Se describe cómo visualizar macrófagos C. neoformans (Cn) interacciones en tiempo real, con especial énfasis en el proceso de exocitosis no lítico usando microscopía de luz digital. Usando esta técnica de forma individual los macrófagos infectados se puede estudiar para determinar varios aspectos de este fenómeno.
Muchos aspectos de la infección de macrófagos por Cryptococcus neoformans han sido ampliamente estudiados y bien definido. Sin embargo, una interacción particular que no se entiende claramente es la exocitosis no lítico. En este proceso, las células de levadura se liberan en el espacio extracelular mediante un mecanismo mal entendido que deja tanto el macrófago y Cn viable. Aquí se describe cómo seguir un gran número de macrófagos infectados individualmente para un período de infección 24 h por microscopía de tiempo transcurrido. Macrófagos infectados se encuentran en una cámara de calentamiento con una atmósfera de CO 2 unido a un microscopio que ofrece las mismas condiciones que una incubadora de cultivo celular. Microscopía digital de vivo puede proporcionar información acerca de las interacciones dinámicas entre un huésped y patógeno que no está disponible a partir de imágenes estáticas. Ser capaz de visualizar cada célula infectada puede proporcionar pistas sobre cómo los macrófagos manejan las infecciones por hongos, y viceversa. Esta técnica isa poderosa herramienta en el estudio de las dinámicas que están detrás de un fenómeno complejo.
Las fases de una infección por hongos entre las células criptocócica y macrófagos están bien documentados 1-3. Después de células de levadura son ingeridos por macrófagos, una variedad de interacciones pueden ocurrir: el macrófago puede lisar liberando su carga fúngica en el espacio extracelular, o podría controlar la infección por el mantenimiento de las células de levadura dentro de los confines de su membrana celular 4. Sin embargo, hace varios años un nuevo resultado fue descrita independientemente por dos grupos: exocitosis no lítico, un proceso en el que un macrófago borrado algunas o todas de las células criptocócica en el ambiente circundante o una célula vecina y ambos huésped y patógeno se mantienen viables 5 -8. Varios estudios han tratado de comprender los mecanismos moleculares detrás de esta interacción, pero todavía no tienen una comprensión completa de lo que impulsa a este fenómeno.
La capacidad para capturar imágenes en tiempo real y luego analizar posteriormente múltiples Infected macrófagos permite responder a muchas preguntas sobre las propiedades físicas que rodean la exocitosis no lítico en cuanto a tiempo, la capacidad espacial, el cambio en la morfología e incluso el estrés de los macrófagos durante una infección por hongos. Al permitir que las células que se encuentran en un entorno que sea comparable a la de una incubadora, podemos vislumbrar la naturaleza dinámica de las interacciones de células de tipo macrófago por hongos. Los investigadores han utilizado esta técnica para estudiar diversos componentes de este proceso. El papel del fagosoma en este proceso se hizo evidente mediante la tinción de actina fluorescente y agentes de bloqueo 9, mientras que otro grupo utilizó este método para mostrar que la exocitosis no lítico fue bloqueada en las células que han tenido la nucleación WASH dominios de la proteína suprime 10. El efecto de la señalización de citoquinas también ha sido comprobada mediante microscopía en tiempo real 11. Este proceso no se limita a C. neoformans como también se ha observado con Candida albicans, another patógeno fúngico que tiene la capacidad de infectar a los macrófagos 12. Estos hallazgos son ejemplos de cómo este método puede proporcionar una gran cantidad de información a un área que sabemos tan poco.
Aquí hemos descrito un método por el cual las interacciones fúngicas macrófagos pueden ser registradas y analizadas en tiempo real durante un período de 24 h. Nuestro laboratorio ha utilizado este protocolo para estudiar muchos de los aspectos temporales de la exocitosis no lítico y seguirá utilizando microscopía en tiempo real para determinar los componentes morfológicos que rodean este proceso.
Para esta técnica para producir resultados ideales, especial atención se debe dar a c…
The authors have nothing to disclose.
Esta investigación fue financiada en parte por los premios NIH 5T32AI07506, 5R01AI033774, 5R37AI033142, 5R01AI052733.
Sabouraud Dextrose Agar | BD | DF0109-17-1 | |
Sabouraud Dextrose Broth | BD | DF0382-17-9 | |
Dubelcco's Modified Eagle's Medium(DMEM) | Corning Cellgro | 10-013-CV | |
Fetal Calf Serum ( FCS) | Atlanta Biologicals | S12450 | |
NCTC 109 | Invitrogen | 21340-039 | |
Penicillin-Streptomycin | Gibco | 15140-122 | |
HEPES Buffer | Corning Cellgro | 25-060-Cl | |
Glutamax | Invitrogen | 35050-061 | |
Non-essential Amino Acids | Corning Cellgro | 25-025-Cl | |
2-Mercaptoethanol | Invitrogen | 21985-023 | Toxic |
3003 Tissue Culture Petri Dishes | Fisher Scientific | 08772E | |
CellStripper | Corning Cellgro | 25-056-Cl | |
Mat-tek Glass Bottom Culture Dishes | MatTek | P35GC-1.5-14-C | |
LPS | Sigma | L3137 | |
Mouse IFN-g | Roche | NC 9222016 | |
mAb 18B7 | Non-commerical antibody produced in our lab | ||
Axiovert 200M Microscope with Incubating Chamber | Zeiss |