Summary

Elektrophysiologischen Methoden für die Aufzeichnung Synaptic Potentials aus dem NMJ von Drosophila-Larven

Published: February 06, 2009
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Summary

Hier beschreiben wir elektrophysiologische Methoden zur Messung der synaptischen Transmission an der neuromuskulären Synapse von Drosophila Larve. Evozierte Freisetzung wird künstlich durch die Stimulierung der Motoneuronen Axone initiiert, und die Übertragung durch die NMJ kann durch die postsynaptische Reaktion im Muskel ausgelöst gemessen werden.

Abstract

In diesem Video, beschreiben wir die elektrophysiologischen Methoden zur Erfassung der synaptischen Übertragung an der neuromuskulären Synapse (NMJ) von Drosophila Larve. Die Larven neuromuskuläre System ist ein Modell Synapse für das Studium der synaptischen Physiologie und Neurotransmission und ist eine wertvolle Recherche-Tool, dass die Genetik definiert und ist zugänglich für experimentelle Manipulation. Die Larven können seziert, um den Körper Wand Muskulatur, zentrales Nervensystem und der peripheren Nerven freizulegen. Die Muskeln von Drosophila und ihre Innervationsmuster sind gut charakterisiert und Muskeln sind leicht zu intrazelluläre Aufnahme zuzugreifen. A7 – Einzelne Muskeln können durch ihre Lage und Orientierung innerhalb der 8 Abdominalsegmente mit je 30 Muskeln in ein Muster, das in Segmente A2 wiederholt angeordnet identifiziert werden. Dissected Drosophila-Larven sind dünn und einzelnen Muskeln und Bündeln von Motoneuronen Axone können visualisiert werden Durchleuchtung<sup> 1</sup>. Transgene Konstrukte können verwendet werden, um Zielzellen für die visuelle Identifizierung oder zur Manipulation von Genprodukten in bestimmten Geweben zu kennzeichnen. In Larven, sind exzitatorische Kreuzung Potentiale (EJPs) in Reaktion auf vesikuläre Freisetzung von Glutamat aus den Motoneuronen an der Synapse erzeugt. In seziert Larven können die EJP in den Muskel mit einer intrazellulären Elektrode aufgezeichnet werden. Aktionspotenziale können künstlich in Motoneuronen, die ausgeschnitten hinter der Bauchganglion, gezeichnet in eine Glaspipette durch sanfte Saugwirkung und angeregt mit einer Elektrode hervorgerufen werden. Diese motorischen Neuronen haben unterschiedliche Schwellenwerte feuern, wenn er stimuliert, und wenn sie gleichzeitig feuern, erzeugen sie eine Antwort in den Muskel. Signale über die NMJ Synapse übertragen können in den Muskeln, die die motorischen Neurone innervieren aufgezeichnet werden. Die EJPs und Miniatur-erregenden Kreuzung Potentiale (mEJPs) werden als Änderungen in Membranpotential gesehen. Elektrophysiologische Reaktionen sind bei Raumtemperatur in modifizierter minimal Hämolymphe-like-Lösung aufgenommen<sup> 2</sup> (HL3), die 5 mM Mg enthält<sup> 2 +</sup> Und 1,5 mM Ca<sup> 2 +</sup>. Änderungen in der Amplitude der evozierten EJPs können auf Unterschiede in der synaptischen Funktion und Struktur. Digitalisierte Aufnahmen sind für EJP Amplitude, Frequenz und Amplitude mEJP und quantal analysiert.

Protocol

Vor Beginn der Vorbereitung: Wandering yhird instar Drosophila-Larven HL3.1 (Modified Hämolymphe-like)-Lösung Sylgard (transparent Silikon-Kautschuk) Dissektion Platten in kleine (35 x 10 mm) Kunststoff-Petrischalen mit Methoden von Brent und McCabe (2008) 3 beschriebenen Verfahren hergestellt. Cut Dissektion Stifte kurz Stimulationselektrode Pipetten Sharp Aufnahme Pipetten HL3 Lösung: 70 NaCl, 5 KCl…

Discussion

Die hier beschriebenen Methoden eine relativ schnelle und breite Weg, um Veränderungen der synaptischen Funktion an der NMJ erkennen. Die Fähigkeit zur elektrophysiologischen Ableitungen mit intakten Tieren in vivo durchzuführen, und führen genetische oder pharmakologische Manipulationen machen Drosophila ein ideales Tiermodell zur Untersuchung der physiologischen und genetischen Aspekte der Neurotransmission.

Da Muskelzellen sehr groß sind, könnten einige es vorziehen, einen weiteren …

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Small Petri dishes (35 x 10 mm)   Becton Dickinson 1008  
SYLGARD 182 Silicone Elastomer Kit   Dow Corning Corporation 3097366-1004  
Dissecting microscope   Carl Zeiss 475002-9902  
Light for microscope   Schott KLI500  
Dissection pins   Fine Science Tools 26002-10  
pClamp 9 software   Axon CNS, Molecular Devices PCLAMP 9 STANDARD  
Dissection scissors: 3mm Vannas Spring Scissors   Fine Science Tools 15000-0  
Dumont SS Forceps   Fine Science Tools 11200-33  
Dumont #5 Forceps   Fine Science Tools 11252-20  
Thin-walled borosilicate glass capillaries, with filament (1.0 mm, 4 in)   World Precision Instruments, Inc. TW100F-4  
Borosilicate glass capillaries, with filament (1.2 mm, 4 in)   World Precision Instruments, Inc. 1B120F-4  
Sutter P-2000 Laser Based Micropipette Puller   Sutter Instruments Model P-2000  
Pipette polisher   Narishiga MF-83  
Axon HS-2A head stage   Axon CNS, Molecular Devices Model HS-2A  
Micromanipulators   Sutter Instruments MP-85  
Axoclamp 2B amplifier   Axon CNS, Molecular Devices AXOCLAMP 2B  
Clampex Software   Axon CNS, Molecular Devices v 8.2.0.235  
Mini analysis software. v 6.0.3   Synaptosoft    
Brownlee Precision Amplifier   Brownlee Model 410  
NaCl   Baker 4058-01  
KCl   Sigma p-9333  
NaHCO3   Sigma s6297-1kg  
Trelahose   Sigma TO167  
Sucrose   Fisher bp220-212  
HEPES   Sigma h-3375  
MgCl-6H2O   Sigma m2670-1kg  
CaCl2   Fisher c79-500  
Master-8 Pulse Generator   A.M.P.I    
Vibration table for electrophysiology set up   Technical manufacturing corporation    
Faraday Cage        

References

  1. Atwood, H. L., Govind, C. K., Wu, C. F. Differential ultrastructure of synaptic terminals on ventral longitudinal abdominal muscles in Drosophila larvae. J. Neurobiol. 24 (8), 1008-1024 (1993).
  2. Feng, Y., Ueda, A., Wu, C. F. A modified minimal hemolymph-like solution, HL3.1, for physiological recordings at the neuromuscular junctions of normal and mutant Drosophila larvae. J Neurogenet. 18 (2), 377-402 (2004).
  3. Estes, P. S., Roos, J., van der Bliek, A., Kelly, R. B., Krishnan, K. S., Ramaswami, M. Traffic of dynamin within individual Drosophila synaptic boutons relative to compartment-specific markers. J Neurosci. 16, 5443-5456 (1996).
  4. Brent, J. R., Werner, K. M., McCabe, B. D. Protocol for dissection of Drosophila larvae. J Vis Exp. , (2008).
  5. Jan, L. Y., Jan, Y. N. Properties of the larval neuromuscular junction in Drosophila melanogaster. J Physiol (Lond). 262, 189-214 (1976).
  6. Katz, L. C., Shatz, C. J. Synaptic activity and the construction of cortical circuits. Science. 274, 1133-1138 (1996).

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Cite This Article
Imlach, W., McCabe, B. D. Electrophysiological Methods for Recording Synaptic Potentials from the NMJ of Drosophila Larvae. J. Vis. Exp. (24), e1109, doi:10.3791/1109 (2009).

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