Summary

Нейрофармакологических Манипуляция сдержанным и свободно летающих пчел мед,<em> Apis MELLIFERA</em

Published: November 26, 2016
doi:

Summary

Эта рукопись описывает несколько протоколов для введения фармакологических агентов для медоносных пчел, в том числе простых неинвазивных методов для свободно летающих пчел, а также более инвазивных вариантов, которые позволяют точно локализованную обработку сдержанных пчел.

Abstract

Медоносные пчелы демонстрируют удивительные способности обучения и передовые социального поведения и общения. Кроме того, их мозг мал, легко визуализировать и изучать. Таким образом, пчелы уже давно Одобренный модель среди нейробиологов и neuroethologists для изучения нейронной основы социального и естественного поведения. Важно, однако, что экспериментальные методы, используемые для изучения пчел не мешают поведения изучается. Из-за этого, было необходимо разработать ряд методов фармакологической манипуляции медоносных пчел. В этой статье мы покажем способы лечения сдержанные или свободно летающих пчел меда с широким спектром фармакологических агентов. К ним относятся как неинвазивные методы, такие как устные и актуальные лечения, а также более инвазивных методов, которые позволяют для точной доставки лекарственных средств в любом системном или локализованной моды. И, наконец, мы рассмотрим преимущества и недостатки каждого метода и описатьобщие препятствия и как наилучшим образом преодолеть их. В заключение дискуссии о важности адаптации экспериментального метода к биологическим вопросам, а не наоборот.

Introduction

Так как Карл фон Фриш выяснены их танец язык 1, мед пчелы остаются популярным видом исследования для исследователей в поведении животных и нейробиологии. В последние годы множество новых дисциплин появились на пересечении этих двух полей, а также ряд других дисциплин (например, молекулярной биологии, геномики и информатики) возникли рядом с ними. Это привело к быстрому развитию новых теорий и моделей для понимания того, как результаты поведения от деятельности в пределах нервной системы. Из-за уникального образа жизни, богатый поведенческий репертуар и простота экспериментальной и фармакологической манипуляции, пчелы остаются на переднем крае этой революции.

Медоносные пчелы используются для изучения основных нейробиологических такие вопросы, как те , лежащих в основе обучения и памяти 2,3, принятия решений 4, 5, обонятельной или визуальной обработки 6. В последние годы, хонEY пчелы даже был использован в качестве модели для изучения темы , как правило , отведенные для медицинских исследований, таких как последствия привыкание наркотики 7 11, 12 сон, старение 13, или механизмы , лежащие в основе анестезии 14.

В отличие от классических генетической модели организмов (например, дрозофилы, С. Элеганс, М. Musculus), существует очень мало генетических инструментов , доступных для манипулирования нейронные функции в медоносных пчел, хотя это в настоящее время меняется 15. Вместо этого, мед пчелы исследования в основном опирались на фармакологических манипуляций. Это было очень успешным; Тем не менее, разнообразие исследований пчелиного таково, что целый ряд методов для фармакологического управления необходимы. Исследования с медоносных пчел обращается к весьма разнообразные вопросы, изучается исследователями из различных дисциплин и фонов, а также использует различные экспериментальные подходы. Многие ResEарочные вопросы требуют пчел либо свободный полет, свободно взаимодействуя в своей колонии, или обоих. Это может сделать это трудно отслеживать отдельные экспериментальных животных, и делает сдержанность или катетеризацию неосуществимой.

Для размещения разнообразие исследований медоносной пчелы, различные методы доставки лекарственных средств необходимы, что обеспечивает надежную и гибкую администрирования, обеспечивая при этом, что фармакокинетические и фармакодинамические профили, инвазивность метода, и его надежность, подходит парадигму о котором идет речь. Из-за этих разнообразных потребностей, большинство исследовательских групп разработали свои собственные уникальные методы введения лекарственных средств. До сих пор это было сила пчелиного научного сообщества; это привело к разработке массивов методов, позволяющих для введения одного и того же препарата в разных обстоятельствах. Наша цель здесь не разработать единый стандартизованный метод фармакологических манипуляций пчел, а скорее, чтобы подчеркнуть, что методыоказались особенно успешными, и помогает исследователям принять их. Мы обсудим основные принципы того, как они работают, а также их преимущества и недостатки.

Protocol

1. Администрация Препарат для запряг Пчелы пероральное лечение Готовят раствор 1,5 М сахарозы путем смешивания 257 г сахарозы с 500 мл воды (это легче растворить такое количество сахарозы в кипящей воде). Хранить раствор сахарозы при 4 ° С до использования. Примечание:…

Representative Results

Выбор репрезентативных результатов для методов, описанных выше, показаны, в основном, чтобы продемонстрировать, что методы позволяют фармакологические средства, чтобы достичь мозга и влияют на поведение мед пчелы. Конкретные эффекты н…

Discussion

Методы, описанные выше, позволяют простое, эффективное и надежное лечение любого свободного полета или запряженных медоносных пчел. Эти методы совместимы со многими экспериментальными парадигмами и биологических вопросов (таблица 1). Все методы свободно летающих можно легко …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This project was funded by ARC grant DP0986021 and NHMRC grant 585442. ABB is supported by an ARC Future Fellowship (FT140100452). JAP is supported by an iMQRES scholarship awarded by Macquarie University and by a DAAD-Doktorandenstipendium awarded by the German Academic Exchange Service. JMD is supported by CNRS and University Paul Sabatier.

Materials

Sucrose Sigma-Aldrich S8501 Any supplier will do
Sodium Chloride Sigma-Aldrich S7653
Potassium Chloride Sigma-Aldrich P9333 
Magnesium Chloride hexahydrate Sigma-Aldrich M2670
Calcium Chloride dihydrate Sigma-Aldrich C8106
Dextrose monohydrate Sigma-Aldrich 49159
Phosphate Buffer Saline (PBS) Sigma-Aldrich P4417
Protection Wax Dentaurum 124-305-00
HEPES Sigma-Aldrich H3375
dimethylformamide Sigma-Aldrich D4551
95% Ethanol Sigma-Aldrich 493511
Glass capillary WPI 1B100F-3
23 G NanoFil needle WPI NF33BV-2
Very fine forsceps Dumont 0208-55-PO
Electrode puller SRI 2001
FemtoJet Microinjector Eppendorf 5247 000.01
Eicosane Sigma-Aldrich 219274
manual micromanipulator Brinkmann Instrumentenbau MM-33
electronic micromanipulator Luigs & Neumann Feinmechanik + Elektortechnik Junior unit XYZ
stereomicroscope Leica M80
soldering iron Weller WESD51
Dextran, Alexa Fluor 546, 10000 MW ThermoFisher Scientific D-22911
Dextran, Alexa Fluor 568, 10000 MW ThermoFisher Scientific D-22912
small Petri dish Sigma-Aldrich P5481
mineral oil Sigma-Aldrich M5904
50 mL Centrifuge tube ThermoFisher Scientific 339652
forceps Australian Entomological Supplies
Blade holder and breaker Australian Entomological Supplies E130
Feather double edged razor blade ThermoFisher Scientific 50-949-135
Nichrome wire Any supplier will do
Electrical wires Any supplier will do
Model paint Tamiya USA Depends on colour
Repeating dispenser Hamilton company PB-600-1
Glass syringe WPI NANOFIL
flourescence viewing system Nightsea SFR-GR
graticule ProSciTech S8014-24
microcapillary with holder Drummond 1-000-0010
Liquid silicone Any supplier will do
Thermocouple Digitech QM-1324
Micropipette Eppendorf

References

  1. Frisch, K. .. . v. o. n. . B. e. e. s. . Their Vision, Chemical Senses, and Language. , (1971).
  2. Giurfa, M. The amazing mini-brain: lessons from a honey bee. Bee World. 84 (1), 5-18 (2003).
  3. Giurfa, M. Behavioral and neural analysis of associative learning in the honeybee: a taste from the magic well. J. Comp. Physiol. 193 (8), 801-824 (2007).
  4. Perry, C. J., Barron, A. B. Honey bees selectively avoid difficult choices. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 110 (47), 19155-19159 (2013).
  5. Giurfa, M., Sandoz, J. -. C. Invertebrate learning and memory: Fifty years of olfactory conditioning of the proboscis extension response in honeybees. Learn. Mem. 19 (2), 54-66 (2012).
  6. Srinivasan, M. V. Honey bees as a model for vision, perception, and cognition. Annu. Rev. Entomol. 55, 267-284 (2010).
  7. Søvik, E., Cornish, J. L., Barron, A. B. Cocaine tolerance in honey bees. PLoS One. 8 (5), e64920 (2013).
  8. Søvik, E., Barron, A. B. Invertebrate models in addiction research. Brain. Behav. Evol. 82 (3), 153-165 (2013).
  9. Søvik, E. . Reward processing and responses to drugs of abuse in the honey bee, Apis mellifera. , (2013).
  10. Søvik, E., Even, N., Radford, C. W., Barron, A. B. Cocaine affects foraging behaviour and biogenic amine modulated behavioural reflexes in honey bees. Peer J. 2, e662 (2014).
  11. Abramson, C. I., Stone, S. M., et al. The development of an ethanol model using social insects I: behavior studies of the honey bee (Apis mellifera L.). Alcohol. Clin. Exp. Res. 24, 1153-1166 (2000).
  12. Sauer, S., Kinkelin, M., Herrmann, E., Kaiser, W. The dynamics of sleep-like behaviour in honey bees. J. Comp. Physiol. A Neuroethol. Sensory, Neural, Behav. Physiol. 189 (8), 599-607 (2003).
  13. Münch, D., Kreibich, C. D., Amdam, G. V. Aging and its modulation in a long-lived worker caste of the honey bee. J. Exp. Biol. 216 (Pt 9), 1638-1649 (2013).
  14. Cheeseman, J. F., Winnebeck, E. C., et al. General anesthesia alters time perception by phase shifting the circadian clock. Proc. Natl. Acad. Sci. , (2012).
  15. Schulte, C., Theilenberg, E., Müller-Borg, M., Gempe, T., Beye, M. Highly efficient integration and expression of piggyBac-derived cassettes in the honeybee (Apis mellifera). Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 111 (24), 9003-9008 (2014).
  16. Felsenberg, J., Gehring, K. B., Antemann, V., Eisenhardt, D. Behavioural pharmacology in classical conditioning of the proboscis extension response in honeybees (Apis mellifera). J. Vis. Exp. (47), e2282 (2011).
  17. Burger, H., Ayasse, M., Dötterl, S., Kreissl, S., Galizia, C. G. Perception of floral volatiles involved in host-plant finding behaviour: Comparison of a bee specialist and generalist. J. Comp. Physiol. A Neuroethol. Sensory, Neural, Behav. Physiol. 199 (9), 751-761 (2013).
  18. Pan, K. C., Goodman, L. J. Ocellar projections within the central nervous system of the worker honey bee, Apis mellifera. Cell Tissue Res. 176 (4), 505-527 (1977).
  19. Ito, K., Shinomiya, K., et al. A systematic nomenclature for the insect brain. Neuron. 81, 755-765 (2014).
  20. Bitterman, M. E., Menzel, R., Fietz, A., Schäfer, S. Classical conditioning of proboscis extension in honeybees (Apis mellifera). J. Comp. Psychol. 97 (2), 107-119 (1983).
  21. Barron, A. B., Robinson, G. E. Selective modulation of task performance by octopamine in honey bee (Apis mellifera) division of labour. J. Comp. Physiol. A Neuroethol. Sens. Neural. Behav. Physiol. 191 (7), 659-668 (2005).
  22. Schulz, D. J., Sullivan, J. P., Robinson, G. E. Juvenile Hormone and Octopamine in the Regulation of Division of Labor in Honey Bee Colonies. Horm. Behav. 42 (2), 222-231 (2002).
  23. Schulz, D. J., Elekonich, M. M., Robinson, G. E. Biogenic amines in the antennal lobes and the initiation and maintenance of foraging behavior in honey bees. J. Neurobiol. 54 (2), 406-416 (2003).
  24. Barron, A. B., Vander Meer, R. K., Maleszka, J., Robinson, G. E., Maleszka, R. Comparing injection, feeding and topical application methods for treatment of honeybees with octopamine. J. Insect Physiol. 53 (2), 187-194 (2007).
  25. McClung, C., Hirsh, J. Stereotypic behavioral responses to free-base cocaine and the development of behavioral sensitization in Drosophila. Curr. Biol. 8 (2), 109-112 (1998).
  26. Martin, B. R., Lue, L. P., Boni, J. P. Pyrolysis and volatilization of cocaine. J. Anal. Toxicol. 13 (3), 158-162 (1989).
  27. Lefer, D., Perisse, E., Hourcade, B., Sandoz, J. -. C., Devaud, J. -. M. Two waves of transcription are required for long-term memory in the honeybee. Learn. Mem. 20 (1), 29-33 (2012).
  28. Urlacher, E., Soustelle, L., et al. Honey Bee Allatostatins Target Galanin/Somatostatin-Like Receptors and Modulate Learning: A Conserved Function?. PLoS One. 11 (1), e0146248 (2016).
  29. Stollhoff, N., Menzel, R., Eisenhardt, D. Spontaneous recovery from extinction depends on the reconsolidation of the acquisition memory in an appetitive learning paradigm in the honeybee (Apis mellifera). J. Neurosci. 25 (18), 4485-4492 (2005).
  30. Barron, A. B., Maleszka, R., Helliwell, P. G., Robinson, G. E. Effects of cocaine on honey bee dance behaviour. J. Exp. Biol. 212 (2), 163-168 (2009).
  31. Devaud, J. -. M., Papouin, T., Carcaud, J., Sandoz, J. -. C., Grünewald, B., Giurfa, M. Neural substrate for higher-order learning in an insect: Mushroom bodies are necessary for configural discriminations. Proc. Natl. Acad. Sci. , 1-9 (2015).
  32. Vergoz, V., Roussel, E., Sandoz, J. -. C., Giurfa, M. Aversive learning in honeybees revealed by the olfactory conditioning of the sting extension reflex. PLoS One. 2 (3), e288 (2007).
  33. Henry, M., Béguin, M., et al. A common pesticide decreases foraging success and survival in honey bees. Science. 336 (6079), 348-350 (2012).
  34. Søvik, E., Perry, C. J., LaMora, A., Barron, A. B., Ben-Shahar, Y. Negative impact of manganese on honeybee foraging. Biol. Lett. 11 (3), 20140989 (2015).
  35. Farooqui, T., Vaessin, H., Smith, B. H. Octopamine receptors in the honeybee (Apis mellifera) brain and their disruption by RNA-mediated interference. J. Insect Physiol. 50 (8), 701-713 (2004).
  36. Guo, X., Su, S., et al. Recipe for a Busy Bee: MicroRNAs in Honey Bee Caste Determination. PLoS One. 8 (12), e81661 (2013).
  37. Cristino, A. S., Barchuk, A. R., et al. Neuroligin-associated microRNA-932 targets actin and regulates memory in the honeybee. Nat. Commun. 5, 5529 (2014).
  38. Vargaftig, B. B., Coignet, J. L., de Vos, C. J., Grijsen, H., Bonta, I. L. Mianserin hydrochloride: Peripheral and central effects in relation to antagonism against 5-hydroxytryptamine and tryptamine. Eur. J. Pharmacol. 16 (3), 336-346 (1971).
  39. Beggs, K. T., Tyndall, J. D. A., Mercer, A. R. Honey bee dopamine and octopamine receptors linked to intracellular calcium signaling have a close phylogenetic and pharmacological relationship. PLoS One. 6 (11), (2011).
  40. Matsumoto, Y., Menzel, R., Sandoz, J. -. C., Giurfa, M. Revisiting olfactory classical conditioning of the proboscis extension response in honey bees: a step toward standardized procedures. J. Neurosci. Methods. 211 (1), 159-167 (2012).

Play Video

Cite This Article
Søvik, E., Plath, J. A., Devaud, J., Barron, A. B. Neuropharmacological Manipulation of Restrained and Free-flying Honey Bees, Apis mellifera. J. Vis. Exp. (117), e54695, doi:10.3791/54695 (2016).

View Video