Wir beschreiben, wie BlattbehausungShropoden quantifiziert werden, indem die Blätter und das Ende der Zweige in einem Beutel versiegelt, das verpackte Material abgeschnitten und eingefroren und das zuvor gefrorene Material in Wasser entspült wird, um Arthropoden zur Quantifizierung vom Substrat zu trennen.
Terrestrische Arthropoden spielen eine wichtige Rolle in unserer Umwelt. Die Quantifizierung von Arthropoden in einer Weise, die einen präzisen Index oder Schätzungen der Dichte ermöglicht, erfordert eine Methode mit hoher Nachweiswahrscheinlichkeit und einem bekannten Probenahmegebiet. Während die meisten beschriebenen Methoden eine qualitative oder semiquantitative Schätzung liefern, die für die Beschreibung von Artenpräsenz, Reichtum und Vielfalt geeignet ist, bieten nur wenige eine ausreichend konsistente Nachweiswahrscheinlichkeit und bekannte oder konsistente Probenahmegebiete, um einen Index oder eine Schätzung mit ausreichender Genauigkeit, um Unterschiede in der Häufigkeit zwischen Umgebungs-, Räum- oder Zeitvariablen zu erkennen. Wir beschreiben, wie Blattbewohnende Arthropoden quantifizieren, indem man die Blätter und das Ende der Zweige in einem Beutel versiegelt, das verpackte Material schneidet und einfriert und das zuvor gefrorene Material in Wasser spült, um Arthropoden vom Substrat zu trennen und zu quantifizieren. Wie wir zeigen, kann diese Methode auf einer Landschaftsskala verwendet werden, um Blattbehausende Arthropoden mit ausreichender Präzision zu quantifizieren, um zu testen und zu beschreiben, wie räumliche, zeitliche, ökologische und ökologische Variablen Dendurchreich und Überfluss der Arthropoden beeinflussen. Diese Methode ermöglichte es uns, Unterschiede in der Dichte, dem Reichtum und der Vielfalt der Blattbewohnenden Arthropoden zwischen 5 Gattungen von Bäumen zu erkennen, die häufig in südöstlichen Laubwäldern zu finden sind.
Terrestrische Arthropoden spielen eine wichtige Rolle in unserem Ökosystem. Neben wissenschaftlichem Interesse können Arthropoden sowohl schädlich als auch nutzbringend für Kulturen, Gartenbaupflanzen und natürliche Vegetation sein und eine wichtige trophische Funktion in Nahrungsbahnen bieten. Daher ist das Verständnis der Faktoren, die die Entwicklung und Fülle von Arthropoden beeinflussen, von entscheidender Bedeutung für Landwirte, Schädlingsbekämpfungsmanager, Pflanzenbiologen, Entomologen, Wildtierökologen und Naturschutzbiologen, die die Dynamik der Gemeinschaft untersuchen und insektenfressende Organismen zu bewirtschaften. Um Faktoren zu verstehen, die Arthropodengemeinschaften und Überfluss beeinflussen, müssen oft Individuen erfasst werden. Erfassungstechniken können im Allgemeinen in qualitative Techniken kategorisiert werden, die nur das Vorhandensein einer Art für Schätzungen des Artenreichtums, des Reichtums und der Vielfalt oder semiquantitative und quantitative Techniken, die einen Index oder eine Schätzung der Häufigkeit und Dichte von Individuen innerhalb einer taxonomischen Gruppe.
Qualitative Techniken, die nur Rückschlüsse auf das Vorhandensein einer Art oder Gemeinschaftsstruktur zulassen, haben eine unbekannte oder an sich geringe Nachweiswahrscheinlichkeit oder fehlen nicht, um Rückschlüsse auf die Nachweiswahrscheinlichkeit und die Größe der beprobten Fläche zu liefern. Da die Erkennungswahrscheinlichkeit mit diesen Techniken gering ist, schließt die mit der Detektion verbundene Variabilität eine angemessene Genauigkeit aus, um zu ableiten, wie erklärende Variablen die Meter der Arthropodenpopulation beeinflussen. Qualitative Techniken zur Schätzung der Anwesenheit sind Saugprobenahme1, Lichtfallen2, Emergenzfallen3, Fütterungsmuster auf Wurzeln4, Solerohre5, Köder6, Pheromon3, Fallfallfallen fallen 7, Malaise Fallen8, Fensterfallen9, Saugfallen10, Schlagschalen11, Spinnennetze12, Blattminen, frass13, Arthropoden Gallen14, Vegetation und Wurzelschaden15 .
Alternativ ermöglichen semiquantitative und quantitative Techniken es den Forschern, ein bestimmtes Probengebiet zu schätzen oder zumindest konsequent zu beproben und die Nachweiswahrscheinlichkeit zu schätzen oder anzunehmen, dass die Nachweiswahrscheinlichkeit nicht gerichtet und angemessen ist, verschleiern Sie die Fähigkeit des Forschers, räumliche oder zeitliche Variationen in Hülle und Fülle zu erkennen. Semiquantitative und quantitative Techniken umfassen Kehrnetze16, Saug- oder Vakuumprobenahme17, systematische Zählung sichtbarer Arthropoden18, Klebrige Fallen19, verschiedene Topffallen20, Eingang oder Emergent Löcher21, chemische Knockdown22, klebrige und Wasser gefülltE Farbfallen23, und Zweig Bagging und Clipping24.
Die jüngsten anthropogen-induzierten Veränderungen der Klima- und Störungsregime haben zu dramatischen Veränderungen in pflanzengemeinschaften geführt, wodurch Wechselwirkungen zwischen pflanzengemeinschaftlichen Arten und Arthropodengemeinschaften zu einem aktiven Untersuchungsgebiet werden. Zu verstehen, wie sich Arthropodengemeinschaften mit der Zusammensetzung von Pflanzenarten unterscheiden, ist eine entscheidende Komponente, um die potenziellen wirtschaftlichen und ökologischen Auswirkungen von Veränderungen in Pflanzengemeinschaften zu verstehen. Es sind semiquantitative oder quantitative Methoden zur Quantifizierung des Gliederfüßerüberflusses mit ausreichender Präzision erforderlich, um Unterschiede zwischen Pflanzenarten zu erkennen. In diesem Artikel beschreiben wir eine Methode zur Indexierung von Laub-Wohnarthropoden, die mit angemessenem Aufwand eine angemessene Präzision lieferten, um Unterschiede in der individuellen Fülle und Biomasse, Vielfalt und Reichtum zwischen 5 Taxa von Bäumen zu identifizieren, die häufig in die südöstlichen Laubwälder Nordamerikas25. Dieser Ansatz bot eine Präzision, die für die Schätzung des Überflusses ausreichte, um Rückschlüsse darauf zu ziehen, wie Veränderungen in der Artenzusammensetzung von Waldpflanzengemeinschaften aufgrund anthropisch modifizierter Störungsregime die Zusammensetzung von Arthropoden beeinflussen, Beeinflussung des Überflusses und der Verbreitung von höherer trophischer insektenfressender Vogel- und Säugetiere. Genauer gesagt, durch die Verwendung einer modifizierten Absacktechnik zuerst beschrieben von Crossley et al.24, schätzten wir die Dichte der Oberfläche, Laub-Wohnung Arthropoden und testete die Vorhersage, dass wir Unterschiede in Derartithe, Reichtum und Fülle von Arthropoden im Laub der schneller wachsenden mehr xeric Arten von Bäumen im Vergleich zu langsamer wachsenden mehr mesischen Arten. Das Ziel dieses Artikels ist es, detaillierte Anweisungen der Technik zur Verfügung zu stellen.
Wir führten die Studie über den Shawnee National Forest (SNF) im Süden Illinoiss durch. Der SNF ist ein 115.738 ha großer Wald in der Region Central Hardwoods der Ozarks und Shawnee Hills Natural Divisions26. Der Wald besteht aus einem Mosaik aus 37% Eichen-/Hickory-, 25% Gemischt-Upland-Laubhölzern, 16% Buchen/Ahorn und 10% Bodenlaub. Der SNF wird dominiert von zweiten Wachstum Eiche/Hickory in Upland xeric Bereiche und Zuckerahorn, amerikanische Buche und Tulpenbaum (Liriodendron tulipifera) in geschützten Mesic Täler27,28.
Die Standortauswahl für diese Methode hängt von den übergeordneten Zielen der Studie ab. So bestand das Hauptziel unserer ursprünglichen Studie darin, Einen Einblick zu geben, wie Veränderungen in der Baumgemeinschaft höhere trophische Organismen beeinflussen könnten, indem die Metriken der laubbewohnenden Arthropoden-Gemeinschaft zwischen mesischen und xeric angepassten Baumgemeinschaften verglichen werden. Unser primäres Ziel war es daher, die Arthropodengemeinschaft auf einzelnen Bäumen innerhalb der Xeric- oder Mesikbaumgemeinschaft zu quantifizieren. Wir wählten 22 Studienplätze entlang einer Eiche/Hickory (xeric) bis Buche/Ahorn (mesic) dominierten Gradienten mit USFS Standabdeckungkarten (allveg2008.shp) in ArcGIS 10.1.1. Um mögliche Störeffekte zu vermeiden, wählten wir Standorte nach den folgenden Kriterien aus: nicht in Denrainergebieten, 12 ha, und innerhalb zusammenhängender Hochland-Laubwald-Lebensräume (d. h. Höhe über 120 m). Alle Standorte enthielten reife Bäume >50 Jahre alt in hügeligem Gelände, so dass ähnliche Hänge und Aspekte enthalten. Während die Grenzen der Buchen/Ahorn-Standorte anhand des Übergangs von Baumgemeinschaften unterschieden wurden, wurden Eichen-/Hickory-Standortgrenzen künstlich anhand von SNF-Deckkarten und ArcGIS 10.1.1 identifiziert. Alle Standorte waren große Waldblöcke in unvergletschertem Gelände; ihre Unterschiede in der Zusammensetzung der Baumarten waren nicht auf unterschiedliche Standortlagen in der Landschaft zurückzuführen, sondern repräsentativ für die frühere Landnutzung (z. B. klare Schnitte oder selektive Ernte). Wir haben die Karten geerdet, indem wir diskrete Polygon-Shapefiles jedes Studienortes in ein Handheld Global Positioning System (GPS) hochgeladen und die Zusammensetzung der Baumarten überprüft haben. Wir haben stichprobenartig (n = 5) an jedem Standort ausgewählt. An jedem Punkt haben wir vom 23. Mai bis zum 25. Juni 2014 drei Bäume von 0600 bis 1400 Stunden beprobt. Um Probenbäume zu lokalisieren, suchten wir nach außen zu einem 30 m Radius von Vegetationspunkten, bis reife Bäume (>20 cm d.b.h.) mit Ästen gefunden wurden, die niedrig genug für die Probe waren. Typischerweise wurden die drei reifen Bäume, die drei der fünf Gattungen (Acer, Carya, Fagus, Liriodendron und Quercus) von Interesse darstellten und dem Mittelpunkt am nächsten waren, beprobt.
Zwei Notwendigkeiten der genau quantifizierenden Arthropodengemeinschaften sind relativ hohe Nachweiswahrscheinlichkeiten und bekannte oder konsistente Probenahmebereiche. Bei der Probenahme für Arthropoden kann die Erkennungswahrscheinlichkeit von weniger als 100 % entweder auf einzelne Arthropoden zurückgeführt werden, die Fallen vermeiden, oder auf einige Personen, die während der Verarbeitung unentdeckt waren. Abfangfallen, die fliegende Arthropoden abfangen (Malaise/Fensterfallen, Klebrige Fallen usw.) scheinen …
The authors have nothing to disclose.
Die Autoren danken dem U.S. Department of Agriculture Forest Service für die Finanzierung dieses Projekts durch das USFS-Abkommen 13-CS-11090800-022. Wir danken J. Suda, W. Holland und anderen für die Laborunterstützung und R. Richards für die Unterstützung vor Ort.
13 gallon garbage bags | Glad | 78374 | |
Aluminum rod | Grainger | 48ku20 | |
Pruner | Bartlet arborist supply | pp-125b-2stick | |
Telescoping pole | BES | TPF620 | |
Tomato Cage | Gilbert and Bennet | 42 inch galvanized |