されるものではないウイルスタンパク質の免疫染色のiCal。蛍光顕微鏡(ステップ1-4)を介して転写を可視化するための一つであり、フローサイトメトリー(ステップ5-8)を介して転写を定量化するためのいずれかの2つの異なる方法は、このプロトコルに記載されている。どちらの方法でも、セル単位で転写活性とウイルス感染との間の相関を可能にするウイルスタンパク質に対する免疫細胞内で新生RNAの標識を結合する。
著者らは、正常プロトコルがRVFV株MP-12 6、トスカーナウイルス(TOSV)10に感染した別のMP-12変異体7,8、9、及び細胞に感染した細胞に感染した細胞において転写活性を決定するために、ここで説明に使用した。ここで説明するプロトコルは、簡単に異なるウイルスの使用に適合し、特定のウイルス又は細胞タンパク質の免疫蛍光染色を含むように修正される可能性を有することができる。
提供されたプロトコールは、新生RNAへウリジンアナログEUの取り込みを介して宿主細胞の転写に対するウイルス感染の影響を測定するための方法が記載されている。それは、高速で敏感であり、それは、放射性同位元素の使用に依存しない:この方法は、従来の方法に比べていくつかの利点を有する。さらに、この方法は、蛍光顕微鏡又は本質的に同じ試薬を用いてフローサイトメトリーを?…
The authors have nothing to disclose.
私たちは、フローサイトメトリーのヘルプのためにUTMBフローサイトメトリーコアファシリティのマウスポリクローナル抗RVFV抗血清とM.グリフィンを提供するためにRBテッシュに感謝します。サポートされていたこの作品は、NIHの助成金R01 AI08764301、優秀西部地域センターを通じて5 U54 AI057156によってサポートされていました、そしてUTMB.BKにおけるワクチン開発のためのシーリーセンターから資金がUTMB.OLでジェームズ·W·マクラフリンフェローシップ基金によってサポートされていましたモーリスR.ハイルマン早期キャリア調査官賞によって。
Name of Reagent/Material | Company | Catalog Number | Comments |
5-ethynyl-uridine | Berry & Associates | PY 7563 | dissolve in DMSO for 100 mM stock |
12-mm round coverslips | Fisherbrand | 12-545-82 | |
5 ml polystyrene tubes | BD Biosciences | 352058 | |
Actinomycin D (ActD) | Sigma | 9415 | dissolve in DMSO for 10 mM stock |
Alexa Fluor 488 goat anti-mouse IgG | Invitrogen | A-11029 | |
Bovine Serum Albumin (BSA) | Santa Cruz | sc-2323 | |
CuSO4 | Sigma | C-8027 | dissolve in H2O for 100 mM stock |
DAPI | Sigma | D-9542 | dissolve in H2O for 5 mg/ml stock |
DMEM | Invitrogen | 11965092 | |
FBS | Invitrogen | 16000044 | |
fluorescent azide (Alexa Fluor 594-coupled) | Invitrogen | A10270 | |
fluorescent azide (Alexa Fluor 657-coupled) | Invitrogen | A10277 | |
Fluoromount-G | Southern Biotech | 0100-01 | |
L-ascorbic acid | Sigma | A-5960 | dissolve in H2O for 500 mM |
paper filter | VWRbrand | 28333-087 | |
paraformaldehyde | Sigma | 158127 | |
Penicillin-Streptomycin | Invitrogen | 15140122 | |
poly-L-lysine (MW ≥ 70000) | Sigma | P1274 | |
Triton X-100 | Sigma | T-8787 | |
Trizma base | Sigma | T-1503 | dissolve in H2O for 1.5 M stock, pH 8.5 |
Trypsin-EDTA | Invitrogen | 25200056 | |
Fluorescence Microscope | e.g. Olympus IX71 | ||
Flow Cytometer | e.g. BD Biosciences LSRII Fortessa |