מטרת הפרוטוקול היא להשתמש בשיטות אופטימליות לגירוי מסלולי חישת DNA cytoplasmic בתאי in vivo. זו מושגת על ידי שיפור הדור של DNA הארוך, פעמיים תקועים בקשירה בוטה סוף. תאים או עכברים אז transfected באמצעות מגיב transfection שומנים בדם.
כדי לעורר תגובה חיסונית מולדת ביעילות, DNA חייב להיות באורך ובטהרה מספיק. אנו מציגים שיטה בי גדילי הדנ"א כפול (dsDNA) שבו יש את המאפיינים הדרושים כדי לעורר את DNA cytoplasmic יכולים להיות שנוצר מסלולי חישה במחיר זול ובקלות. על ידי concatemerization של oligonucleotides הקצר, סינטטי (אשר חסרים מוטיבים CPG), יכול להיות שנוצר dsDNA להיות באורך מספיק כדי להפעיל את מסלול חישת DNA cytosolic. פרוטוקול זה כרוך קשירת קצה קהה של oligonucleotides בנוכחות פוליאתילן גליקול (PEG), המספקת סביבה לקשירה יעילה להתרחש. ניתן להשתמש concatemers dsDNA, הבא לטיהור על ידי מיצוי פנול / כלורופורם, כדי לדמות את התגובה החיסונית המולדת במבחנה על ידי פרוטוקולי transfection סטנדרטיים. גם DNA זה יכול לשמש כדי לעורר חסינות מולדת in vivo על ידי הזרקת intradermal לתוך אפרכסת אוזנו של עכבר, למשל. על ידיתקנון תהליך concatemerization ופרוטוקולי גירוי שלאחר מכן, הפעלה אמינה ושחזור של מערכת החיסון המולדת יכולה להיות מיוצר.
DNA הוא מרכיב חיוני של כל היצורים והתאים, שאאוקריוטים לשמור בתאים ספציפיים. פונקציה אחת של מערכת החיסון המולדת היא לזהות כאשר מידור כזה מתקלקל או כאשר חומר זר מוחדר האורגניזם באמצעות הפרת מחסומים פיזיים, חיצוניים. בגוף האדם יש מספר החלבונים שקיימים כדי לעזור לבזות כמויות קטנות של DNA שעשויה לברוח המידור הנכון; DNAse I, II, III ולשבור DNA בפלזמה, endosome, וcytosol, בהתאמה. עם זאת, זה כבר הראה כי עכברים חסרי DNAse השני למות מאנמיה קשה שנגרמה על ידי ייצור מוגבר של האינטרפרונים 1 מצביעים על כך שמערכת החיסון המולדת מגיבה לDNA במיוחד גרעיני. תגובה זו מתרחשת גם בעכברים שהם לגמרי חסרי יכולת איתות קולט חיוג כמו. מחקרים רבים כעת מוצגים ממריץ שגני אינטרפרון (סטינג) 2 וקינאז מחייב TANK 1 (TBK1) 3 מעורבים בזיהוי של DNA בציטופלסמה ושמסלול איתות זה מפעיל גורם אינטרפרון רגולציה (IRF) -3 4. שעתוק IRF3 תלוי הבא של ציטוקין, chemokine, וגני אינטרפרון הוא אופייני לתגובה חיסונית מולדת או פתוגן או סכנה הקשורים דפוס מולקולרי (PAMP או לח) 5.
הרצון ללמוד מסלולי חישת חומצות גרעין תאיים הוביל לדרישה לפתח שיטות חזקות ושחזור לגירוי תאים על ידי החדרת דנ"א או רנ"א לתוך תאים ללא הפעלת תגובה חיסונית מולדת אחרת. שיטה אחת שבאמצעותו יכול להיות מגורה את העוקץ / TBK1 / מסלול IRF3 היא באמצעות חומרים כימיים transfection שומנים בדם קטיוני כדי לספק חומצות גרעין לתוך הציטופלסמה שבו ניתן להגיע על ידי חיישני DNA כגון DNA-PK, IFI16, וcGAS 6-8.
המאפיינים של DNA שהם הבינו כעת כדי לאפשר effהפעלת icient של תגובת החיסון המולדת cytoplasmic ללא גירוי של מסלולים אחרים שלה אורך, מסה, טוהר, וחוסר CPG מוטיבי 4,7,9. oligonucleotides סינטטי מתאים ביותר לצורך הפקת תגובה חיסונית מולדת מאחר שהם מאפשרים את רצף DNA להיות מותאמים ומוכן כמו לתרכובות כימיות טהורות. רצף חיסוני גירוי 45 זוג בסיס DNA (ISD) זוהה על ידי et al כובע רחב שולי. 4 כרצף מתאים, CPG ללא למטרה זו. רצף dsDNA זה אחרת אקראי ואין לו תכונות ספציפיות מעבר לחוסר המוטיבים CPG. מצאנו כי על ידי concatemerizing oligonucleotide ISD לגדילים ארוכים יותר מגביר באופן משמעותי את גודל הגירוי 7. דור של ISD concatemerized לכן הוא שימושי עבור גירוי תגובה חיסונית מולדת cytoplasmic. כאן אנו מציגים פרוטוקולים להכנה מגיב זה וכיצד ניתן להשתמש בו כדי להפעיל את מסלול חישת DNA במבחנה, כמו גם in vivo.
הערה: כל המחקרים בבעלי החיים מתבצעים תחת פרוטוקולים מוסדיים אושרו והנחיות טיפול בבעלי החיים.
הפרוטוקולים המתוארים כאן משמשים ליצירת dsDNA כדי לעורר את התגובה החיסונית המולדת cytosolic עם תוצאות לשחזור במגוון רחב של סוגי התאים וin vivo. מאז מגיב המצע העיקרי המשמשים הוא oligonucleotide סינטטי, יש גמישות במערכת זו לשימוש ברצפי DNA חלופיים או שינויים כימיים. זה אפשרי, למשל, לה…
The authors have nothing to disclose.
אי לנו תודות.
Forward Primer | Integrated DNA technologies | n/a | TACAGATCTACTAGTGATCTATGACTGATCTGTACATGATCTACA |
Reverse Primer | Integrated DNA technologies | n/a | TGTAGATCATGTACAGATCAGTCATAGATCACTAGTAGATCTGTA |
PEG8000 | Sigma-Aldrich | P-4463 | |
Molecular biology grade water | Sigma-Aldrich | W4502-1L | |
T4 Polynucleotide Kinase | Promega | M4101 | |
T4 DNA Ligase | Promega | M1801 | |
Phenol:Chloroform | Fisher Chemical | BPE1752p-400 | |
Chloroform | Fisher Chemical | C/4960/PB08 | |
Ethanol | Sigma-Aldrich | 32221-2.5L | |
DNA gel loading buffer | New England biolabs | B7021S | |
Agarose | Bioline | BIO-41025 | |
Optimem | Life Technologies | 11058021 | |
TransIT-LT1 | Mirus Bioscience | MIR 2300 | |
Hamilton Syringe | Hamilton | 80901 Model 1705 | |
30G needles | BD bioscience | 304000 | |
SYBR Safe DNA gel stain | Life Technologies | S33102 | |
Rneasy Plus Mini Kit | Qiagen | 74134 | |
Oligo(dT) primer | Thermo Scientific | SO131 | |
dNTP mix | Fermentas | R0192 | |
Super Script III reverse transcriptase | Life Technologies | 56575 | |
First strand cDNA synthesis buffer | Life Technologies | y02321 | |
SybrGreen qPCR Fast master mix | Applied Biosystems | 4385612 | |
cxcl10 murine forward primer | Integrated DNA technologies | n/a | ACTGCATCCATATCGATGAC |
cxcl10 murine reverse primer | Integrated DNA technologies | n/a | TTCATCGTGGCAATGATCTC |
il6 murine forward primer | Integrated DNA technologies | n/a | GTAGCTATGGTACTCCAGAAGAC |
il6 murine forward primer | Integrated DNA technologies | n/a | GTAGCTATGGTACTCCAGAAGAC |