Ensayos muerte celular programada de uso común en los sistemas de mamíferos, tales como escalamiento de ADN o los ensayos de TUNEL, a menudo son difíciles de reproducir en las plantas. En combinación con un sistema reportero GUS, se propone una vía rápida, a base de plantas de ensayo transitorio para analizar las propiedades de la muerte potencial de genes específicos.
Hemos desarrollado un novedoso sistema de expresión transitoria de plantas que al mismo tiempo expresa el gen reportero β-glucuronidasa (GUS), con la supuesta reguladores positivos o negativos de la muerte celular. En este sistema, N. benthamiana hojas son co-infiltrado con un casete de expresión 35S impulsado que contiene el gen para ser analizados, y el vector GUS pCambia 2301 utilizando LBA4404 cepa de Agrobacterium como un vehículo. Dado que las células vivas son necesarios para la expresión de GUS que se produzca, la pérdida de la actividad GUS se espera que cuando este gen marcador es co-expresada con reguladores positivos de la muerte celular. Igualmente, el aumento de la actividad GUS se observa cuando los genes anti-apoptóticos se utilizan en comparación con el control de vectores. Como se muestra a continuación, hemos utilizado con éxito este sistema en nuestro laboratorio para analizar los dos jugadores a favor y en contra la muerte. Estos incluyen la planta de anti-apoptótica Bcl-2 asociada athanoGene (BAG) de la familia, así como, los mamíferos conocidos inductores de la muerte celular, tales como BAX. Además, hemos utilizado este sistema para analizar la función de la muerte de truncamientos específicos dentro de las proteínas, lo cual podría proporcionar pistas sobre la posible modificación post-traduccional / activación de estas proteínas. A continuación, presentamos un método rápido y sensible de plantas basado, como un paso inicial en la investigación de la función de la muerte de genes específicos.
The authors have nothing to disclose.
Name of the reagent | Company | Catalogue number | Comments (optional) |
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Rifampicin | VWR | IC19549001 | 25mg/mL stock in DMSO |
4′-hydroxy-3′,5′-dimethoxyacetophenone (Acetosyringone) | VWR | TCD2666 | 0.981 g/mL in DMSO (1M stock) |
2-(4-morpholino)ethanesulfonic acid monohydrate (MES) | VWR | EM-6110 | 1.92 g/L in water for making 1 L of infiltration media |
Bacto-tryptone | Fisher | BP1421-2 | 10g/L in water for making 1 L of LB medium |
Bacto-yeast extract | VWR | EM1.03753.0500 | 5g/L in water for making 1 L of LB medium |
Sodium chloride | VWR | EM-7710 | 10g/L in water for making 1 L of LB medium |
Sodium phosphate monobasic monohydrate | VWR | MK-7868-12 | 2.5g/L in water for making 50mM of buffer NaPi |
Sodium phosphate dibasic heptahydrate | VWR | EMD-SX0715-1 | 5g/L in water for making 50mM of buffer NaPi |
Magnesium sulfate heptahydrate | VWR | EM-MX0070-1 | 2.5 g/L in water for making 1 L of infiltration media |
N-Lauroylsarcosine | VWR | TCL0151-500G | 0.1% v/v in GUS buffer |
5-Bromo-4-chloro-3-indoxyl-beta-D-glucuronide cyclohexylammonium salt (X-gluc) | Gold Biotechnology | G1281C | 1mg/100uL in methanol 100% |
4-Methylumbelliferyl-μ-D-glucuronide hydrate (MUG) | Sigma | M5664 | 2 mM in 100 uL of GUS extraction buffer |
Potassium ferrocyanide trihydrate | VWR | EM-PX1460-1 | 100mM stock for X-gluc substrate solution |
β-Methylumbelliferone (MU) | Sigma-Aldrich | M1381 | For MU standard curve use GUS extraction buffer |
Sodium carbonate | VWR | EM-SX0395-11 | 0.2 M in water for making GUS stop buffer |