Summary

현미경 뼈 전이의 효율적이고 선택적 모델링을위한 내부 장골 동맥 주입

Published: September 26, 2016
doi:

Summary

This manuscript provides the detailed procedure of intra-iliac artery (IIA) injection, a technique to deliver cancer cells specifically to hind limb tissues including bones to establish experimental bone metastases. Although initially established with breast tumor models, this protocol can be easily extended to other cancer types.

Abstract

Intra-iliac artery (IIA) injection is an efficient approach to introduce metastatic lesions of various cancer cells in animals. Compared to the widely used intra-cardiac and intra-tibial injections, IIA injection brings several advantages. First, it can deliver a large quantity of cancer cells specifically to hind limb bones, thereby providing spatiotemporally synchronized early-stage colonization events and allowing robust quantification and swift detection of disseminated tumor cells. Second, it injects cancer cells into the circulation without damaging the local tissues, thereby avoiding inflammatory and wound-healing processes that confound the bone colonization process. Third, IIA injection causes very little metastatic growth in non-bone organs, thereby preventing animals from succumbing to other vital metastases, and allowing continuous monitoring of indolent bone lesions. These advantages are especially useful for the inspection of progression from single cancer cells to multi-cell micrometastases, which has largely been elusive in the past. When combined with cutting-edge approaches of biological imaging and bone histology, IIA injection can be applied to various research purposes related to bone metastases.

Introduction

전이는 고형 종양에 의한 사망의 90 %를 차지한다. 뼈는 다양한 종류의 암, 특히 유방암과 전립선 암의 전이에 의해 영향을 가장 많이 기관이다. 병원에서 진단하면, 뼈 전이는 일반적으로 이미 자주 신경 학적 증상을 동반 뼈에 골 용해성 또는 골아 중 하나를 변경, 첨단 단계를 입력했습니다.

이전의 연구는 주로 그러나 우리는 현재 골 용해성 프로세스의 개시 전에 뼈의 미세 전이의 이해를 제한, 명백한 골 용해성 골 전이 1-3에 집중했다. 이는 적절한 실험 모델 및 방법 부족 적어도 부분적이다. 유방암 유전자 변형 마우스 모델들은 폐 전이 있지만, 훨씬 덜 효율적 뼈 4. 마찬가지로, 동소 이식 된 종양은 거의 어떤 뼈 열대 4T1 유방 carcinom으로, 자발적인 뼈 전이를 개발하지서브 클론 및 MSP는 예외 5-7로 PyMT 형질 전환 마우스 모델을 과발현. 인트라 경골 뼈 드릴 8-10에 암세포를 제공 할뿐만 아니라 지방 조직의 손상과 염증을 초래한다. 현재 유방암 세포주 내 심장 주입 뼈 정착 11-13 조사 주요 접근하고있다. 암세포 좌심실에 도입 된 후에 그러나 제한된 비율은 최종적 어려운 정량 방식으로 미세 전이를 추적 할 수있게 뼈 골수에 도달한다.

본 연구에서 우리는 선택적하여 지방 조직에 손상을주지 않고 뼈 골수 암 세포 농축, 뒷다리 조직에 암세포를 제공하도록하는 기술, 즉, 인트라 – 장골 동맥 (IIA) 주입 (14)을 설치한다. 때문에 뼈 특이성이 방법은 결국은 An 정착하기 전에 무통 암세포에 충분한 시간을 허용imals 다른 중요한 장기에 차 종양이나 전이에 굴복. 이러한 생물 발광 이미징, 면역 형광 염색 및 골 조직 형태와 같은 다른 기술의 다양한 결합하면 IIA 주입 특히 다중 셀에 하나의 암 세포의 진행을 추적하기 위해, 뼈 전이에 관한 연구 목적의 넓은 범위에 대한 잠재적으로 유용한 미세 전이. 특히, IIA 분사 암 세포 및 골 미세 셀 주변의 여러 유형의 상호 작용을 시각적으로 우리 수 있는지 보여 주었다.

Protocol

모든 동물의 작업은 의학의 베일러 대학의 동물 관리 지침에 따라 이루어졌다. 1. 셀 준비 주의 : 다른 암 세포주는 IIA 주입은 연구 목적에 따라 사용할 수있다. 우리는 유방암 세포주를 사용한 MCF7, 4T1, 4T07, MDA-MB-361, MDA-MB-231, MDA-MB-436 및 연구에서 전립선 암 세포주 C4-2. 우리는 일반적으로 우리의 연구를 위해 GFP- 및 반딧불이 루시퍼 라제 표지 암 세포를 모…

Representative Results

그림 1은 해부학 적 위치와 총장 골 동맥 (적색)과 정맥 (파란색)의 관계를 보여줍니다. 그림 2는 해부 현미경 아래 장골 혈관과 신경의 상대적 위치를 보여줍니다. 도 2a에 도시 된 바와 같이, 혈관 신경 복막 벽 아래 오른쪽이고 피부 절개가 이루어지고, 복막 멀리 밀려 후에 밝혀 질 수있?…

Discussion

만 장골 동맥 암세포 주입 대상이지만, 우리는 주변 조직 모두에서 장골 동맥과 정맥을 분리하는 것을 권장하고 번들로 이들을 함께 리프트. 정맥 및 동맥 광범위하게 서로 접촉하기 때문이고, 정맥 혈관 벽이 얇고 파괴하기 쉽다. 암 세포에서만 동맥에 주입되지만 따라서 성공적인 주사의 경우, 시간과 함께 두 개의 용기를 유지하는 노력을 절약. 도 2에 도시 된 바와 같이 4-0 실크 봉…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Research in Zhang lab was supported by X. H.-F. Z.’s NCI CA151293, CA183878, Breast Cancer Research Foundation, U.S. Department of Defense DAMD W81XWH-13-1-0195, a Pilot Award of CA149196-04, McNair Medical Institute and by H.W.’s U.S. Department of Defense DAMD W81XWH-13-1-0296.

Materials

Materials
DMEM HyClone SH30022.01
FBS Gibco 16000
Pen/Strep Amphatericin B Lonza Biowhittaker 17-745E
PBS Lonza Biowhittaker 17-516F
Trypsin/EDTA solution HyClone SH30042.01
45uM cell strainer VWR International Laboratory 195-2545
MediGel CPF with carprofen  Controlled item from veterinary care in BCM For pain management
Buprenorphine  Controlled item from veterinary care in BCM For pain management
Estradiol pellet Innovative Research of America SE-121
Ketamine and xylazine Controlled item from veterinary care in BCM
Vet ointment Controlled item from veterinary care in BCM Avoid eye dryness
Shaver Oster 78005-050 For furred mice
Isopropyl ethanol ACROS 67-63-0
Betadine surgical scrub Controlled item from veterinary care in BCM
#10 scalpel blades Ted Pella, Inc 549-3CS-10 Multiple
No. 3 handle Ted Pella, Inc 541-31 Need to be autoclaved
Sterile surgical drape Sai Infusion Technology PSS-SD1
Straight forceps  Roboz Surgical Instrument RS-5132 Need to be autoclaved
Straight fine forceps Fine Science Tools 11253-20 Need to be autoclaved
Edged fine forceps Fine Science Tools 11253-25 Need to be autoclaved
4-0 Vicryl silk suture Johnson & Johnson Health Care J214H
31G insuline syringes BD 328418 Multiple
Q-tips cotton swabs (Sterile) VWR International Laboratory 89031-272
Skin glue Henry Schein Animal Health 31477 For surgery site skin closure
Ear Tag Applicator Fine Science Tools 24220-00
Ear tags Fine Science Tools 24220-50
D-luciferin Gold Biotechnology LUCK Avoid light and put on ice
28G insulin syringes BD 329410 For intra-orbital injection
Paraformadehyde Alfa Aesar 30525-89-4 For tissue fixation
EDTA OmniPur 4050 For bone tissue decalficication
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
Dissection microscope Leica Leica S6E stereo
IVIS Lumina II imaging system Advanced Molecular Vision
Name Company Catalog Number Comments
Antibodies
Anti-GFP antibodies (JL-8) Clontech 632381
Anti-ALP antibodies Abcam ab108337
Anti-Osterix antibodies Abcam ab22552

References

  1. Kang, Y., et al. A multigenic program mediating breast cancer metastasis to bone. Cancer cell. 3 (6), 537-549 (2003).
  2. Lu, X., et al. VCAM-1 promotes osteolytic expansion of indolent bone micrometastasis of breast cancer by engaging alpha4beta1-positive osteoclast progenitors. Cancer cell. 20 (6), 701-714 (2011).
  3. Ell, B., Kang, Y. SnapShot: Bone Metastasis. Cell. 151 (3), 690-690 (2012).
  4. Kretschmann, K. L., Welm, A. L. Mouse models of breast cancer metastasis to bone. Cancer Metastasis Rev. 31 (3-4), 579-583 (2012).
  5. Lelekakis, M., et al. A novel orthotopic model of breast cancer metastasis to bone. Clin Exp Metastasis. 17 (2), 163-170 (1999).
  6. Rose, A. A., et al. Osteoactivin promotes breast cancer metastasis to bone. Mol Cancer Res. 5 (10), 1001-1014 (2007).
  7. Welm, A. L., et al. The macrophage-stimulating protein pathway promotes metastasis in a mouse model for breast cancer and predicts poor prognosis in humans. Proc Natl Acad Sci U S A. 104 (18), 7570-7575 (2007).
  8. Li, X., et al. Loss of TGF-beta Responsiveness in Prostate Stromal Cells Alters Chemokine Levels and Facilitates the Development of Mixed Osteoblastic/Osteolytic Bone Lessions. Mol. Cancer. Res. 10 (4), 494-503 (2012).
  9. Gregory, L. S., Choi, W., Burke, L., Clements, J. A. Breast Cancer Cells Induce Osteolytic Bone Lesions In vivo through a Reduction in Osteoblast Activity in Mice. PLoS ON. 8 (9), e68103 (2013).
  10. Waning, D. L., et al. Excess TGF-β mediates muscle weakness associated with bone metastases in mice. Nat Med. 21 (11), 1262-1271 (2015).
  11. Simmons, J. K., et al. Animal Models of Bone Metastasis. Vet Pathol. 52 (5), 827-841 (2015).
  12. Werbeck, J. L., et al. Tumor microenvironment regulates metastasis and metastasis genes of mouse MMTV-PymT mammary cancer cells in vivo. Vet Pathol. 51 (4), 868-881 (2014).
  13. Xiang, J., et al. CXCR4 Protein Epitope Mimetic Antagonist, POL5551, Disrupts Metastasis and Enhances Chemotherapy Effect in Triple Negative Breast Cancer. Mol Cancer Ther. 14 (11), 2473-2485 (2015).
  14. Wang, H., et al. The osteogenic niche promotes early-stage bone colonization of disseminated breast cancer cells. Cancer Cell. 27 (2), 193-210 (2015).
  15. Hoffmann, J., et al. Characterization of new estrogen receptor destabilizing compounds: effects on estrogen-sensitive and tamoxifen-resistant breast cancer. J Natl Cancer Inst. 96 (3), 210-218 (2004).
  16. Tannehill-Gregg, S. H., Levine, A. L., Nadella, M. V., Iguchi, H., Rosol, T. J. The effect of zoledronic acid and osteoprotegerin on growth of human lung cancer in the tibias of nude mice. Clin Exp Metastasis. 23 (1), 19-31 (2006).
  17. Slyfield, C. R., Tkachenko, E. V., Wilson, D. L., Hernandez, C. J. Three-Dimensional Dynamic Bone Histomorphometry. J Bone Miner Res. 27 (2), 486-495 (2012).
  18. Koba, W., Jelicks, L. A., Fine, E. J. MicroPET/SPECT/CT imaging of small animal models of disease. Am J Pathol. 182 (2), 319-324 (2013).
  19. Simmons, J. K., et al. Canine prostate cancer cell line (Probasco) produces osteoblastic metastases in vivo. Prostate. 74 (13), 1251-1265 (2014).
  20. Amend, S. R., et al. Thrombospondin-1 regulates bone homeostasis through effects on bone matrix integrity and nitric oxide signaling in osteoclasts. J Bone Miner Res. 30 (1), 106-115 (2015).

Play Video

Cite This Article
Yu, C., Wang, H., Muscarella, A., Goldstein, A., Zeng, H., Bae, Y., Lee, B. H. I., Zhang, X. H. Intra-iliac Artery Injection for Efficient and Selective Modeling of Microscopic Bone Metastasis. J. Vis. Exp. (115), e53982, doi:10.3791/53982 (2016).

View Video