Summary

Profiling Individual células estaminais embrionárias humanas por RT-PCR quantitativo

Published: May 29, 2014
doi:

Summary

Ensaio única expressão gênica de células é necessária para a compreensão da heterogeneidade de células-tronco.

Abstract

A heterogeneidade da população de células-tronco dificulta compreensão detalhada da biologia de células-tronco, tais como a sua propensão para a diferenciação diferentes linhagens. Um ensaio de transcriptoma única célula pode ser uma nova abordagem para dissecar variação individual. Desenvolvemos o método de uma única célula de qRT-PCR, e confirmaram que o método funciona bem em vários perfis de expressão de gene. Em nível de uma única célula, cada célula-tronco embrionárias humanas, classificado por OCT4 :: células positivas EGFP, tem alta expressão no OCT4, mas um nível diferente de expressão NANOG. Nosso ensaio de expressão único gene da célula deve ser útil para interrogar heterogeneidades da população.

Introduction

Populações eucariotos maioria superiores são heterogêneos, assim, com a análise da amostragem populacional, muitas vezes é difícil de interpretar as suas características celulares. As células individuais dentro de uma população pode ser sutilmente diferente, e essas diferenças podem ter consequências importantes para a propriedade ea função de toda a população 1, 2. Especialmente, as células-tronco embrionárias humanas (hESCs) são conhecidos por ser heterogêneo, o que provoca diferentes níveis de pluripotência e diversas potencialidades para especificação das linhagens em delicadamente e distintas formas 3, 4. Por exemplo, os antigénios de superfície de células diferentes podem ser usados ​​para classificar as células estaminais pluripotentes indiferenciadas, 5 e o grupo Austin Smith propostos diferentes níveis de pluripotência em mastócitos embrionários de ratinho, com base na sua morfologia, propensão diferenciação e dependência da via de sinalização 6. Este fenômeno foi levantada a hipótese de embrião humanoAs células estaminais nic 7. Considerando que os estudos gerais foram realizadas entre as diferentes linhas de células estaminais, e não células-tronco único indivíduo, que poderia ser muito interessante para analisar diferentes níveis de pluripotência no nível da célula única, o que potencialmente afeta as suas capacidades de diferenciação em relação a todas as linhagens de células somáticas.

Heterogeneidade celular e molecular pode ser ditada pela transcrição de perfil, que é chamado de 'transcriptoma única célula' e destaca novas abordagens para quantificar os níveis de expressão do gene 8-10. Para a análise dos níveis de expressão de genes em células individuais, foi desenvolvido um protocolo simples, mas robusta de uma única célula RT-PCR quantitativo. Foi confirmada a eficácia e viabilidade do nosso protocolo, comparando cada metade de lisados ​​de células individuais, bem como RNAs totais diluídas em série de hESCs, resultando em variações técnicas mínimas e diferenças. Além disso, foi utilizada uma linha repórter genética para isolar homogênea população de hESCs utilizando sistema de metas de gene. O vector dador de segmentação OCT4 lócus (OCT4-2A-EGFP-PGK-Puro construção) e um par de plasmídeos talen foram usadas 11. O vetor doador e um par de plasmídeos Talen foram introduzidos hESCs (H9, WA09) usando nosso nucleofection e protocolo de seleção clonal e manutenção de hESCs foi realizada com base no nosso protocolo de rotina 12. Nós confirmamos esta linha repórter genética expressar EGFP para a expressão OCT4 em OCT4 :: EGFP hESCs.

Nosso resultado demonstra que hESCs individuais (classificadas por OCT4 :: EGFP células fortemente positivas) manter altos níveis de expressão OCT4, mas diferentes níveis de expressão NANOG. Então, o nosso ensaio de expressão único gene de células deve ser útil para estudar as heterogeneidades da população de células-tronco pluripotentes.

Protocol

1. Preparação de uma placa de 96 poços Misture 1 ml de Single Cell DNase1 a 9 mL Single Cell Lysis Solution. Coloque a solução mista de 10 mL em cada poço da placa de 96 poços de PCR. 2. Detaching hESCs para FACS Purificação Separar OCT4 :: linha de células ES a partir de EGFP o prato de 60 mm e 1 ml de Accutase durante 20 min, a 37 ° C, as quais foram neutralizadas com meio ES humano. Prepare a população de célu…

Representative Results

Amplificação de RNA única célula eficiente e robusta Para minimizar a variação transcricional entre hESCs, usamos OCT4 :: EGFP hESC clone para FACS purificação. Após a separação de células positivas Oct4 :: EGFP em uma placa de 96 poços, cada célula é lisadas em tampão de lise e convertido poli (A) + RNA para cDNA de comprimento completo utilizando o SMA-T15 (GACATGTATCCGGATGTTTTTTTTTTTTTTTT) e iniciador de ancoragem com o SMA-A (ACATGTATCCGGATGTGGG…

Discussion

Profiling gene célula única pode ser uma ferramenta importante para prever a funcionalidade de uma única célula ou uma população inteira. Devido a uma limitação técnica, análise de perfis gene inteiro tenha sido restrita às médias populacionais. As variações nos padrões de expressão dos genes e os níveis de entre as células individuais e as subpopulações foram propostos para fazer com que a interpretação errada. Tais aspectos celulares diferentes podem ser encontrados em hESCs e sua heterogeneidade…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gostaríamos de agradecer aos membros do laboratório Lee pelas valiosas discussões sobre o manuscrito. Trabalho no laboratório Lee foi apoiada por doações de Robertson Investigator Award of New York Stem Cell Foundation e de Maryland Stem Cell Research Fund (Tedco).

Materials

96 wll PCR Plate USA scientific 1402-8900
Ambion Cell Lysis Kit Life Technologies 4458235
SMARTScribe Reverse Transcriptase Clonetech 639536
ExoSAP-IT USB 78200
Platinum Taq DNA polymerase High Fidelity Invitrogen 11304
10mM dNTP Mix, PCR Grade Invitrogen 18427
SYBR Universal 2X Master Mix Kapa biosystem KR0389
Accutase Innovative Cell Tech S-1100-1
FACS buffer 45 ml PBS, 5 ml a-MEM, 100 ul DNase, filter sterilized
35 μm cell strainer cap tubes BD Biosciences 352235

References

  1. Miyanari, Y., Torres-Padilla, M. E. Control of ground-state pluripotency by allelic regulation of Nanog. Nature. 483, 470-473 (2012).
  2. Leitch, H. G., et al. Embryonic germ cells from mice and rats exhibit properties consistent with a generic pluripotent ground state. Development. 137, 2279-2287 (2010).
  3. Ramskold, D., et al. Full-length mRNA-Seq from single-cell levels of RNA and individual circulating tumor cells. Nat Biotechnol. 30, 777-782 (2012).
  4. Stewart, M. H., et al. Clonal isolation of hESCs reveals heterogeneity within the pluripotent stem cell compartment. Nat Methods. 3, 807-815 (2006).
  5. O’Malley, J., et al. High-resolution analysis with novel cell-surface markers identifies routes to iPS cells. Nature. 499, 88-91 (2013).
  6. Nichols, J., Smith, A. Naive and primed pluripotent states. Cell Stem Cell. 4, 487-492 (2009).
  7. Kim, H., et al. miR-371-3 expression predicts neural differentiation propensity in human pluripotent stem cells. Cell Stem Cell. 8, 695-706 (2011).
  8. Mortazavi, A., Williams, B. A., Mccue, K., Schaeffer, L., Wold, B. Mapping and quantifying mammalian transcriptomes by RNA-Seq. Nat Methods. 5, 621-628 (2008).
  9. Pan, Q., Shai, O., Lee, L. J., Frey, J., Blencowe, B. J. Deep surveying of alternative splicing complexity in the human transcriptome by high-throughput sequencing. Nat Genet. 40, 1413-1415 (2008).
  10. Wang, E. T., et al. Alternative isoform regulation in human tissue transcriptomes. Nature. 456, 470-476 (2008).
  11. Hockemeyer, D., et al. Genetic engineering of human pluripotent cells using TALE nucleases. Nat Biotechnol. 29, 731-734 (2011).
  12. Lee, G., Chambers, S. M., Tomishima, M. J., Studer, L. Derivation of neural crest cells from human pluripotent stem cells. Nat Protoc. 5, 688-701 (2010).
  13. Zhu, Y. Y., Machleder, E. M., Chenchik, A., Li, R., Siebert, P. D. Reverse transcriptase template switching: A SMART (TM) approach for full-length cDNA library construction. Biotechniques. 30, 892-897 (2001).
  14. Pan, X. H., et al. Two methods for full-length RNA sequencing for low quantities of cells and single cells. P Natl Acad Sci USA. 110, 594-599 (2013).
  15. Tang, F. C., et al. RNA-Seq analysis to capture the transcriptome landscape of a single cell. Nat Protoc. 5, 516-535 (2010).

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Cite This Article
Lim, H., Choi, I. Y., Lee, G. Profiling Individual Human Embryonic Stem Cells by Quantitative RT-PCR. J. Vis. Exp. (87), e51408, doi:10.3791/51408 (2014).

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