Summary

Preparazione del tessuto cerebrale del mouse per la microscopia Immunoelectron

Published: July 20, 2010
doi:

Summary

Abbiamo descritto un protocollo per la perfusione transcardiac di topi, rimozione e sezionamento del cervello, così come colorazione immunoperossidasi, incorporando resina, ultrasottili e sezionamento delle sezioni cervello. Al termine di queste procedure, il materiale immunostained è pronto per l'esame con microscopia elettronica a trasmissione.

Abstract

Microscopia elettronica a trasmissione (TEM) è estremamente utile per la visualizzazione della microglia, scomparti oligodendrocytic, astrociti, neuroni e subcellulare (dendrite, spine dendritiche, assone, assone terminale, pericarion), così come i loro organelli intracellulari e citoscheletro, nel sistema nervoso centrale a ad alta risoluzione spaziale. In combinazione con TEM, pre-embedding immunocitochimica consente la discriminazione di elementi cellulari con pochi tratti distintivi e dei criteri di identificazione (ad esempio microglia perikarya e processi, quando si utilizza un anticorpo contro la microglia specifico marcatore Iba1 (ionizzato molecola adattatrice calcio vincolante 1; presentato qui)), che indicano il contenuto neurotrasmettitore degli elementi cellulari (ad esempio, serotoninergici) e la loro localizzazione ultrastrutturale di proteine ​​solubili o di membrana (ad esempio, 5 HT1A e EphA4 recettori). Qui, descriviamo un protocollo per la perfusione transcardiac di topi con acroleina fissativo, rimozione e sezionamento del cervello, così come immunoperossidasi-diaminobenzidina (DAB) colorazione, l'incorporamento resina, ultrasottili e sezionamento delle sezioni cervello. Al termine di queste procedure, il materiale immunostained è pronto per l'esame con TEM. Quando rigorosamente eseguito, questa tecnica offre un ottimo compromesso tra ottimale conservazione ultrastrutturali e rilevamento immunocitochimica.

Protocol

1. Animal perfusione Il giorno prima di perfusione, preparare: – 2 L di tampone fosfato (PB, 100 mM, pH 7,4) e 1 l di sodio PBS (PBS, 0.9% NaCl nel PB 50 mM, pH 7,4) in acqua bidistillata. Conservare il PBS e 1L di PB a 4 ° C. Questi saranno utilizzati per la perfusione e pre-embedding immunocitochimica. – 1L del 4,0% paraformaldeide (PFA, pH 7,4) la soluzione fissativa, che consentirà la perfusione di 6 topi. A tal fine, riscaldare 1 litro di PB sotto una cappa aspirante. Pesare 40 g di granu…

Discussion

Qui abbiamo descritto un protocollo per la preparazione del tessuto cerebrale di topo microscopia immunoelectron che offre un ottimo compromesso tra ottimale conservazione ultrastrutturali e rilevamento immunocitochimica, quando le procedure sono rigorosamente eseguiti.

In combinazione con TEM, questo metodo consente di distinguere elementi cellulari con pochi tratti distintivi e dei criteri di identificazione. In particolare, il immunoperossidasi-DAB colorazione dei Iba1 consente di identif…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ringraziamo Shao-Ming Lu e Harris A. Gelbard per l'uso di una pompa peristaltica e vibratome, così come Karen L. Bentley e Gayle Schneider al Fondo Electron Microscope Nucleo di Ricerca dell'Università di Rochester Medical Center di assistenza tecnica. Questo lavoro è stato finanziato da finanziamenti del NIH (EY019277), Whitehall Fondazione, Burroughs Wellcome Fondo, e l'Alfred P. Sloan Foundation per AKM. M.-È.T. è finanziato da un Fonds de la Recherche en Santé du Québec (FRSQ) premio di formazione post-dottorato.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Sodium pentobarbital (Nembutal)   Ovation Pharmaceuticals    
Filter paper 315 24 cm   VWR 28331-081  
*Acrolein purum (≥95%)   Sigma-Aldrich (Fluka) 01680  
Sodium borohydride (≥98%)   Sigma-Aldrich (Aldrich) 452173  
*Prilled paraformaldehyde (PFA) (95%)   Sigma-Aldrich 441244  
Normal goat serum   Jackson ImmunoResearch 005-000-121  
Rabbit anti-Iba1 primary antibody   Wako 019-19741 Stored at -20°C, 1:1 in glycerol
Biotin-SP-conjugated AffiniPure F(ab’)2 fragment goat anti-rabbit IgG, Fc fragment specific   Jackson ImmunoResearch 111-066-046 Stored at -20°C, 1:1 in glycerol
Peroxidase-conjugated streptavidin   Jackson ImmunoResearch 016-030-084 Stored at -20°C, 1:1 in glycerol
*Osmium tetroxide 4% solution   Electron Microscopy Sciences 19150 Light sensitive
Propylene oxide (≥99%)   Sigma-Aldrich (Fluka) 82325  
Polypropylene disposable beakers (50 mL)   Fisher 01-291-10  
Aluminium weigh dishes (70 mm)   Fisher NC9261784  
Durcupan epoxy resin   Electron Microscopy Sciences 14040  
Embedding mold   Electron Microscopy Sciences 70907  
DPX mountant for histology   Sigma-Aldrich (BioChemika) 44581  
Gelatin subbed slides   VWR 100241-864  
ACLAR embedding films (7.8 mm)   Electron Microscopy Sciences 50425  
Capsule mold   Electron microscopy Sciences 70150  
High-performance super glue   Corporate Express LOC30379  
Perfect loop for ultra thin sections   Electron Microscopy Sciences 70944  
Superfrost slides   Fisher 22-178-277  
Diamond knife ultra 45° (2.5-3.5 mm)   Diatome    
Gelatin from cold water fish skin (~45%)   Sigma-Aldrich (Sigma) G7765  

*One should always work under a fume hood and wear nitrile gloves when handling acrolein, paraformaldehyde, and osmium and should also dispose of their waste properly.

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Cite This Article
Tremblay, M., Riad, M., Majewska, A. Preparation of Mouse Brain Tissue for Immunoelectron Microscopy. J. Vis. Exp. (41), e2021, doi:10.3791/2021 (2010).

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