Summary

Выделение и культуре нейронов гиппокампа мышей от пренатального

Published: July 26, 2012
doi:

Summary

Мы предоставляем протокол к культуре высокой степени очистки нейронов гиппокампа из мозга мышей пренатальной без использования подачи глиальных слоя клеток.

Abstract

Первичные культуры крысы и мыши нейронов гиппокампа широко использованы для выявления клеточных механизмов в области нейробиологии. Выделяя и рост отдельных нейронов, ученые могут анализировать свойства, связанные с оборотом сотовых, сотовые структуры и отдельные локализации белка с помощью различных биохимических методов. Результаты этих экспериментов очень важны для проверки теории решения нейронные основы памяти и обучения. Тем не менее, однозначного результата от этих форм эксперимента основана на способности к росту нейронов культур с минимальным загрязнением другие типы клеток мозга. В этом протоколе, мы используем конкретные средства массовой информации предназначена для роста нейронов и тщательного вскрытия эмбриональной ткани гиппокампа для оптимизации роста здоровых нейронов при минимизации загрязнения типах клеток (например, астроциты). Эмбриональные ткани гиппокампа мыши может быть более трудно выделить, чем аналогичные ткани грызунов, в связи с размером выборки для ди-ssection. Мы покажем, подробные методы вскрытия гиппокампе мышей из эмбриональных день 19 (E19) щенков. После ткани гиппокампа изолирован, нежный диссоциации нервных клеток достигается с помощью разбавленной концентрации трипсина и механическое разрушение, направленных на отдельные клетки соединительной ткани, обеспечивая при этом минимальный ущерб отдельные клетки. Подробное описание того, как подготовить пипетки, которые будут использоваться в нарушение включен. Оптимальная плотность покрытия предназначены для иммуно-флуоресценции протоколов максимально успешной культуре клеток. Протокол обеспечивает быструю (около 2 ч) и эффективный способ для культуры нервных клеток гиппокампа мышей из ткани.

Protocol

1. Настройки до сбора урожая Для создания пренатальной щенков для сбора нейрона, график разведения между взрослых мышей 19 дней до дня изоляции нейронов. (C57BL / 6 мышей возрасте 2-8 месяцев были использованы в вязки в целях развития этого протокола). Успешное спаривание может быть…

Discussion

Гиппокампа культур используются в молекулярной биологии уже более 20 лет. Хотя в принципе нейронных культур могут быть сделаны из любой части мозга, гиппокампа культуры оказались самыми популярными в связи с относительно простой архитектуры населения нервных клеток в гиппокампе 7.</…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы благодарим д-р Майкл Вутен за помощь в подготовке рукописи. Эта работа была поддержана NIH 2RO1NS033661 (MWW).

Materials

Name of Reagent Vendor Catalog Number
Rat Tail Collagen 1 BD Biosciences 354236
Poly-D-lysine Solution Chemicon A-003-E
Hanks Balanced Salt Solution Invitrogen 14175-095
Trypsin Solution (1X) 0.25%, liquid Invitrogen 15050-065
NeuroBasal Medium (1X) liquid Invitrogen 21103-049
B27 Supplement (50X) liquid Invitrogen 17504-044
L-Glutamine 200 mM (100X) liquid Invitrogen 25030-149
Penicillin (10,000 units/ml) / Streptomycin (10,000 μg/ml) Invitrogen 15140-148
HI-Donor Horse Serum Atlanta Biologicals S12150H

References

  1. Banker, G. A., Cowan, W. M. Rat hippocampal neurons in dispersed cell culture. Brain Res. 126, 397-442 (1977).
  2. Brewer, G. J. Serum-free B27/neurobasal medium supports differentiated growth of neurons from the striatum, substantia nigra, septum, cerebral cortex, cerebellum, and dentate gyrus. J. Neurosci. Res. 42, 674-683 (1995).
  3. Brewer, G. J. Isolation and culture of adult rat hippocampal neurons. J. Neurosci. Methods. 71, 143-155 (1997).
  4. Brewer, G. J., Torricelli, J. R., Evege, E. K., Price, P. J. Optimized survival of hippocampal neurons in B27-supplemented Neurobasal, a new serum-free medium combination. J. Neurosci. Res. 35, 567-576 (1993).
  5. Burwell, R. D., Saddoris, M. P., Bucci, D. J., Wiig, K. A. Corticohippocampal contributions to spatial and contextual learning. J. Neurosci. 24, 3826-3836 (2004).
  6. Gluck, M. A., Myers, C., Meeter, M. Cortico-hippocampal interaction and adaptive stimulus representation: a neurocomputational theory of associative learning and memory. Neural Netw. 18, 1265-1279 (2005).
  7. Kaech, S., Banker, G. Culturing hippocampal neurons. Nat. Protoc. 1, 2406-2415 (2006).
  8. Mao, L., Wang, J. Q. Gliogenesis in the striatum of the adult rat: alteration in neural progenitor population after psychostimulant exposure. Brain Res. Dev. Brain Res. 130, 41-51 (2001).
  9. Mao, L., Wang, J. Q. Upregulation of preprodynorphin and preproenkephalin mRNA expression by selective activation of group I metabotropic glutamate receptors in characterized primary cultures of rat striatal neurons. Brain Res. Mol. Brain Res. 86, 125-137 (2001).
  10. Oorschot, D. E. Effect of fluorodeoxyuridine on neurons and non-neuronal cells in cerebral explants. Exp. Brain Res. 78, 132-138 (1989).
  11. Price, P. J., Brewer, G. J., Federoff, S., Richardson, A. Serum -free media for neural cell cultures. Protocols for Neural Cell Culture. , (2001).
  12. Shen, J., Watanabe, S., Kaneko, A. Cell dissociation with papain reduces the density of cGMP-activated channels of the retinal rod. Jpn. J. Physiol. 45, 151-164 (1995).
  13. Stratmann, G., Sall, J. W., May, L. D., Loepke, A. W., Lee, M. T. Beyond anesthetic properties: The effects of isoflurane on brain cell death, neurogenesis and long-term neurocognitive function. Anesthesia and Analgesia. 110, 431-437 (2009).
  14. Wallace, T. L., Johnson, E. M. Cytosine arabinoside kills postmitotic neurons: evidence that deoxycytidine may have a role in neuronal survival that is independent of DNA synthesis. J. Neurosci. 9, 115-124 (1989).

Play Video

Cite This Article
Seibenhener, M. L., Wooten, M. W. Isolation and Culture of Hippocampal Neurons from Prenatal Mice. J. Vis. Exp. (65), e3634, doi:10.3791/3634 (2012).

View Video