Summary

結核複合体を研究するための感染モデルとしての無脊椎動物ガレリアメロネラの使用

Published: June 30, 2019
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Summary

ガレリアメロネラは最近、結核複合体の再現性、安価、倫理的に許容可能な感染モデルとして設立されました。ここでは、生物発光マイコバクテリウム・ボビスBCGルクスを用いたG.メロネラの正常な感染を確立するためのステップを説明し、実証する。

Abstract

結核は感染症死亡率の主要な世界的原因であり、世界の人口のおよそ4分の1が結核菌に感染していると考えられています。何十年もの研究にもかかわらず、病原性生物としての結核の成功の背後にあるメカニズムの多くは調査されるべきであり、より安全で効果的な抗マイコバクテリア薬の開発は、その上昇に取り組むために緊急に必要とされ、薬剤耐性結核の広がり。しかし、結核研究の進行は、高価で時間がかかり、倫理的に困難な伝統的な哺乳類感染モデルによってボトルネックとなっています。以前は、M.結核複合体のメンバーのための新規、再現性、低コスト、高スループットおよび倫理的に許容可能な感染モデルとして、昆虫ガレリアメロネラ(より大きなワックス蛾)の幼虫を確立しました。ここでは、生物発光マイコバクテリウム・ボビスBCGルクスを用いたG.メロネラの維持、調製、および感染について説明する。この感染モデルを用いて、マイコバクテリア用量依存性が観察され、生物発光測定を用いた生体内マイコバクテリア負荷の迅速な読み出しが容易に達成でき、再現可能である。トランスクリプトーミクス分析用に完全にアノテ付きゲノムが欠如するなどの限界は存在するが、遺伝的に類似した昆虫に対するオンロジカルな分析を行うことができる。結核の低コスト、迅速かつ倫理的に許容可能なモデルとして、G.メロネラは、薬剤の有効性と毒性を決定し、従来の哺乳動物の使用前に比較マイコバクテリアウイルス性を決定するために、事前スクリーンとして使用することができますモデル。G.メロネラ-マイコバクテリアモデルの使用は、現在結核研究で使用されている動物の実質的な数の減少につながります。

Introduction

結核(結核)は、年間900万人の新しい症例と150万人の死亡者1人と世界の公衆衛生に対する主要な脅威です。さらに、世界人口の4分の1が、結核菌(Mtb)の原因原因剤に感染していると推定されている。感染した集団の中で、5−10%が生涯にわたって活動性結核疾患を発症する。さらに、多剤耐性(MDR)および広範囲薬剤(XDR)耐性Mtbの出現と広がりは、疾病管理に深刻な脅威をもたらし、123カ国が少なくとも1つのXDR症例1を報告している。結核の治療は、少なくとも4つの抗マイコバクテリア薬のカクテルを必要とします, イゾニアジドとリファンピシンは、6ヶ月の最小期間のために処方されています;治療は、多くの場合、複雑な副作用や毒性に関連付けられています。結核に対する唯一のライセンスワクチンからの保護,マイコバクテリウムボビスバチルスカルメット-ゲリン (BCG),可変 2.結核の病因の不完全な理解は、新しい治療およびワクチン接種戦略の開発を著しく妨げる。

何十年もの間、動物感染モデルは、結核研究が感染に対する基本的な病因と宿主応答を理解し、新規の抗マイコバクテリア剤、免疫療法および新しいワクチン候補評価するために不可欠であった3、 4.しかし、結核感染の病因と進行が複雑であり、疾患の全スペクトルと重要な特徴を模倣する単一の動物モデルがないため、結核の動物感染モデルを用いた研究は難しいことで知られています5 、6.さらに、動物実験は高価であり、引き受けるには時間がかかり、完全な倫理的正当化が必要です。それにもかかわらず、結核の動物感染モデルは、非ヒト霊長類(例えば、マカク)、モルモット、ウサギ、ウタ、ブタ、マウスおよびゼブラフィッシュに記載されており、それぞれにその制限3、4を有する。マウスモデルは、コスト、交配ラインの利用可能性、感染の再現性および免疫学的試薬の豊富さのために最も一般的に使用されるモデルである。しかし、それらは通常、潜在結核感染(LTBI)6の特徴である低酸素症の領域に関連する肉芽腫を形成しない。モルモットはMtb感染の影響を非常に受けやすく、病理や初期肉芽腫の形成はヒトと同様であり、ワクチン検査で広く使用されています。しかし、免疫学的試薬の欠如は、感染モデル7としての使用を妨げる。ゼブラフィッシュは、小型、迅速な繁殖、高度な遺伝的ツールによる初期前臨床試験における大規模なスクリーニングに適していますが、解剖学的および生理学的に人間とは異なり、ヒトの影響を受けやすくなっています。マイコバクテリウム・マリナム感染症3.ヒトMtb感染に最も近い動物モデルは、非ヒト霊長類(例えば、マカク)であるが、それらは高価であり、その使用をかなり制限する重要な倫理的および実用的な考慮事項を有する8。

より大きなワックス蛾またはハニカム蛾の昆虫幼虫、ガレリアメロネラは、細菌および真菌病原体9の様々な感染モデルとしてますます人気が高まっており、新しい抗菌薬候補のスクリーンとして10. G. メロネラは、脊椎動物のそれと高い程度の構造的および機能的類似性を共有する高度な自然免疫系(細胞および体液防御からなる)による成功した無脊椎動物モデルです11.これには、ヘモサイトによる病原体の食細胞症(哺乳類のマクロファージおよび好中球に機能的に類似)12、13、抗微生物ペプチド(AMP)の産生および循環などの免疫機構が含まれる。G.メロネラ11のヘモリンパ内の補体様タンパク質(哺乳類の血液に類似)。モデルとしてのG.メロネラ幼虫の他の利点9、14、15は、簡単な操作と感染を可能にするその大きなサイズ(20−30ミリメートル)だけでなく、組織のコレクションを含みます分析のためのヘモリンパ、2)37°Cでの容易な維持、ヒト病原体の研究に適した、3)麻酔を必要としない注射による精密な感染、4)抗菌剤の有効性は、評価のためのより少ない薬剤を利用して評価することができ、5)の欠如哺乳類の使用に比べて倫理的な制約は、6)大きなグループサイズは、より大きな再現性を可能にする動物モデルと比較して使用することができ、7)感染実験のためのより短い時間が必要とされる。

最近の研究では、G.メロネラは、生物発光M.ビスBCGルクス、ワクチン株およびメンバーの遺伝子改変バージョンによる感染の病因を研究するための新しい感染モデルとして使用できることを実証しました。Mtb複合体 (MTBC)16の .G.メロネラは、以前は非結核マイコバクテリア(NTM)の感染モデルとして使用されてきましたが、主にM.マリナムおよびマイコバクテリウム膿瘍17、18を用いた研究は、MTBCを用いた研究に限定されています。Li et al.16の.Mtbの代理として封じ込めレベル(CL)2で使用できるバイオルミネッセンス非病原性マイコバクテリア株は、病原性マイコバクテリアに対する安全性と実用性の利点を提供します。BCGルクスに感染した後、幼虫は早期肉芽腫様構造を開発し始め、結核感染16の確立における自然免疫の役割に関する貴重な洞察を提供することができる。さらに、この単純な無脊椎動物感染モデルは、再現性のために制御された課題と複数の反復を組み込んだ結核病因の迅速かつ低コストかつ信頼性の高い評価を提供する可能性を有する。さらに、このモデルは、早期開発における新規な抗結核薬およびワクチン候補のスクリーニングに使用される可能性を有し、実験における動物の総数を減少させる。宿主および病原体構造の変化を測定する能力、転写物およびプロテオームは、薬物標的を決定し、新規薬物および治療ワクチンの作用機序を評価することも有利である。

ここでは、マイコバクテリア感染に対する生物発光M.ボビスBCGルクス接種およびG.メロネラ幼虫の調製のための実験プロトコルと、幼虫とマイコバクテリアの両方の決定について説明します。感染に応じて生存する。

Protocol

注:以下に説明するすべての作業は、地域の健康と安全に関するガイドラインに従って、クラス2の微生物学的安全キャビネット(MSC)内のCL2実験室で行われる予定です。 1. 感染に対するM.ボビスBCGルクスの調製 冷凍1.2 mLグリセロールを解凍する (15%)M.ボビスBCGルクスのストックは、ルシフェラーゼ酵素19をコードするビブリオハーヴェイ?…

Representative Results

ここでは、G.メロネラ-BCGルクス感染モデルを用いて得られる代表的なデータを提示し、MTBCのメンバーの感染モデルとしてのG.メロネラの利点を強調する(図1)。重要な技術的なポイントを持つ実験手順を図 2に概説します。 <img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/…

Discussion

感染モデルとしてのG.メロネラの使用は、ウイルス、宿主病原体相互作用の研究のための細菌および真菌病原体の数のために確立され、および新規治療のためのスクリーンとして10,22。以下の議論は、MTBCの感染モデルとしてG.メロネラを使用するための実験的手順に基づいている。

実験前の素朴な幼虫の健?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

このプロジェクトは、PRLとYL(BB/P001262/1)に授与されたバイオテクノロジー・生物科学研究協議会(BBSRC)の助成金と、PRLに授与された国立研究動物の置き換え、精製、還元のための国立センター(NC3R)の助成金によって支援されました。SMN、BDR、および YL (NC/R001596/1)。

Materials

1.5ml reaction tube (Eppendorf) Eppendorf 22431021
20, 200 and 1000 µl pipette and filtered tips Any supplier n/a
24 well culture plate Greiner 662160
25 ml pipettes and pipette boy Any supplier n/a
3 compartment Petri dish (94/15mm) Greiner 637102
Centrifuge Any supplier n/a
Class II saftey cabinet Any supplier n/a
Erlenmeyer flask with vented cap (250 ml) Corning CLS40183
Ethanol (>99.7%) VWR 208221.321
Galleria mellonella (250 per pk) Livefood Direct UK W250
Glycerol Sigma-Aldrich G5150
Homogeniser (FastPrep-24 5G ) MP Biomedicals 116005500
Hygromycin B Corning 30-240CR
Luminometer (Autolumat LB 953) Berthold 34622
Luminometer tubes Corning 352054
Lysing matrix (S, 2.0ml) MP Biomedicals 116925500
Micro syringe (25 µl, 25 ga) SGE 3000
Microcentrifuge Any supplier n/a
Middlebrook 7H11 agar BD Bioscience 283810
Middlebrook 7H9 broth BD Bioscience 271310
Middlebrook ADC enrichment BD Bioscience 212352
Middlebrook OADC enrichment BD Bioscience 212240
Mycobacterium bovis BCG lux Various n/a
n-decyl aldehyde Sigma-Aldrich D7384-100G
Orbital shaking incubator Any supplier n/a
Phosphate buffered saline Sigma-Aldrich P4417-100TAB
Polysorbate 80 (Tween-80) Sigma-Aldrich P8074-500ml
Small box Any supplier n/a dark vented or non-sealed box recommended
Tweezer Any supplier n/a Short and narrow tipped/Blunt long tweezers
Winterm (V1.08) Berthold n/a Program LB953.TTB
Petri dish (94/15mm) Greiner 633181
Filter paper (94mm) Any supplier n/a Cut to fit

References

  1. World Health Organization. . Global tuberculosis report 2018. , (2018).
  2. Colditz, G. A., et al. Efficacy of BCG Vaccine in the prevention of tuberculosis: meta-analysis of the published literature. Journal of the American Medical Association. 271 (9), 698-702 (1994).
  3. Meijer, A. H., Spaink, H. P. Host-pathogen interactions made transparent with the zebrafish model. Current Drug Targets. 12 (7), 1000-1017 (2011).
  4. Zhan, L., Tang, J., Sun, M., Qin, C. Animal models for tuberculosis in translational and precision medicine. Frontiers in Microbiology. 8, 717 (2017).
  5. Gumbo, T., Lenaerts, A. J., Hanna, D., Romero, K., Nuermberger, E. Nonclinical models for antituberculosis drug development: a landscape analysis. Journal of Infectious Diseases. 211 (Suppl 3), S83-S95 (2015).
  6. Williams, A., Orme, I. M. Animal models of tuberculosis: an overview. Microbiology Spectrum. 4 (4), (2016).
  7. Myllymäki, H., Niskanen, M., Oksanen, K. E., Rämet, M. Animal models in tuberculosis research – where is the beef?. Expert Opinion in Drug Discovery. 10 (8), 871-883 (2015).
  8. Flynn, J. L., Gideon, H. P., Mattila, J. T., Lin, P. L. Immunology studies in non-human primate models of tuberculosis. Immunological Reviews. 264 (1), 60-73 (2015).
  9. Cook, S. M., McArthur, J. D. Developing Galleria mellonella as a model host for human pathogens. Virulence. 4 (5), 350-353 (2013).
  10. Tsai, C. J. -. Y., Loh, J. M. S., Proft, T. Galleria mellonella infection models for the study of bacterial diseases and for antimicrobial drug testing. Virulence. 7 (3), 214-229 (2016).
  11. Wojda, I. Immunity of the greater wax moth Galleria mellonella. Insect Science. 24 (3), 342-357 (2017).
  12. Browne, N., Heelan, M., Kavanagh, K. An analysis of the structural and functional similarities of insect hemocytes and mammalian phagocytes. Virulence. 4 (7), 597-603 (2013).
  13. Arteaga Blanco, L. A., et al. Differential cellular immune response of Galleria mellonella to Actinobacillus pleuropneumoniae. Cell and Tissue Research. 370 (1), 153-168 (2017).
  14. López Hernández, Y., Yero, D., Pinos-Rodríguez, J. M., Gibert, I. Animals devoid of pulmonary system as infection models in the study of lung bacterial pathogens. Frontiers in Microbiology. 6, 38 (2015).
  15. Ramarao, N., Nielsen-Leroux, C., Lereclus, D. The Insect Galleria mellonella as a powerful infection model to investigate bacterial pathogenesis. Journal of Visualized Experiments. (70), e4392 (2012).
  16. Li, Y., et al. Galleria mellonella – a novel infection model for the Mycobacterium tuberculosis complex. Virulence. 9 (1), 1126-1137 (2018).
  17. Meir, M., Grosfeld, T., Barkan, D. Establishment and validation of Galleria mellonella as a novel model organism to study Mycobacterium abscessus infection, pathogenesis, and treatment. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 62 (4), (2018).
  18. Entwistle, F. M., Coote, P. J. Evaluation of greater wax moth larvae, Galleria mellonella, as a novel in vivo model for non-tuberculosis mycobacteria infections and antibiotic treatments. Journal of Medical Microbiology. 67 (4), 585-597 (2018).
  19. Snewin, V. A., Gares, M., #211;gaora, P., Hasan, Z., Brown, I. N., Young, D. B. Assessment of immunity to mycobacterial infection with luciferase reporter constructs. Infection and Immunity. 67 (9), 4586-4593 (1999).
  20. Newton, S., Martineau, A., Kampmann, B. A functional whole blood assay to measure viability of mycobacteria, using reporter-gene tagged BCG or M.Tb (BCG lux/M.Tb lux). Journal of Visualized Experiments. (55), (2011).
  21. Jorjão, A. L., et al. From moths to caterpillars: Ideal conditions for Galleria mellonella rearing for in vivo microbiological studies. Virulence. 9 (1), 383-389 (2018).
  22. Kavanagh, K., Sheehan, G. The use of Galleria mellonella larvae to identify novel antimicrobial agents against fungal species of medical interest. Journal of Fungi. 4 (3), 113 (2018).
  23. Champion, O., Titball, R., Bates, S. Standardization of G. mellonella larvae to provide reliable and reproducible results in the study of fungal pathogens. Journal of Fungi. 4 (3), 108 (2018).
  24. Wojda, I., Taszlow, P., Jakubowicz, T. The effect of cold shock on the immune response of the greater wax moth Galleria mellonella after infection with entomopathogenic bacteria Bacillus thuringiensis. Journal of Maria Curie-Sklodowska University. 69 (2), 7-18 (2015).
  25. Nascimento, I. P., Leite, L. C. C. The effect of passaging in liquid media and storage on Mycobacterium bovis – BCG growth capacity and infectivity. FEMS Microbiology Letters. 243 (1), 81-86 (2005).
  26. De Groote, M. A., et al. Comparative studies evaluating mouse models used for efficacy testing of experimental drugs against Mycobacterium tuberculosis. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 55 (3), 1237-1247 (2011).
  27. Grosset, J., et al. Modeling early bactericidal activity in murine tuberculosis provides insights into the activity of isoniazid and pyrazinamide. Proceedings of the National Academy of Sciences U.S.A. 109 (37), 15001-15005 (2012).
  28. Vogel, H., Altincicek, B., Glöckner, G., Vilcinskas, A. A comprehensive transcriptome and immune-gene repertoire of the lepidopteran model host Galleria mellonella. BMC Genomics. 12, 308 (2011).

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Asai, M., Li, Y., Khara, J. S., Gladstone, C. A., Robertson, B. D., Langford, P. R., Newton, S. M. Use of the Invertebrate Galleria mellonella as an Infection Model to Study the Mycobacterium tuberculosis Complex. J. Vis. Exp. (148), e59703, doi:10.3791/59703 (2019).

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