该协议提供了一个全面的程序,通过自发组装从组织培养芯片中的球形延伸的强健的轴突束来制造人类iPS细胞衍生的运动神经器官。
轴突的筋膜是神经系统中观察到的主要结构图案之一。轴感筋膜的破坏可能导致发育和神经退行性疾病。虽然已经对轴突进行了大量研究,但由于缺乏坚固的体外模型,我们对轴突筋膜的形成和功能障碍的理解仍然有限。在这里,我们描述了一个循步骤的协议,从微流体为基础的组织培养芯片中从人类诱导的多能干细胞(iPS)细胞中快速生成运动神经器官(MNO)。首先,描述了用于该方法的芯片的制造。从人类iPS细胞中,形成运动神经元球形(MNS)。接下来,区分的 MNS 将传输到芯片中。此后,轴突自发地从球形中长出来,在芯片中装备的微通道内组装成一个圆柱体,从而产生一个MNO组织,携带一束从球形延伸的轴突。对于下游分析,MNO 可以从芯片中取出,用于形态分析或剖析以进行生化分析,以及钙成像和多极阵列记录。通过该协议产生的多国机构可以促进药物测试和筛选,并有助于了解轴位筋膜发育和疾病的基本机制。
脊髓运动神经元 (MN) 将轴突扩展到骨骼肌肉以控制身体运动。它们的轴突轨迹在发展过程中具有高度的组织性和规范性。尽管对轴承扩展和指导1进行了许多研究,但组织轴束形成机制仍在调查中。运动神经元的轴突经常受到肌萎缩性侧索硬化症(ALS)2等神经退行性疾病的损害,但对轴突筋膜损伤的病理生理机理知之甚少。因此,需要一个生理和病理模型来回顾轴束的形成和回归。
人类干细胞源性运动神经元是了解ALS3等发育和疾病的有希望的平台。人类诱导的多能干细胞(iPS细胞)可用于使用患者衍生细胞模拟疾病。迄今为止,从多能干细胞到MN的各种分化方法已报告4,5,6。然而,二维培养中神经元的轴突是随机定向的,在发育中的神经中,轴突通过密集的轴突-轴位相互作用7进行单向组装,不能在体内微环境中重述。为了克服这个问题,我们开发了一种技术,从人类iPS细胞8中产生类似于运动神经的三维组织,并将组织命名为运动神经器官(MNO)。MNO由位于运动神经元球形(MNS)中的细胞体和从球形延伸出去的轴状筋膜组成。圆柱体中的轴突是单向方向的,类似于发展运动神经的轴突。因此,MNOs独特地提供了一种生理轴突微环境,这是任何其他以前开发的神经元培养方法所没有的。
在此协议中,我们描述了已开发芯片中组织培养芯片制造、快速运动神经元分化和运动神经器官形成的方法。我们的组织培养芯片非常简单,它只包含一个接受球形的隔间,一个用于形成轴束的微通道,以及一个用于安装轴星终端的隔间。该设备不包含复杂的结构,包括微流道或微孔过滤器,通常用于分离轴突和细胞体的大小9,10。因此,如果有光刻设置,则可以通过遵循本协议中描述的步骤轻松制造我们的设备。
通过诱导和模式因子(SB431542、LDN-193189、转录剂酸(RA)和平滑激动剂(SAG)和加速因子(SU5402 和 DAPT)的优化组合,实现了人类 iPS 细胞的快速分化。据报道,SU5402和DAPT的结合加速了外周神经元和神经峰细胞11的分化。在此协议中,我们提供了三种不同的方法来生成 MNO,以便读者可以决定最适合其需求的方法。我们建议在形成球形(3D方法)后对人体iPS细胞进行分化,因为分化的MNS可以直接转移到组织培养芯片中。或者,人类iPS细胞可以在单层(2D)培养中分化成运动神经元,然后创建成三维运动神经元球形,正如我们之前报道的8。我们更新了协议,通过本协议中描述的三维分化方法,可以避免从 2D 到 3D 的过渡,并且无需分离步骤即可以更短的分化时间、更少的步骤和更低的技术风险获得 MNO。商业上可用的神经元也可用于生成 MNS 以减少分化时间。
为了生成 MNO,我们在组织培养芯片中培养了 MNS。轴突从球体拉长,并延伸到轴突聚集和单向对齐的微通道。这有利于斧轴相互作用和在微通道中自发形成紧密组装的轴突单向束组织,这是本协议所独有的,而无论是自发捆绑形成还是引导轴突定向单独可以通过其他协议12、13、14来实现。在一个典型的实验中,很少有细胞从球体迁移到微通道,而且大多数细胞都留在球形附近。这种方法允许轴突自发地从球体中分离出来,而无需使用依赖大小的物理屏障(例如微沟或微孔过滤器)将轴突与细胞体分离。
由此产生的 MNO 可接受各种检查,包括形态学、生化和物理分析。细胞体和扩展轴束可以通过切割进行物理分离,并可单独分析以进行下游实验,例如生化检测。生物材料,包括RNA和蛋白质,可以从几个轴成束中分离,用于常规生化检测,包括RT-PCR和西方印迹。在这里,我们描述了从iPS细胞中生成运动神经器官的协议,它提供了一个有吸引力的生理和病理模型来研究轴心筋膜发育和疾病的机制。
此协议描述了运动神经器官 (MNO) 的形成,该有机体具有从人类 iPS 细胞生成的运动神经元球体中延伸的轴束。形成的轴束厚、灵活,在单向结构中组织良好。通过解剖轴突束,可以充分获得高纯度轴蛋白和RNA进行生化分析。神经元活性可以通过钙成像在轴突束和球形中测量。西方的污点没有检测到轴突利酸盐中核蛋白和树突蛋白的污染,这表明我们的方法有效地将轴突与细胞体和树突分离出来。
此协议的优点之一是 MNO 配备轴成捆绑包的快速分化和生成,其中所有流程均可在 4 周内使用 3D 协议完成,使用 2D 协议可在 5-6 周内完成。与其他通常需要 3-4 周才能从胚胎干细胞和 iPS 细胞17 中分化成 MN 的协议相比,这很短,并且需要额外的 2-4 周才能获得轴突拉伸。与 2D 协议相比,3D 协议通常优先于 2D 协议,因为与 2D 协议相比,没有分离步骤的分化时间更短、步骤更少、技术风险更小。基于微流体的组织培养芯片的设计方式使MNS的轴突可以通过微通道向另一个腔室拉长,从而通过诱导轴突的相互作用和轴突之间的亲和力,促进轴突束的形成。由于简单的实验设置,这里描述的所有方案不仅可以由生物工程师执行,他们熟悉组织培养芯片的操作,而且生物学家和神经科学家也不熟悉微流体和微压造技术。需要注意的是,第 1 步和第 2 步也可以使用外部制造服务执行。
完成协议的关键步骤之一是文化媒介的连续变化。建议在分化过程中每一步彻底改变文化介质,使乏力介质中的因素不干扰MN分化。此协议的另一个关键点是保持未分化的 iPS 细胞质量良好。初始 iPS 细胞培养物的质量显著影响获得运动神经元和 MNO 的效率。另一点是MNS的直径应该小于芯片孔的大小(1.5毫米)。较大的球体无法进入腔室,并有可能在中心部分经历严重的缺氧坏死。MNS 的大小可以通过更改 iPS 细胞的初始播种数量(在 3D 协议中)或运动神经元(在 2D 协议中)来控制。应针对每个 iPS 细胞线优化细胞的播种密度。
带微胶和小孔滤镜的分体微流体设备已被广泛用于将轴突与细胞体和树突分离。这种技术还可以将轴突与细胞体和树突分离出来,在捆绑组织中具有超强的轴突丰度。与其他方法相比,该方法的一个主要局限性是,在组织培养芯片的当前设计中,它不能分离两种不同的培养基,这妨碍了需要两种不同介质的两种不同细胞的共生能力。另一个限制是 PDMS 芯片对组织大小施加了预先确定的限制。大于孔的球体不能进入腔室,轴束不能比微流道的宽度更厚。
这种方法可以应用于其他类型的神经元。我们小组已经显示出使用修改的方法结合脑器官技术18对脑路进行建模的能力。皮质球体被引入舱室,轴突自发地向每个球体相互拉长,随后自发形成轴突束。因此,两个皮质球体可以通过轴束连接,组织可以作为一块获得。这表明,无论神经元细胞类型如何,这种方法都具有高度的多功能性,可以形成轴突束组织。在此协议中,使用了人类iPS细胞,但是,其他干细胞,包括人类ES细胞和人类神经干细胞,可以与修改提出的协议。神经元的3D球形可以通过不同的协议19,20产生。这种用轴束制作组织的方法将来有可能与其他分化方案相结合,用于制造3D MN球形。此外,只需改变组织培养芯片微通道的宽度和高度,即可控制轴束的厚度和长度,以备将来发展之用。
我们相信,这一协议可用于药物测试和筛选,并有助于了解轴感筋膜发育和疾病背后的机制。
The authors have nothing to disclose.
这项研究得到了日本科学促进会(JSPS)17H05661和18K19903、核心-2核心项目和超越人工智能研究所的支持。
(Tridecafluoro-1,1,2,2-tetrahydrooctyl)-1-trichlorosilane | Sigma | 440302 | |
16% Paraformaldehyde (formaldehyde) aqueous solution | Electron Microscopy Sciences | 15710 | |
200µl Wide Bore Pipet Tips | BMBio | BMT-200WRS | |
6-well plates | Violamo | 2-8588-01 | |
Accutase | ICT | AT104 | |
B-27 Supplement (50X) | Gibco | 17504044 | |
Bovine serum albumin | Sigma | A6003 | |
Brain-derived neurotrophic factor (BDNF) | Wako | 020-12913 | |
CO2 incubator | Panasonic | MCO-18AIC | |
Cryostor CS10 | Stem Cell Technologies | 07959 | |
DAPT | Sigma | D5942 | |
DMEM/F12 | Sigma | D8437 | |
Fluo-4 AM | Dojindo Laboratories | CS22 | |
GlutaMAX Supplement | Gibco | 35050-061 | |
Growth factor reduced Matrigel (basement membrane matrix) | Corning | 354230 | |
HB9 Antibody | Santa Cruz | sc-22542 | |
HBSS | Wako | 085-09355 | |
Hoechst 33342 | Sigma | 14533 | |
iCell motor neuron (commercially available human iPS cell-derived motor neurons) | Cellular Dynamics | R1051 | |
Isopropyl alcohol (IPA) | Wako | 166-04836 | |
Knock Out Serum Replacement | Gibco | 10828028 | |
LDN193189 | Sigma | SML0559 | |
MEA probe | Alpha MED Scientific inc | MED-P5004A | |
MEM Non-essential Amino Acid Solution (100x) (NEAA) | Sigma | M7145 | |
Microscope Glass | Matsunami | S9111 | |
mTeSR Plus | Stem Cell Technologies | 05825 | |
N2 supplement | Wako | 141-08941 | |
Neurobasal medium | Gibco | 21103049 | |
Penicillin-streptomycin | Gibco | 15140122 | |
Photoresist SU-8 2100 | Microchem | #SU-8 2100 | |
Prime surface 96U | Sumitomo Bakelite | MS-9096U | |
ReLeSR (passaging reagent) | Stem Cell Technologies | 05872 | |
Retinoic acid | Wako | 186-01114 | |
SAG | Sigma | SML1314 | |
SB431542 | Wako | 192-16541 | |
Silicon wafer | SUMCO | PW-100-100 | |
Silpot 184 w/c kit | Dow Toray | Silpot 184 w/c kit | |
Smi32 Antibody | Biolegend | 801701 | |
SU5402 | Sigma | SML0443 | |
SU-8 Developer | Microchem | Y020100 | |
Synapsin I Antibody | Millipore | Ab1543 | |
TrypLE Express liquid without phenol red (dissociation solution) | Gibco | 12604-021 | |
Tuj1 Antibody | Biolegend | 801202 | |
Y-27632 | Wako | 030-24021 |