Summary

フローサイトメトリーを診断とフォローで主に急性骨髄性白血病、白血病幹細胞患者由来異種での見積もりに

Published: March 26, 2018
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Summary

フローサイトメトリーによる主な急性骨髄性白血病細胞白血病幹細胞マーカーの同時発現を検出するためのプロトコルの概要を説明します。3 前駆細胞集団と増加する成熟の程度と推定される LSC 人口を定量化する方法を示します。対応する患者-派生-異種移植片におけるこれらの個体群の存在を確認しました。

Abstract

急性骨髄性白血病 (AML) は異質と致命的な病気を治療されていない場合。成人の白血病による死亡の最も一般的な原因です。当初、急性骨髄性白血病は造血幹細胞 (HSC) の病気差別化、爆発性白血病細胞のそれに続く蓄積の逮捕によって特徴付けられる、造血の機能要素の生産量が減少します。不均一性白血病幹細胞 (LSC) の存在まで、この動的セル白血病の進行と治療中に課せコンパートメントは様々 な選択圧力を克服するために進化しています。LSC 人口をさらに定義するには、CD90 と CD45RA は cd 34 + CD38-細胞コンパートメント内正常造血多能性前駆細胞の差別をことができます。ここでは、多重フローサイトメトリーを用いたヒト急性骨髄性白血病の一次爆発細胞にいくつかの推定 LSC マーカー (CD34、CD38、CD45RA、CD90) の同時発現を検出するためのプロトコルをまとめました。さらに、3 つの前駆細胞集団と増加する成熟の程度と推定される LSC 人口を定量化する方法を示します。対応する患者-派生-異種移植片におけるこれらの個体群の存在を確認しました。検出のこのメソッドおよび推定 LSC の定量化が化学療法応答の臨床フォロー アップに使用する (すなわち。、微少残存病変)、残留 LSC は急性骨髄性白血病再発を引き起こす可能性があります。

Introduction

急性骨髄性白血病 (AML) は、白血病による死亡の最も一般的な原因です。当初、急性骨髄性白血病は造血幹細胞 (HSC) のクローン病分化、ブラスト細胞のそれに続く蓄積の逮捕によって特徴付けられる、造血機能の要素の生産量が減少します。最近では、ブラスト セル人口のクローンの不均一性の設置する本質的にシーケンス (NGS) の次世代戦略を使用して、腫瘍細胞1のクローン内の進化の存在を示します。

白血病幹細胞 (LSC) の存在する不均一性を拡張します。それは、この動的なセル区画は、白血病の進行と治療中に課せられた様々 な選択圧力を克服するために進化する仮定されます。したがって LSC は現在の化学療法レジメンに耐性があるし、深い臨床的意義2病気の再発を仲介になっています。様々 なマーカーは、ティム 36CD975や CLL 14CD1233LSC の特徴に記載されています。ブラスト細胞の cd 34 + CD38-コンパートメント LSC7豊かに言えますが、また通常 HSC が含まれています。Cd 34 + CD38 に適用される CD90 と CD45RA 式-(P6) コンパートメント (図 1) 正常および悪性造血前駆細胞8のいくつかの段階を分離することができます。具体的には、通常 cd 34 + CD38 CD90 + CD45RA HSCs、多能性前駆細胞 (MPP) cd 34 + CD38-CD90dimCD45RA-細胞など cd 34 + CD38-CD90-CD45RA + リンパ プライミング多能性前駆細胞 (LMPP) 細胞を急性骨髄性白血病の大半として定めることができる場合8 ,9。CD38 の平均蛍光強度 (MFI) は、CD34 陽性細胞コンパートメントの内で考慮することが大切です。CD38 強度その 3 つの新しい細胞のコンパートメントを定義するため: CD38 負 (P6)、CD38 dim (P7) と CD38 明るい (P8) (図 1)。CD38 の MFI は、これらの細胞は強く CD38 を特急として内部の肯定的な制御として hematogones およびプラズマ細胞のいずれかを使用して決定されるかもしれない。

免疫不全の合図/SCID/IL2Rγcnull (NSG) マウス モデルは通常の生着のため広く使用され悪性ひと造血細胞10,11。シリアル異種アッセイは、LSC または HSC 関数の実験的検証に使用されます。これらの研究は、大規模なシーケンスのアプローチによって広範囲に分析されています。それにもかかわらず、以下はその主な急性骨髄性白血病 (図 2) と比較して NSG マウスにしみ込んで AML ブラスト人口の LSC と HSC イムノフェノ タイプについて知られています。

LSC の番号を本質的に低、LSC の同定及び定量化が困難なここで説明する方法は、(残留 LSC として化学療法応答を評価するフローサイトメトリーアッセイ診断、臨床フォローとして使用する場合があります。急性骨髄性白血病再発を引き起こす)。LSC の存在は肯定的な微小残存病変 (MRD) 可能性があります。までに、MRD 分子法 (すなわちRT-PCR、NGS) に依存して急性骨髄性白血病で大抵監視10,12。しかし、このプロトコルでは我々 検出いくつかの HSC/LSC マーカー (CD34、CD38、CD45RA、CD90) の同時発現ヒト急性骨髄性白血病の一次爆発細胞に多重流れ cytometry2,8,9。この抗体の組み合わせ可能性があります任意の標準的な流れ cytometry 研究室で適用してこの流れ MRD の試金は、リアルタイムのポリメラーゼの連鎖反応 (RT-PCR) による MRD は不可能、特に興味深いすなわち場合、白血病特有の分子マーカーは、診断のアジア ・ マイル リミテッド サンプルで検出されません。さらに、このプロトコルはより敏感な分子 MRD 技術を補完するものそれは検出し、異常な造血前駆細胞を定量化することを目的として表します機能細胞特性 (図 3)。

臨床検査の大半で使用可能な抗体とフローサイトメトリーによる造血前駆細胞の 3 つの集団と成熟度が異なると推定される LSC コンパートメントを定量化する方法を示します。さらに、対応する患者-派生-異種移植片 (PDX) でこれらの細胞コンパートメントの存在を確認し、治療のフォロー アップ。

Protocol

我々 は科学的な目的のための動物の使用のためのヨーロッパ規格に従ってください。本研究は、ローカル倫理委員会 (#3097-2015120414583482v3) によって承認されました。 1. サンプル準備 De novo AML 抗凝固エチレンジアミン四酢酸 (EDTA) を含む管内から骨髄の mL あたり 1.8 mg の濃度で骨髄 (2 mL) を収集します。 続いて、赤血球および顆粒球、単核球を分離す?…

Representative Results

正常および悪性ひと骨髄サンプルで前駆細胞集団を決定する方法をご紹介します。成功 PDX から骨髄および脾臓を収集し、上記のように多重フローサイトメトリーを実行.ブラスト細胞診断患者検体と対応する PDX cd 34 + CD38-前駆コンパートメントでは特に、特に推定 LSC の濃縮のいくつかの集団を比較しました。PDX 診断患者サンプル (0.53%、図 2、 D対 3.48%) と?…

Discussion

膜やフローサイトメトリーによる細胞質マーカーの正確かつ再現性のある評価は、機器の設定、毎日光配向、流体システム、光感度、標準化の適切な機能を確認が必要です。キャリブレーション ビーズを使用しています。

パラメトリック最適化を用いたフローサイトメトリー法による CD90 と CD45RA を使用して急性骨髄性白血病でブラスト セル人口の検出は、比較的単純?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作品の一部、フランス語協会ローレット Fugain、LigueContre ルがん (北センター)、財団・ ド ・ フランス (白血病委員会)、SIRIC Oncolille、フランス国立がん研究所によって支えられました。

Materials

Pancoll PAN-Biotech P04-60500
RBC Lysis Buffer (10x) Ozyme BLE420301 RBC Lysis solution A : 8.29 g of NH4Cl + 0.037 g of Na2EDTA in 100 mL of sterile H2O and RBC Lysis solution B: 1 g of KHCO3 in 100 mL of sterile H2O
NOD/SCID/IL2Rγcnull  (NSG)  mice JACKSON LABORATORY Stock No: 005557
PBS Gibco by life technologies 14190-144
AutoMACS Running Buffer – MACS Separation Buffer MACS Buffer Miltenybiotec 130-091-221
Anti-CD36-FITC (clone FA6-152, Iotest) Beckman Coulter PN IM0766U
Anti-CD33-PC5.5 (clone D3HL60.251, Iotest) Beckman Coulter B36289
Anti-CD90-APC (clone 5E10) Biolegend 328114
Anti-CD19-ECD (clone J3-119, Iotest) Beckman Coulter A07770
Anti-CD34-AA700 (clone 581, Iotest) Beckman Coulter B92417
Anti-CD45RA-APC-H7 (clone HI100)  Beckton Dickinson 560674
Anti-CD38-Pacific Blue (clone LSI98-4-3, Iotest) Beckman Coulter B92396
Anti-CD45-KO (clone J.33, Iotest) Beckman Coulter B36294
Anti-CD3-PE Beckman Coulter IM1451
Anti-CD20-PE Beckman Coulter A07747
Anti-CD123-PC7 Beckman Coulter B13647
Flow-Set Beckman Coulter A63492
Flow-Check Beckman Coulter A63493
Navios Beckman Coulter DS-14644A
LSR Fortessa X20 BD Biosciences
CST BD BD Biosciences 655051
FacsFlow  BD Biosciences 336911
Anti-hCD45-FITC Biolegend BLE304006
Anti-mCD45-APC Biolegend BLE103112
EasySep human PE selection kit Stem Cell Technologies 18000
EasySep  magnet  Stem Cell Technologies 18551

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Cite This Article
Boyer, T., Gonzales, F., Plesa, A., Peyrouze, P., Barthelemy, A., Guihard, S., Quesnel, B., Roumier, C., Preudhomme, C., Cheok, M. Flow Cytometry to Estimate Leukemia Stem Cells in Primary Acute Myeloid Leukemia and in Patient-derived-xenografts, at Diagnosis and Follow Up. J. Vis. Exp. (133), e56976, doi:10.3791/56976 (2018).

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