Summary

Vertraagde intramyocardial levering van stamcellen na Ischemie Reperfusie Letsel in een Murine Model

Published: September 03, 2020
doi:

Summary

Stamcellen worden voortdurend onderzocht als mogelijke behandelingen voor personen met myocardiale schade, maar hun verminderde levensvatbaarheid en retentie in gewond weefsel kan hun werkzaamheid op lange termijn beïnvloeden. In dit manuscript beschrijven we een alternatieve methode voor stamcellevering in een murinemodel van ischemie reperfusieletsel.

Abstract

Er is aanzienlijke belangstelling voor het gebruik van stamcellen (SC’s) voor het herstel van de hartfunctie bij personen met myocardiale verwondingen. Meestal wordt cardiale stamceltherapie bestudeerd door scs gelijktijdig te leveren met de inductie van myocardiaal letsel. Deze aanpak bevat echter twee belangrijke beperkingen: de vroege vijandige pro-inflammatoire ischemische omgeving kan de overleving van getransplanteerde SC’s beïnvloeden, en het vertegenwoordigt niet het subacute infarct scenario waar SC’s waarschijnlijk zullen worden gebruikt. Hier beschrijven we een tweedelige reeks chirurgische ingrepen voor de inductie van ischemie-reperfusieletsel en de levering van mesenchymale stamcellen (MSCs). Deze methode van stamcel toediening kan zorgen voor de langere levensvatbaarheid en retentie rond beschadigd weefsel door het omzeilen van de eerste immuunrespons. Een model van ischemie reperfusie letsel werd geïnduceerd bij muizen vergezeld van de levering van mesenchymale stamcellen (3.0 x 105), stabiel uitdrukken van de verslaggever gen firefly luciferase onder de constitutief uitgedrukte CMV promotor, intramyocardially 7 dagen later. De dieren werden afgebeeld via echografie en bioluminescente beeldvorming voor de bevestiging van letsel en injectie van cellen, respectievelijk. Belangrijk is dat er geen extra complicatiepercentage was bij het uitvoeren van deze twee-procedure benadering voor SC-levering. Deze methode van stamcel toediening, gezamenlijk met het gebruik van state-of-the-art reporter genen, kan zorgen voor de in vivo studie van levensvatbaarheid en retentie van getransplanteerde SCs in een situatie van chronische ischemie vaak klinisch gezien, terwijl ook het omzeilen van de eerste pro-inflammatoire reactie. Samengevat hebben we een protocol opgesteld voor de vertraagde levering van stamcellen in het myocardium, dat kan worden gebruikt als een potentiële nieuwe aanpak bij het bevorderen van regeneratie van het beschadigde weefsel.

Introduction

Hart- en vaatziekten blijven wereldwijd de meest voorkomende oorzaak van morbiditeit en mortaliteit. Cardiale ischemische gebeurtenissen zijn gevonden om schadelijk te zijn voor de algehele functie van het myocardium en de omliggende cellen1. Slechts ̴0,45-1,0% van de cardiomyocyten zal elk jaar regenereren na myocardiale schade optreedt2. Ondanks de groeiende vraag en de inherente focus op het ontwikkelen van behandelingen, therapieën die helpen bij de regeneratie van gewond weefsel zijn moeilijk vast te stellen en nog steeds verdere optimalisatie3,4,5. Stamceltherapieën zijn geïntroduceerd als een alternatief pad om beschadigd weefsel te verjongen na een ischemische gebeurtenis; echter, de vooruitgang van deze therapieën is uitgedaagd door de beperkte overleving en het behoud van de cellen naar een gewond gebied6.

De micro-omgeving van het hart na een ischemische gebeurtenis kan worden gekarakteriseerd als hypoxische, pro-oxidant en pro-inflammatoire, met vijandige omstandigheden voor therapeutische stamcellen om zich aan te passen aan overleving7,8. Als een immuunrespons wordt geactiveerd na letsel, naïeve lymfocyten, macrofagen, neutrofielen en mastcellen proberen om de schade te herstellen door het verwijderen van stervende cellen en moduleren van het proces voor weefsel remodelleren9,10,11. Binnen de eerste 3 dagen na ischemie is ontsteking op zijn hoogtepunt met het vrijkomen van pro-inflammatoire cytokinen met een groot aantal neutrofielen en monocyten in het gebied10,12. Na 7 dagen is een groot deel van de ontsteking verdwenen en begint de overgang naar herstellende cellen, die doorgaan tot de herinrichtingscascade is voltooid, ongeveer 14 dagen bij muizen13. Onze chirurgische methode is een mogelijke alternatieve benadering van de introductie van biologische in het myocardium om de piek aangeboren immuunrespons na ischemie reperfusieletsel te omzeilen. Tegelijkertijd zal het mogelijk maken voor de studie van eventuele behandelingen in een toestand van subacute / chronische ischemie waar er verschillende variabelen te overwegen in vergelijking met acute hartinfarct.

Protocol

De experimenten werden uitgevoerd op vrouwelijke C57BL/6 muizen, leeftijd 10-12 weken en 20-25 g lichaamsgewicht. Alle dierprocedures voldeden aan de normen die zijn vermeld in de Guide for the Care and Use of Laboratory Animals (Institute of Laboratory Animal Resources, National Academy of Sciences, Bethesda, MD, USA) en werden goedgekeurd door het Mayo Clinic College of Medicine Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC). 1. Voorbereiding en intubatie Auto…

Representative Results

Ischemie reperfusie letsel werd geïnduceerd in muizen op dag 0, gevolgd door een postoperatieve echocardiogram en elektrocardiogram op de dag voorafgaand aan de implantatie van stamcellen. Echografie en elektrocardiogram analyse bevestigd infarct en verminderde ventriculaire contractielfunctie (Figuur 1A-D). Verder onderzoek van de gegevens toonde aan dat de uitwerpfractie en fractionele verkorting werden verminderd bij muizen die ischemische schade opliepen, terwijl de ein…

Discussion

Meer dan 85 miljoen mensen wereldwijd worden getroffen door hart- en vaatziekten3. De hoge prevalentie van deze ischemische gebeurtenissen rechtvaardigt verdere ontwikkeling en uitbreiding van alternatieve therapieën voor het bevorderen van de regeneratie van beschadigd weefsel. Traditionele methoden maken gebruik van de ischemie reperfusie procedure in een acute omgeving met latere toediening van therapeutica1. Ontstekingsreacties zijn op zijn hoogtepunt tussen 3-4 dagen …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Geen.

Materials

0.9% NaCl Irrigation, USP Baxter 0338-0048-04
11×12" Press n' Seal surgical drape, autoclavable SAI Infusion Technologies PSS-SD
24G 3/4" IV catheter tube Jelco 4053
28G x 1/2" 1mL allergy syringe BD 305500 Injection of analgesic
30G x 1/2" 3/10cc insulin syringe Ulticare 08222.0933.56 Injection of stem cells
6-0 S-29, 12" Vicryl suture Ethicon J556G Intercostal, superficial muscle and skin layer incision closure
9-0 BV100-4, 5" Ethilon suture Ethicon 2829G Ligation of the LAD artery
Absorbent underpad Thermo Fischer Scientific 14-206-64 For underneath the animal
Alcohol prep pads, 2 ply, medium Coviden 6818
Anti-fog face mask Halyard 49235
Bonn Strabismus scissors, curved, blunt Fine Science Tools 14085-09
Buprenorphine HCL SR LAB 1mg/ml, 5 ml ZooPharm Pharmacy Buprenorphine narcotic analgesic formulated in a polymer that slows absorption extending duration of action (72 hours duration of activity).
Castroviejo needle holders, curved Fine Science Tools 12061-01
Curity sterile gauze sponges Coviden 397310
Delicate suture tying forceps, 45 angle bent Fine Science Tools 11063-07
Electric Razor Wahl Fur removal
Isoflurane 100 ml Cardinal Health PI23238 Anesthetic
Lab coat
Monoject 1 mL hypodermic syringe Coviden 8881501400
Moria iris forceps, curved, serrated (x2) Fine Science Tools 11370-31
Moria speculum retractor Fine Science Tools 17370-53
Mouse endotracheal intubation kit Kent Scientific
Nair depilatory cream Johnson & Johnson Fur removal
Optixcare eye lube plus Aventix Sterile ocular lubricant
Physiosuite ventilator Kent Scientific
PolyE Polyethylene tubing Harvard Apparatus 72-0191 Temporary compression of LAD artery
Povidone-iodine swabs PDI S41125
Scalpel, 10-blade Bard-Parker 371610
Sterile 3" cotton tipped applicators Cardinal Health C15055-003
Sterile 6" tapered cotton tip applicators Puritan 25-826-5WC
Sterile gloves Cardinal Health N8830
Sterilization pouches Medline MPP100525GS
Surgery cap
Surgical Microscope Leica M125
Suture tying forceps, straight (x2) Fine Science Tools 10825-10
Transpore surgical tape 3M 1527-1
Triple antibiotic ointment G&W Laboratories 11-2683ILNC2 Topical application to prevent infection
Vannas-Tübingen Spring Scissors, curved Fine Science Tools 15004-08
Vetflo vaporizer Kent Scientific

References

  1. Franchi, F., et al. The Myocardial Microenvironment Modulates the Biology of Transplanted Mesenchymal Stem Cells. Molecular Imaging Biology. , (2020).
  2. Bergmann, O., et al. Evidence for cardiomyocyte renewal in humans. Science. 324 (5923), 98-102 (2009).
  3. Writing Group, M., et al. Heart Disease and Stroke Statistics-2016 Update: A Report From the American Heart Association. Circulation. 133 (4), 38 (2016).
  4. Gersh, B. J., Simari, R. D., Behfar, A., Terzic, C. M., Terzic, A. Cardiac cell repair therapy: a clinical perspective. Mayo Clinic Protocol. 84 (10), 876-892 (2009).
  5. Terzic, A., Behfar, A. Regenerative heart failure therapy headed for optimization. European Heart Journal. 35 (19), 1231-1234 (2014).
  6. Beegle, J., et al. Hypoxic preconditioning of mesenchymal stromal cells induces metabolic changes, enhances survival, and promotes cell retention in vivo. Stem Cells. 33 (6), 1818-1828 (2015).
  7. Kubli, D. A., Gustafsson, A. B. Mitochondria and mitophagy: the yin and yang of cell death control. Circulation Research. 111 (9), 1208-1221 (2012).
  8. Psaltis, P. J., et al. Noninvasive monitoring of oxidative stress in transplanted mesenchymal stromal cells. JACC Cardiovascular Imaging. 6 (7), 795-802 (2013).
  9. Peet, C., Ivetic, A., Bromage, D. I., Shah, A. M. Cardiac monocytes and macrophages after myocardial infarction. Cardiovasc Research. 16 (6), 1101-1112 (2020).
  10. Swirski, F. K., Nahrendorf, M. Cardioimmunology: the immune system in cardiac homeostasis and disease. Nature Reviews Immunology. 18 (12), 733-744 (2018).
  11. Zhang, Z., et al. Mesenchymal Stem Cells Promote the Resolution of Cardiac Inflammation After Ischemia Reperfusion Via Enhancing Efferocytosis of Neutrophils. Journal of the American Heart Association. 9 (5), 014397 (2020).
  12. Saxena, A., Russo, I., Frangogiannis, N. G. Inflammation as a therapeutic target in myocardial infarction: learning from past failures to meet future challenges. Translational Research. 167 (1), 152-166 (2016).
  13. Prabhu, S. D., Frangogiannis, N. G. The Biological Basis for Cardiac Repair After Myocardial Infarction: From Inflammation to Fibrosis. Circulation Research. 119 (1), 91-112 (2016).
  14. Dominici, M., et al. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement. Cytotherapy. 8 (4), 315-317 (2006).

Play Video

Cite This Article
Olthoff, M., Franchi, F., Peterson, K. M., Paulmurugan, R., Rodriguez-Porcel, M. Delayed Intramyocardial Delivery of Stem Cells after Ischemia Reperfusion Injury in a Murine Model. J. Vis. Exp. (163), e61546, doi:10.3791/61546 (2020).

View Video