Summary

نظام ل<em> خارج الجسم</em> التثقيف البنكرياس الجنينية

Published: August 27, 2012
doi:

Summary

هنا، نحن تصف طريقة للثقافة والعزلة والتلاعب في البنكرياس الماوس الجنينية. هذا يمثل ممتاز<em> خارج الجسم</em> نظام لدراسة مختلف جوانب التنمية البنكرياس، بما في ذلك التمايز، التشكل والنمو. يمكن تربيتها إإكسبلنتس برعم البنكرياس لعدة أيام واستخدامها في مجموعة واسعة من التطبيقات المختلفة، بما في ذلك كله جبل المناعي والتصوير الحي.

Abstract

البنكرياس تسيطر الوظائف الحيوية من الجسم، بما في ذلك إنتاج الإنزيمات الهضمية وتنظيم مستويات السكر في الدم 1. رغم أنه في العقد الماضي العديد من الدراسات قد ساهمت في أساس متين لفهم توالد الأعضاء البنكرياس، ثغرات هامة لا تزال قائمة في معرفتنا تشكيل البنكرياس في وقت مبكر 2. وهناك فهم كامل لهذه الأحداث في وقت مبكر توفير نظرة ثاقبة على تطوير هذا الجهاز، ولكن أيضا في الأمراض المستعصية التي تستهدف البنكرياس، مثل مرض السكري أو سرطان البنكرياس. وأخيرا، فإن هذه المعلومات تولد مخططا لتطوير علاجات استبدال الخلايا في سياق مرض السكري.

خلال مرحلة التطور الجنيني، والبنكرياس تنبع من الامتداد الجنينية متميزة من الأديم الباطن المعى الأمامي الظهري البطني في اليوم والجنينية (E) 9.5 في جنين فأر 3،4. كلا الامتداد evaginate في اللحمة المتوسطة المحيطة بها ظهائر الصلبةبراعم لتر، التي تخضع الانتشار، المتفرعة والتمايز لإنشاء هيئة ناضجة تماما 2،5،6. وقد اقترح مؤخرا أن الأدلة نمو وتمايز الخلايا البنكرياسية الأنساب، بما في ذلك الخلايا المنتجة للانسولين β، ويعتمد على إعادة عرض مناسب، والأنسجة الطلائية العمارة وتحديد المواقع داخل الخلية ظهارة البنكرياس المتفرعة 7،8. ولكن، كيف يحدث المتفرعة التشكل والانتشار وبالتنسيق مع التمايز في البنكرياس غير معروفة إلى حد كبير. هذا هو في جزء منه يرجع ذلك إلى حقيقة أن المعرفة الحالية حول هذه العمليات التنموية اعتمدت بشكل حصري تقريبا على تحليل العينات الثابتة، في حين الأحداث تخلقية حيوية للغاية.

هنا، ونحن التقرير وسيلة لتشريح وزراعة الماوس الجنينية السابقين فيفو براعم البنكرياس على أطباق أسفل الزجاج، والتي تسمح رؤية مباشرة من البنكرياس النامية (الشكل 1). هذا عبادةوضعت بشكل مثالي لدى عودتهم نظام ليزر متحد البؤر المجهري المسح، ولا سيما التصوير الخلية الحية. يمكن إعداد إإكسبلنتس البنكرياس ليس فقط من أجنة الفئران البرية من نوع، ولكن أيضا من سلالات الفئران المعدلة وراثيا (جينيا أو مثل خروج المغلوب)، مما يسمح في الوقت الحقيقي من الدراسات الظواهر متحولة. وعلاوة على ذلك، هذه الثقافة الحية النظام السابق قيمة لدراسة آثار المركبات الكيميائية على التنمية البنكرياس، مما يتيح الحصول على بيانات كمية عن الانتشار والنمو، واستطالة، المتفرعة، tubulogenesis والتمايز. في الختام، وضع البنكرياس المجراة سابقا أسلوب الثقافة يزدرع جنبا إلى جنب مع التصوير عالية الدقة توفر منصة قوية لمراقبة تخلقية والتمايز الأحداث حال وقوعها داخل جنين فأر النامية.

Protocol

وقد تم تكييف البروتوكول الموصوفة هنا من تقنية صفها أصلا في بيرسيفال وسلاك 9 و الأمثل للفحص المجهري متحد البؤر. 1. طلاء الزجاج من الأطباق الاستزراع القاعي وينبغي إجراء الخطوات الآتية تحت ظ…

Discussion

مرة واحدة يتم تحديد مصير البنكرياس، الخلايا الاصلية البنكرياس الخضوع انتشار واسعة، والتمايز والتشكل في نهاية المطاف لتشكيل هيئة ناضجة وظيفية 2،4. في الوقت الحاضر، وكيف المتفرعة يحدث في البنكرياس وكيف يتم توصيله انتشار السلف والتمايز غير معروف إلى حد كبير. يزد?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

البحث في المختبر Spagnoli. بتمويل من مؤسسة هيلمهولتس، ومنحة FP7-IRG-2008-ENDOPANC وERC-2009-ابتداء المنح الكبدية.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Antibodies:
Carboxypeptidase
E-cadherin
F-actin
Glucagon
Insulin
β1-integrin
Pdx1
Pdx1
Phospho-Histone H3
AbD Serotec
Invitrogen
Molecular Probes
ImmunoStar
Millipore
Millipore
Abcam
Hybridoma bank
Cell Signalling
1810-0006
13-1900
A-12373
20076
4011-01
MAB1997
ab47267
F109-D12
9706
 
Basal Medium Eagle (BME) Sigma B1522-500ML Kept in sterile conditions
Cell culture grade water PAA S15-012 Kept in sterile conditions
Culture dishes (glass-bottomed), 35-mm MatTek Corporation P35G-0-20-C  
Donkey Serum Chemicon S30-100 ml  
Fetal calf serum Gold PAA A15-151 Kept in sterile conditions
Fibronectin Invitrogen 330100-8 Stock sol. 1 mg/ml in cell culture grade water
Gentamicin Invitrogen 15750-037 Kept in sterile conditions
Glutamine Invitrogen 25030-024 Kept in sterile conditions
4-well Multidishes Nunc 176740  
Microscopes:
Inverted Confocal Microscope (LSM 700)
Stereomicroscope (Discovery V12)
Zeiss

Zeiss
  Objectives:
C-Apochromat 10X / 0.45 W M27 (work. dist. 1.8 mm; imaging depth ~100 mm); C-Apochromat 40X / 1.2 W Corr M27 (work. dist. 0.28 mm; ~imaging depth 50 μm)

Transillumination from below and fiber-optic illumination from above
Paraformaldehyde Roth 0335.3 Stock solution 20%
Pasteur Pipet (Glass), 150 mm VWR HECH567/1  
Penicillin/Streptomycin PAA P11-010 Kept in sterile conditions
Petri dishes, 60 mm Greiner Bio-One 628102  
Petri dishes, 35 mm Greiner Bio-One 627161  
1X PBS, pH7.4 PAA H15-002 Kept in sterile conditions
Spring Scissors 8 mm blade curved Fine Science Tools 15023-10  
Triton-X100 Roth 3051.3  
Watchmaker’s foreceps Dumont #5 Roth K342.1  

References

  1. Slack, J. Developmental biology of the pancreas. Development. 121, 1569-1580 (1995).
  2. Pan, F., Wright, C. Pancreas organogenesis: from bud to plexus to gland. Dev. Dyn. 240, 530-565 (2011).
  3. Puri, S., Hebrok, M. Cellular Plasticity within the Pancreas- Lessons Learned from Development. Developmental Cell. 18, 342-356 (2010).
  4. Spagnoli, F. M. From endoderm to pancreas: a multistep journey. Cell. Mol. Life Sci. 64, 2378-2390 (2007).
  5. Hick, A. -. C. Mechanism of primitive duct formation in the pancreas and submandibular glands: a role for SDF-1. BMC Dev. Biol. 9, 1-17 (2009).
  6. Villasenor, A., Chong, D., Henkemeyer, M., Cleaver, O. Epithelial dynamics of pancreatic branching morphogenesis. Development. 137, 4295-4305 (2010).
  7. Kesavan, G. Cdc42-Mediated Tubulogenesis Controls Cell Specification. Cell. 139, 791-801 (2009).
  8. Zhou, Q. A Multipotent Progenitor Domain Guides Pancreatic Organogenesis. Developmental Cell. 13, 103-114 (2007).
  9. Percival, A., Slack, J. Analysis of pancreatic development using a cell lineage label. Exp. Cell Res. 247, 123-132 (1999).
  10. Miralles, F., Czernichow, P., Ozaki, K., Itoh, N., Scharfmann, R. Signaling through fibroblast growth factor receptor 2b plays a key role in the development of the exocrine pancreas. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 96, 6267-6272 (1999).
  11. Puri, S., Hebrok, M. Dynamics of embryonic pancreas development using real-time imaging. Dev. Biol. 306, 82-93 (2007).
  12. Magenheim, J. Blood vessels restrain pancreas branching, differentiation and growth. Development. 138, 4743-4752 (2011).
  13. Nagy, A., Gertsenstein, M., Vintersten, K., Behringer, R. . Manipulating the Mouse Embryo: A Laboratory Manual. , (2003).
  14. Horb, L. D., Slack, J. M. Role of cell division in branching morphogenesis and differentiation of the embryonic pancreas. Int. J. Dev. Biol. 44, 791-796 (2000).
  15. Muzumdar, M., Tasic, B., Miyamichi, K., Li, L., Luo, L. A global double-fluorescent Cre reporter mouse. Genesis. 45, 593-605 (2007).

Play Video

Cite This Article
Petzold, K. M., Spagnoli, F. M. A System for ex vivo Culturing of Embryonic Pancreas. J. Vis. Exp. (66), e3979, doi:10.3791/3979 (2012).

View Video