Summary

عزل الخلايا اللمفاوية من المسالك التناسلية الماوس الغشاء المخاطي

Published: September 03, 2012
doi:

Summary

يوصف وسيلة فعالة لعزل الخلايا الليمفاوية من الجهاز التناسلي الماوس. هذه الطريقة يستفيد من إنزيم الهضم وPercoll الفصل المتدرج للسماح العزلة الفعالة. هذا الأسلوب هو أيضا قابلة للتكيف مع لاستخدامها في الأنواع الأخرى

Abstract

المخاطية الأسطح، بما في ذلك توفير في مساحات الجهاز الهضمي، البولي التناسلي، والجهاز التنفسي بوابات لدخول مسببات الأمراض، مثل الفيروسات والبكتيريا 1. المخاطية هي أيضا مواقع الاستقرائي في البلد المضيف لتوليد مناعة ضد مسببات الأمراض، مثل بقع Peyers في الأمعاء والأنسجة الأنفية المرتبطة اللمفي في الجهاز التنفسي. هذه الميزة الفريدة يجلب حصانة كلاعب حاسم للمضيف نظام الدفاع. وقد تركزت العديد من الدراسات على مواقع المخاطية المعوية وأمراض الجهاز التنفسي. ومع ذلك، كان هناك القليل من المواقع التحقيق المخاطية الإنجابية. المسالك التناسلية الغشاء المخاطي هو موقع العدوى الأولية للأمراض المنقولة جنسيا (STD)، بما في ذلك الالتهابات البكتيرية والفيروسية. الأمراض المنقولة جنسيا هي واحدة من التحديات الصحية الأكثر أهمية التي تواجه العالم اليوم. مراكز السيطرة على الأمراض والوقاية منها يقدر أن هناك 19 مليون حالة جديدة كل عام المعدية في الولايات المتحدة. STتكلف DS في نظام الرعاية الصحية الامريكي 17 مليار دولار سنويا والأفراد أكثر تكلفة حتى في العواقب الصحية المباشرة والحياة طويلة. لمواجهة هذا التحدي، هناك حاجة إلى فهم أكبر للحصانة الإنجابية وعزل الخلايا الليمفاوية هو عنصر أساسي من هذه الدراسات. هنا، نقدم طريقة لعزل الخلايا الليمفاوية من بتكاثر الفئران مساحات الأعضاء التناسلية للإناث للدراسات المناعية التي يمكن تعديلها لالتأقلم مع الأنواع الأخرى. ويستند الأسلوب هو موضح أدناه الماوس على أحد.

Protocol

1. إزالة الجهاز التناسلي الموت ببطء الماوس باستخدام المبادئ التوجيهية المعتمدة. جعل شق خط الوسط منخفضة وسحب الجلد. عزل وإزالة الجهاز التناسلي كله، من قناة البيض إلى فتحة المهبل. <li style=";text-…

Discussion

في هذا البروتوكول، فإنه يظهر كيفية تحضير الخلايا الليمفاوية من مساحات الماوس التناسلية ويتقن بسهولة. نقطة أهم من هذه العملية هو الحفاظ على بقاء الخلية عن طريق الحفاظ على الخلايا على الجليد. العائد من الخلية هذا الأسلوب يعتمد على التقنية، التعامل مع المهارات، ووضع ا?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

نود أن نشكر NIH للحصول على منح التمويل R01-AI026328 (KAK) وR01-AI079004 (KAK).

Materials

Name Company Catalogue number
Collagenase Sigma Life Sciences C2139-1G
Percoll GE Healthcare Bio-Sciences 17-0891-01
RPMI1640 Gibco by Life Technologies 11875

References

  1. M, . The impact of perinatal immune development on mucosal homeostasis and chronic inflammation. Nat. Rev Immunol. 12, 9-23 (2011).
  2. Centers for Disease Control and Prevention. . 2010 Sexually Transmitted Diseases Surveillance. , (2010).
  3. Jain, S., Patrick, A. J., Rosenthal, K. L. Multiple tandem copies of conserved gp41 epitopes incorporated in gag virus-like particles elicit systemic and mucosal antibodies in an optimized heterologous vector delivery regimen. Vaccine. 28, 7070-7080 (2010).
  4. Tang, V. A., Rosenthal, K. L. Intravaginal infection with herpes simplex virus type-2 (HSV-2) generates a functional effector memory T cell population that persists in the murine genital tract. J. Reprod. Immunol. 87, 39-44 (2010).
  5. Gillgrass, A. E., Tang, V. A., Towarnicki, K. M., Rosenthal, K. L., Kaushic, C. Protection against genital herpes infection in mice immunized under different hormonal conditions correlates with induction of vagina-associated lymphoid tissue. J. Virol. 79, 3117-3126 (2005).
  6. Sajic, D., Patrick, A. J., Rosenthal, K. L. Mucosal delivery of CpG oligodeoxynucleotides expands functional dendritic cells and macrophages in the vagina. Immunology. 114, 213-224 (2005).
  7. Jiang, J. Q., Patrick, A., Moss, R. B., Rosenthal, K. L. CD8+ T-cell-mediated cross-clade protection in the genital tract following intranasal immunization with inactivated human immunodeficiency virus antigen plus CpG oligodeoxynucleotides. J. Virol. 79, 393-400 (2005).
  8. Gill, N., Chenoweth, M. J., Verdu, E. F., Ashkar, A. A. NK cells require type I IFN receptor for antiviral responses during genital HSV-2 infection. Cell Immunol. 269, 29-37 (2011).
  9. Thatte, A., DeWitte-Orr, S. J., Lichty, B., Mossman, K. L., Ashkar, A. A. A critical role for IL-15 in TLR-mediated innate antiviral immunity against genital HSV-2 infection. Immunol. Cell Biol. 89, 663-669 (2011).
  10. Kwant-Mitchell, A., Ashkar, A. A., Rosenthal, K. L. Mucosal innate and adaptive immune responses against herpes simplex virus type 2 in a humanized mouse model. J. Virol. 83, 10664-10676 (2009).
  11. Gallichan, W. S., Rosenthal, K. L. Effects of the estrous cycle on local humoral immune responses and protection of intranasally immunized female nice against herpes simplex virus type 2 infection in the genital tract. Virology. , 224-487 (1996).

Play Video

Cite This Article
Jiang, J., Kelly, K. A. Isolation of Lymphocytes from Mouse Genital Tract Mucosa. J. Vis. Exp. (67), e4391, doi:10.3791/4391 (2012).

View Video