비접촉 유전 (cDEP)는 자신의 고유 유전 특성을 통해 정렬 및 입자의 농축 달성한다. 유체 전극 채널 살균 특성을 비 손상 및 생물학적 입자의 정렬에 cDEP 양복지, DEP에 대한 기존의 금속 전극을 교체합니다. 우리는 cDEP의 마이크로 디바이스를 준비하고 세포의 특성 및 정렬 실험을 수행하는 방법을 보여줍니다.
유전 (DEP)은 불균일 전기장에서 입자가 병진 운동을 겪는 편광되는 현상이며, 표면 마커 독립적 인 방식으로 미립자의 움직임을 지시 할 수있다. 전통적으로, DEP 장치 샘플 채널 패터닝 평면 금속 전극을 포함한다. 이 방법은 비용이 많이들 수 및 전문 클린 룸 환경을 필요로 할 수 있습니다. 최근 비접촉식 유전 (cDEP)라는 비접촉식 방법이 개발되었다. 이 방법은 직접 패터닝 유체 전극에 의해 전극과 샘플 사이의 접촉과 하나의 폴리 디메틸 실록산 (PDMS) 기판의 샘플 채널을 피하면서 DEP의 고전적인 원리를 활용 한 미세 입자를 정렬하고 풍성하게 디자인 된 빠른 미세 전략으로 응용 프로그램이 있습니다. 이 방법으로는 순 전계가 분리되어 도전성이 높은 액체를 포함하는 유체 전극 채널을 통해 생성된다는 것이다얇은 절연 장벽에 의해 샘플 채널. 금속 전극이 직접 샘플을 접촉하지 않기 때문에, 전기 분해, 전극의 박리 및 샘플의 오염을 방지 할 수 있습니다. 또한,이 저렴하고 간단한 제조 공정을 가능하게한다.
cDEP 따라서 민감한 생물 입자를 조작하기에 적합하다. 입자에 작용하는 유전 영 힘은 장치의 형상 맞춤형 디자인으로 생성 전계의 공간 구배 있지만 셀의 극한 생물 리 학적 특성에 단지 의존한다. 따라서, cDEP 여전히 bioparticles의 특성, 농축 및 정렬을 허용하면서 가변적으로, 인구 내에서 표현 될 수있다 표면 발현 분자 생체에 따라 방지 라벨이없는 기술이다.
여기, 우리는 cDEP를 사용하여 제조와 실험의 기본을 보여줍니다. 우리는 부드러운 석판을 사용하여 cDEP 칩의 간단한 준비를 설명Y 기술. 우리는 입자 또는 세포, 유전 력이 제로하는 주파수의 크로스 오버 주파수를 특성화 실험 절차를 논의한다. 마지막으로, 우리는 난소 암 세포의 혼합물을 정렬 및 미소 구 (비즈)를 형광이 기술의 사용을 보여준다.
생체 시료 농축 및 입자 정렬 후속 분석을 위해 필요한 경우가 많습니다. 1 예를 들어, 체액 희귀 세포의 분리가 암 탐지 및 개별 의학에서 중요한 응용 프로그램이 있습니다. 2,3 가장 일반적으로 사용되는 농축 기술은 형광 활성 세포 정렬합니다 (FACS 4) 자기 활성화 된 셀 (MACS), 세포를 구분하는 표현 표면 마커에 의존 5 정렬. 다른 전략은 유체 역학적으로 10 또는 관성 7,8 정렬 광학 핀셋, acoustophoresis 9, 10 및 유전 있습니다. 11,12 유전 영동은 불균일 한 전계의 존재하에 극성 입자의 운동이다. 13 DEP가 사용되어왔다 광범위한 응용, 2,14 생존, 15 세포의 생체 전기 특성을 특성화에 기초하여 셀을 정렬하는 등, (16)과 정렬세포의 생물 리 학적 특성에 유도 변화에 주입. 17,18 전통적인 DEP는 전압을인가하고이 강력한 기술이지만 불균일 전기장. (13)을 유도하는 미세 유체 채널 내에서 패터닝 된 평면 전극을 이용하여, 도전 같은 발생할 수 전극의 박리 및 전기. 절연체 계 유전 영동 (IDEP) (19)는 오염, 전극의 박리, 및 DC 전계 불균일성을 유도 패터닝 절연막 구조를 통해 전극 필드의 공간적 열화 문제를 해결하고있다. IDEP 선택적으로 라이브와 죽은 세균 세포를 분리하는 데 사용되었습니다, (19)는 세균 포자, 20, 조작 DNA, 다른 응용 프로그램 사이에 21을 격리 할 것. 종종 요구되는 높은 DC 전압의 결과로 발생할 수 있기 때문에 줄 가열 도전이 될 수 있습니다. 이러한 문제를 개선하기 위해, 비접촉식 DEP 마이크로 디바이스가 개발되고있다. 22-24
<p clasS =는 "jove_content"> 여기에 제시된 기술은 그래서 금속 전극과 샘플 채널 사이의 직접 접촉의 부족의 이름을 딴, 비접촉식 유전 (cDEP)를 사용합니다.이 전략의 고유 한 (22)가 가득 유체 전극 채널과 금속 전극의 대체 높은 전도성 용액. 이러한 유체 전극 용량 AC 전압을 통해 시료 채널에 얇은 절연 배리어를 통해 연결된다. 전극 샘플 접촉을 제거하면 전기 분해와 거품 형성, 샘플 오염, 전극의 박리 등의 DEP 기반의 방법과 관련된 문제를 줄일 수 있습니다. 이 샘플에서 세포의 생존을 지원하기 때문에 결과적으로 cDEP은 생체 시료에 특히 유용합니다. 중요한 것은, cDEP 샘플 불임을 유지 관리 할 수 있습니다. 칩은 세포 배양 후드에서 제조 될 수 있으며, 실험은 금속 전극에 시료의 접촉을 요구하거나 샘플 environme에 개방 할 필요없이 수행 될 수있다NT. 간단한 저장조 멸균 샘플 회수를 용이하게하기 위해 칩 콘센트에 고정 될 수있다. 또한, 샘플 채널과 같은 생체 적합성 폴리머 재료 (PDMS)까지 유체 전극의 제조는 금속 전극의 커스텀 패터닝, 제조에 필요한 시간에 따른 높은 비용을 감소시키고, 초기 패터닝 전문 크린룸 장비에 대한 필요성을 제한 재사용 할 수있는 실리콘 웨이퍼를 스탬프.DEP에 의한 입자의 움직임은 입자와 매체뿐만 아니라, 전기장의 공간 구배의 특성에 의존한다. 입자 및 주파수 종속 인자는 것은 Clausius-Mossotti (CM) 계수라고 범위 -0.5 ~ 1의 값을 취하고, DEP 힘의 방향을 판정한다. CM 요소가 정확히 제로되는 주파수는 크로스 오버 주파수라고한다. 이은 유전 힘이 입자와 CM 인자 변경 기호에 작용되지 않는 시점입니다. 의불활성 고체 미립자에 대한 화롯불 크로스 오버 주파수가 발생하면 음에서 양으로 CM 인자의 변화가 0.01 S / M, NDEP에서 pDEP 10 근처에 존재로의 전환을 나타내는 최초의 크로스 오버 주파수의 순서에 전도성이 낮은 버퍼의 포유 동물 세포 25. – 100 kHz로하고, 크기, 형상, 세포 골격 및 세포의 막 특성에 의해 영향을 받는다. 26,27 NDEP 정권 pDEP로부터 시프트에서 제 크로스 오버 주파수는 10 메가 헤르츠의 순서에 있고 의해 영향 핵 – 세포질 비율, 세포질 전도성 및 소포체. 27 DEP 힘은 유체 유동의 존재없이 적용 할 수 있지만, 여기에서 우리는 현탁 입자의 연속적인 정렬을 달성하기 흐르는 유체를 이용한다. 유전 힘과 스토크 항력의 결합 된 영향은 입자의 병진 운동을 지시.
우리는 두 개의 주파수 범위에서 작동을위한 장치를 개발했다. 높은 주파수 0Y 장치 (100 ~ 600 ㎑의 주파수) 전립선 종양 시작 세포 (틱), 쥐의 난소 표면 상피 (MOSE) 세포, MDA-MB-231 유방암 세포로, pDEP 세포의 달성 배치 정렬을 사용하여 작동, 또는 THP에게 살 수있다 선택적으로 샘플 채널에있는 게시물을 절연에 대한 관심의 세포를 포집하여 -1 세포. 28-31 낮은 주파수 (~ 100 kHz에서) 장치는 지속적으로 작동하고, 주파수에서 작동 할 때 한 인구는 배경 인구 경험하면서 pDEP을 경험하는 NDEP는 정렬 달성하는 입자 궤도를 리디렉션 할. 32-34 선택된 저주파 장치가 적혈구로부터 암세포를 정렬 프로그레시브 MOSE 세포주의 유전 특성의 변화를 결정하고, 비 효과를 명료하게하기 위해 사용되어왔다 공격적인 MOSE 세포의 공격적인 특성을 반전에 독성 스핑 고지 치료. 또한 cDEP의 마이크로 디바이스는 현재 최대 1 ㎖ / 시간, 증가 된 처리량으로 작동하도록 설계 될 수있다R. 31,35
설명한 바와 같이, 유연성 및 제조 공정의 저비용 제시된 실험 절차는 광범위한 애플리케이션에 대한 중요한되도록 맞춤 설계된 소자 구조를 가능하게한다. cDEP의 장기 목표 후속 배양 또는 처리를위한 샘플을 회수하여, 임상 수준에서 라벨없는 셀 정렬 및 농축을 실현하는 것이다. 여기에 제시된 기술은 DEP의 접근성을 증가하는, 제조에서의 실험으로, 간단하고 저렴한 방법입니다. 우리는 특성화 및 형광 마이크로 스피어에서 난소 암 세포의 농축을 달성하기 cDEP 칩의 제조 및 실험 프로토콜을 보여준다.
DEP는 입자의 유전 특성을 결정하고, 격리, 또는 농축 응용 프로그램을 정렬 방향으로 입자의 움직임을 지시하는 강력한 기술이다. 때문에 샘플에 직접 전극 접촉의 해로운 영향에, 다른 사람은 접촉을 피하기 위해 이전에 제시된 방법과 유사한 접근 방식을 촬영했습니다. 예를 들어, 바쉬르 외. 얇은 유리 커버 슬립에 의해 인쇄 회로 기판의 전극으로부터 분리 된 미세 유체 PDMS 장치를 사용하여 비접촉식 DEP 장치를 개발하고,이 기술은 비디오 포맷으로 제공된다. 23,36을
여기서, 우리는 단일 PDMS 기판을 사용 cDEP 칩과 유체 전극의 제조, 및 전지 및 형광 비드의 혼합물로부터 난소 암 세포를 분리하기위한 실험 프로토콜을 보여 주었다. 제시된 기법은 성공적 리브 정렬 등 복잡한 생리 학적으로 중요한 다양한 애플리케이션에 사용되어왔다E 및 사균은 28 종양 전립선 암 세포에서 세포를 개시 묽은 적혈구, 31,32 및 유방암 (37) 및 난소 암의 단계 사이에서 구별 30 암세포. 29 cDEP 또한 입자를 혼합하는 데 사용되었다. 38 선택된 애플리케이션은 제시된 간단한 기술을 이용하여, 다양한 목적은 채널 형상의 설계를 변경하는 것만으로 달성 될 수 있다는 것을 시사한다.
. DEP 입자는 구형 입자 (13)의 조작을위한 마이크로에 유용 병진 유전 힘의 크기 및 전기 입자와 그 현탁 매질의 성질뿐만 아니라, 전기장의 그래디언트의 제곱에 의존한다 :
ε의 m은 현탁 매질의 유전율이고, R은 반경입자 및 Rc는 [K (ω)]를 것은 Clausius-Mossotti (CM) 계수의 실수 부이다. CM 인자는 현탁 매질에 비해 입자의 상대적인 분극의 측정 값이며, 유전 힘의 방향을 판정한다. 그것은으로 설명되어 있습니다
어디에 과 각각 입자와 매질의 복소 유전율이다. 복잡한 유전율, , 전도도 (σ)과 주파수 (ω)에 따라 달라집니다. 구형 입자의 CM 인자는 이론적으로 -0.5과 1 사이의 바인딩. CM 계수가 음수 인 경우에는 매체의 입자보다 더 극성이기 때문에 입자가 영역에서 벗어나 있기 때문에, 입자 NDEP 발생할높은 전기장 그라디언트. CM 계수가 양수이면, 입자는 매질보다 더 극성이며, 그들은 높은 전기장 구배의 영역을 향해 이동되는 pDEP을 경험한다.
이러한 세포와 같은 구조에서 비균질 생물학적 입자 들어 것은 Clausius-Mossotti 계수 입자 유전율 대한 유효 값으로부터 결정될 수있다 :
어디에 과 각각 같은 세포질과 같은 세포의 내부, 및 세포막의 유효 복소 유전율의 복소 유전율이며. R은 셀의 반경이며, d는 세포막의 두께 (26)
DEP는 현탁 입자가 발생하면유체, 유체 입자의 상대 운동은 입자에 항력을 생성합니다. 입자에 작용하는 전체 힘을 결정할 때 항력이 고려되어야한다. 여기에서 관심의 상황에서, 점성 힘이 지배하고 입자가 구형 작은, 그리고 상대적으로 낮은 속도로 이동하는 것으로 간주됩니다, 그래서 스토크 드래그 법은 항력을위한 좋은 근사값을 제공합니다 :
η는 유체 점도이고, U (P)는 입자의 속도이며, U f를 또한 이동 될 수있다 유체의 속도이다. 유전 힘, 유체 및 입자 특성을 공지하고, 공지 된 유속 감안 항력 및 유전 힘 사이의 균형은 입자 속도를 추정하기 위해 해결 될 수있다. 세포 경험이 임계치 미만이어야 전단 속도하는 C에서엘 라이트 용해가 발생할 수 있습니다.
입자의 전기적 특성의 특성을 예측하고 그들이 DEP 아래를 응답하는 방법을 제어 할 필요가있다. 이 작품에서 우리는 특히 세포의 첫 번째 크로스 오버 주파수를 결정하기위한 프로토콜을 보여 MOSE-L 세포와 저주파 cDEP을 활용하고 자신의 반대 DEP 응답에 따라 폴리스티렌 비즈 MOSE-L 세포의 지속적인 정렬을 보여 주었다.
cDEP 장치의 형상이 장치는 고주파 또는 저주파의 동작을 위해 설계 될 수 있도록, 전계의 공간적 기울기를 변경하고, 높은 선택성 및 특정 세포 유형의 선별 효율을 바꾸는 것이다. 부가 적으로, 고 스루풋 장치는 넓은 채널을 제조하여 개발 될 수 있으며, 병렬, (30) 또는 전극 채널이 수직으로 비교적 깊은 상하에 적층 된 다층 제조 35, 30 채널샘플 채널. 얇은 멤브레인 층 사이의 장벽을 형성한다. 폴리 메틸 메타 크릴 레이트 (PMMA) 및 폴리 카보네이트로 제조 장치와 예비 테스트 (PC) 박막 MOSE-L 세포의 DEP 반응을 증명하고있다. 현재 노력은 다층 고 처리량 장치하실하고 궁극적 플러그 앤 플레이 플랫폼을 향해 주변 시스템을 개선하기 위해 진행중이다. 제시된 기본 실험 기법에서 확장하려면 장치의 응용 프로그램 및 사양은 특성화 대 정렬, 또는 장치에 샘플 저수지 및 반 자동화 시스템을 추가하는 등의 특정 요구를 맞게 조정할 수 있습니다.
The authors have nothing to disclose.
지원이 작품은 국립 과학 부여 번호 EFRI 0938047에서 재단 및 중요한 기술 및 응용 과학의 버지니아 공대 연구소 (ICTAS)에 의해 부분적으로 지원되었다. 저자는 MOSE-L 세포의 자신의 종류의 선물 박사 에바 Schmelz의 박사 폴 로버츠 감사의 말씀을드립니다. 저자는 그녀의이 문서를 편집하고 실험을 준비하는 그녀의 도움을 세포 배양, Caitlan Swaffar에 대한 지원, 그리고 모든 Bioelectromechanical 시스템 실험실 구성원 안젤라 앤더슨을 인정합니다.
Name of Reagent/Material | Company | Catalog Number | Comments |
Polydimethylsiloxane (PDMS) | Dow Corning, Midland, MI,USA | Sylgard 184 | |
Glass slides | The Microscope Depot | 76079 | 2×3 inch-ground edges |
Microbore PTFE Tubing | Cole-Parmer Instrument Co, Vernon Hills, IL, USA | EW-06417-31 | Thin walled 20 gauge, 0.032″ID x 0.056″OD, 100 ft/roll |
Luer-slip plastic syringes | National Scientific company | S7510-1 | |
Needle tip | Howard Electronic instruments | JG20-1.0 | 20 Gauge 1.0″, ID=0.025″ OD=0.036″ |
D(+)-Sucrose | Fisher Scientific, Fair Lawn, NJ | S3-500 | |
D(+)-glucose, reagent ACS, anhydrous | Acros Organics N.V., Fair Lawn, NJ | AC410955000 | |
RPMI-1640 Medium | Quality Biological Inc. | 112-025-101 | |
Calcein AM, Molecular Probes | Invitrogen Corp. (life technologies), Carlsbad, CA, USA | C3100MP | excitation wavelength 488/emission wavelength 516 |
Rhodamine B, O | Science Lab | SLR1465-100G | excitation wavelength 540/emission wavelength 625 |
Phosphate buffered saline (10X) | Gbiosciences, St. Louis, MO | RC-147 | |
Leica, inverted light microscope | Leica Microsystems, Bannockburn, IL, USA | Leica DMI 6000B | |
Leica DFC420, color camera | Leica Microsystems, Bannockburn, IL, USA | Leica DFC420 | |
Function generator | GW Instek, Taipei, Taiwan | GFG-3015 | |
Wideband power amplifier | Amp-Line Corp., Oakland Gardens, NY, USA | AL-50HF-A | |
HFHV Output Transformer | AL-T50-V25/300-F100K-600K | ||
High voltage amplifier | Trek | Model 2205 | |
USB Modular Oscilloscope, 100 MHz | AgilentTechnologies | U2701A | |
Expanded Plasma Cleaner | Harrick Plasma | PDC-001/002 (115/230V) | air plasma |
Scotch Magic tape | 3M | any available width is sufficient | |
1.5 mm puncher | Harris Uni-Core | Z708836-25EA | |
.25% Trypsin-EDTA | Invitrogen | 25200-056 | |
FluoSpheres Sulfate Microspheres | Invitrogen | F8858 | 4.0 μm, red fluorescent (excitation wavelength 580/emission wavelength 605) |
AZ 9260 photoresist | AZ Electronic Materials | ||
AZ 400 K developer | AZ Electronic Materials | ||
Tetramethylammonium hydroxide (TMAH) 25% | provided by Virginia Tech cleanroom | ||
Teflon coating | applied using DRIE machine | ||
Silicon wafer | University Wafer | 452 | 100 mm diameter, 500 μm thickness, one side polished (SSP) |
Deep Reactive Ion Etching (DRIE) | Alcatrel | AMS SDE 100 |