Summary

急性肾损伤和伤后纤维化小鼠缺血再灌注模型

Published: August 09, 2013
doi:

Summary

我们描述模型,中度和重度缺血再灌注引起的肾损伤的小鼠进行单侧肾蒂夹紧对侧肾切除术同期或延期,其次分别。这些车型一贯引起肾功能不全和损伤后纤维化,但损伤程度和生存都依赖于鼠标的背景,年龄和手术设备。

Abstract

缺血再灌注引起的急性肾损伤(IR-AKI)被广泛用于AKI的小鼠作为模型,但结果往往是相当高,经常未经报告的死亡率可能混淆分析变量。双侧肾蒂钳位常用的,诱导IR-AKI的,但有效的钳位压力和/或肾功能的响应之间的肾脏缺血之间的差异经常导致多个变量的结果。此外,被称为短钳次吸引更多变量的肾小管损伤,而小鼠进行双边损伤钳较长时间的发展更一致的肾小管损伤,他们往往在严重肾功能不全,由于伤后的第3天死亡。为了提高伤后生存和获得更加一致和可预测的结果,我们已经开发出两款车型的单方面缺血再灌注损伤对侧肾切除。这两种手术是用背的方法,减少手术应激产生的f罗腹的剖腹手术常用鼠标的IR-AKI的手术。对于中度伤害的BALB / c小鼠进行诱导单侧夹持肾蒂26分钟,也同时接受对侧肾切除术。 50-60%的小鼠使用这种方法,发展适度AKI 24小时后受伤,但90-100%的小鼠生存。要诱发更严重的AKI,BALB / c小鼠进行肾蒂阻断30分钟后对侧肾切除伤后第8天。这允许90-100%的生存伤后肾功能恢复的功能性评估。伤后早期肾小管损伤以及伤后纤维化是高度一致,采用这种模式。

Introduction

各种实验模型急性肾损伤(AKI)已发展到人类生存条件的多样性和复杂性(见参考最近的,全面检讨1)匹配。这些模型中的每一个都有自己的长处和弱点,而每一个模仿人类的​​相应条件具有不同的效率,没有精确地模拟人类同行的病理生理机制。缺血再灌注剂AKI(IR)已经发展成为一个模型,在啮齿动物的急性缺血性肾损伤。虽然肾小管损伤的严重程度,在这个模型中看到很少观察到在患者的肾脏灌注不足,损伤2,尽管有其局限性,这主要是因为在此模型中的可重现的性质,提供了其广泛的用途,预期将继续AKI的共同的基本机制,修复,治疗3到许多重要的见解。 IR手术需要FAMiliarity与小鼠肾脏解剖,这是我们在图1中示出一个简化的形式。肾缺血再灌注(IR)损伤手术可以通过腹(开腹手术)或背(后腹膜)方法。我们用背的方法,因为它创伤小,允许更快的恢复时间,提高生存期(特别是当第一次学习的过程)。可以进行单侧或双侧肾缺血再灌注损伤。然而,有效的夹紧压力(这可能是由于插入肺门周围的脂肪之间的钳口)和/或不同响应肾缺血侧之间的差异导致更可变的结果。虽然这不是一个难以逾越的问题,它可以增加之间的变异实验,这是一个重大的问题,这个模型。可以进行单侧红外与对侧肾切除术。这是我们的方法的选择,因为它减少可变性椎弓根之间的夹紧,并且在同一时间,一个的llows一个评估肾功能,仅单方面IR不受影响。一直在讨论什么是最实用与优化的方法来评估肾功能的影响。血中尿素氮(BUN)提供了一个衡量肾功能是AKI的部分机型,包括缺血再灌注损伤的一个有用的“先看看”的标记。然而,可以BUN水平可能受影响的老鼠(体积)的状态的影响,特别是腹方法IR损伤,延迟恢复时降低若干天手术后的流体经口摄入。血肌酐水合状态的影响较小,但显然是受到肌肉质量。与血清肌酐测量的困难之一已经检测非肌酐色原体小鼠血清中,用苦味酸为基础的技术的问题。作为替代方案,一些中心已经开发了一个基于HPLC的方法来量化鼠标肌酐,不会受到这件神器4。但是,UNL艾克BUN和苦味酸,只需要5-10微升血清肌酐检测,高效液相色谱法检测需要25微升血清每次检测,如果重复进行,将需要约100微升全血每次检测。这可以限制对小鼠的研究。一些中心已经开发出更灵敏的高效液相色谱法和质谱为基础的方法,使分析更小的样本量,5,6。然而,这些技术没有得到广泛使用。另一种酶的级联法(只需要5-10微升血清)已在小鼠和大鼠的血清样本进行评估,并密切平行高效液相色谱法测量血清肌酐苦味酸检测总是高估肌酐值7。虽然这个实验没有被广泛应用于在AKI文学,检测市售,使用简单,我们发现这个模型小鼠IR剂AKI给出可靠的结果。

Protocol

所有手术器械,手术前高压灭菌。请注意,如果一个人在不同的小鼠进行多次手术,冲洗工具使用后,然后消毒用热珠灭菌。这是不够的,在70%乙醇中浸泡。 0.5毫升S / C灭菌生理盐水术前和术后即刻,以弥补体内津液损耗,在手术过程中。 权衡老鼠。 麻醉鼠标使用I​​P甲苯噻嗪/氯胺酮的混合物。它的老鼠通常需要3-5分钟,以达到手术麻醉平面。 剃须足够的边境地区,以保持?…

Representative Results

中度IR剂AKI IR同时对侧肾切除单侧大大降低结果的变异,但与小鼠的生存之本程序所必需的钳时间较短,我们仍然发现,只有50-60%的小鼠开发了预期的肾功能不全24小时伤后( 图3A)。在实际应用中,这造成了难以评估数据,除非该研究涉及的治疗方案,可以发起伤后至少24小时,让时间来评估肾功能和丢弃小鼠不发展为肾功能不全。 <…

Discussion

我们描述了两种型号的IR-AKI的中度和重度肾功能损伤的影响进行研究。这些模型使我们能够诱发一致的和可预见的伤害死亡率低。我们的协议列出了很多的困难和陷阱传统与此模型关联。此外,我们已经表明,根据对肾蒂夹紧长度,模型诱导很大程度上可逆的轻度和中度AKI,或更严重的AKI不完整的恢复和持续性肾脏纤维化。伤后纤维化严重的IR-AKI模型可能会导致老鼠能够生存比将有可能更加严重?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

,德博士Caestecker的实验室支持由NIH 1RO1 HL093057-01 1RC4DK090770的01。哈里斯博士的实验室DK38226,DK51265,DK62794和退伍军人管理局的资金支持。支持小鼠肾脏损伤手术,血清肌酐和纤维化检测也提供了的范德比尔特奥布莱恩肾损伤中心授予1P30 DK079341。

Materials

Drug or solution Company Catalogue number Comments
Ketamine (anesthetic) Webster Veterinary 07-881-9413 (100 mg/ml) Final concentration 30 mg/ml Ketamine with 3 mg/ml Xylazine administered at 3-4 ml/kg (100 mg/kg Ketamine and 10 mg/kg Xylazine)
Xylazine (analgesic) Webster Veterinary 07-808-1939 (100 mg/ml) As above
Antisedan (anti-Xylazine) Webster Veterinary 07-867-7097 (5 mg/ml) Optional: to reverse effects of Xylazine in order to increase the rate of recovery after surgery Use 0.5-0.7 mg/kg
Buprenorphine (analgesic) Bedford Laboratories NDC 55390-100-10 (0.3 mg/ml) Dose 0.05-0.1 μg/g every 8-12 hr. Make up a 1:5 dilution in sterile normal saline preoperatively and give 2.5-5 μl/g of the diluted solution.
Ophthalmic ointment Dechra NDC 17033-211-38  
Betadine swab sticks Purdue Products L.P. NDC 67618-153-01  
Nolvasan Surgical Scrub Pfizer Animal Care 300253  
Table 2. Drugs and solutions for I/R surgery.
Iris Scissors Integra Miltex VWR 21909-404 For skin and muscle dissection
Curved iris forceps FST 11065-07 To hold skin and muscle, to remove peri-nephric fat
Blunt forceps ROBOZ RS-5228 To manipulate kidneys
Vascular clamp (795 g pressure) ROBOZ RS-5459 Good for C57BL/6 and BALB/c mice strains
Schwartz clip applying forceps ROBOZ RS-5450 For RS-5459 clamps
Vascular clamp (75-85 g pressure) FST 18055-02 Optimal for CD1 mice strain, but also can be used for C57BL/6 and BALB/c
Micro-Serrefine Clamp Applicator-14 cm with Lock FST 18056-14 For FST 18055-02 clamps
Gayman T/Pump (water-bath heated platform) Braintree Scientific TP-650 The water heater is set at 38 °C 1 hr prior surgery
15″ W x 24″ Heated platform Braintree Scientific HHP-2 Connect to Gayman heated water pump
Heating pad Braintree Scientific Model 39DP Uses microwave for heating. This is useful for warming during recovery
Absorbable suture (Vicryl 5-0) ETHICON VCP834G For fascia and muscle
Non-absorbable suture: monofilament nylon MONOMID 6/0 660B) CP Medical CP-B660B-03 For skin
Halsey needle holder: Tungsten Carbide/13 cm FST 12501-13 To hold suture needles
Timer FST 06-662-3 To quantify ischemia time
Hot bead sterilizer FST 18000-45 To sterilize instruments between mice if you are performing multiple surgeries (it is not sufficient to soak instruments in ethanol)
Electric razor Braintree Scientific CLP-22965  
Tape Durapore 1538-0  
1 ml Syringe EXELint 26044  
Sterile cotton tipped applicators Kendall 8884541300  
Absorbent BenchPad VWR 56617-014  
Surgical drapes VWR 21902-985 Need to be autoclaved
2” x 2” Gauze Pads Medi-First 60673  
Sterile gloves Cardinal Health 2D7251  
Table 3. Equipment and instruments for I/R surgery.

References

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Cite This Article
Skrypnyk, N. I., Harris, R. C., de Caestecker, M. P. Ischemia-reperfusion Model of Acute Kidney Injury and Post Injury Fibrosis in Mice. J. Vis. Exp. (78), e50495, doi:10.3791/50495 (2013).

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