Summary

Estudando efeitos de radiação tecidual normais usando Hydrogels de matriz extracelular

Published: July 24, 2019
doi:

Summary

Este protocolo apresenta um método para a decelularização e a formação subseqüente do hidrogel de almofadas gordas mamária murino que seguem a irradiação ex vivo.

Abstract

A radiação é uma terapia para pacientes com câncer de mama triplo negativo. O efeito da radiação na matriz extracelular (ECM) do tecido saudável do peito e de seu papel no retorno local no local preliminar do tumor é desconhecido. Aqui nós apresentamos um método para o decellularization, o lyophilization, e a fabricação de hidrogéis do ECM derivados das almofadas gordas mamária murino. Os resultados são apresentados sobre a efetividade do processo de descelularização, e os parâmetros reológicos foram avaliados. As células de câncer de mama com rótulo de GFP e luciferase encapsuladas nos hidrogéis demonstraram um aumento na proliferação de hidrogéis irradiados. Finalmente, a mancha do conjugado do faloidina foi empregada para visualizar a organização do citoesqueleto de pilhas encapsuladas do tumor. Nosso objetivo é apresentar um método para fabricar hidrogéis para estudo in vitro que imitam o ambiente do tecido mamário in vivo e sua resposta à radiação, a fim de estudar o comportamento das células tumorais.

Introduction

O câncer é caracterizado por excesso de proliferação de células que podem evadir a apoptose e também metastasizar para locais distantes1. O câncer de mama é uma das formas mais comuns entre as fêmeas nos EUA, com uma estimativa de 266.000 novos casos e 40.000 mortes em 20182. Um subtipo particularmente agressivo e difícil de tratar é o cancro da mama triplo negativo (TNBC), que carece de receptor de estrogênio (ER), receptor de progesterona (RP), e fator de crescimento epidérmico humano (HER2). A radioterapia é comumente usada no câncer de mama para eliminar células tumorais residuais após a lumpectomia, mas mais de 13% dos pacientes com TNBC ainda experimentam recidiva no sítio primário do tumor3.

Sabe-se que a radioterapia é efetiva na mitigação da metástase e recorrência, pois a combinação de lumpectomia e radiação resulta na mesma sobrevida em longo prazo que a mastectomia4. Entretanto, tem-se mostrado recentemente que o tratamento de radiação é associado com o retorno local ao local preliminar do tumor em ajustes imunocomprometidos5,6. Além disso, é bem sabido que a radiação modifica a matriz extracelular (ECM) do tecido normal induzindo fibrose7. Conseqüentemente, é importante compreender o papel de mudanças radiação-induzidas do ECM em diating o comportamento da pilha do tumor.

Os tecidos decelularizados têm sido utilizados como modelos in vitro para o estudo da doença8,9. Estes tecidos decelularizados preservam a composição do ECM e recapitulam o complexo ECM in vivo. Este ECM descelularizados do tecido pode mais ser processado e digerido para dar forma a hidrogéis reconstituídos do ECM que podem ser usados para estudar o crescimento da pilha e a função10,11. Por exemplo, os hidrogéis injetáveis derivados do lipoaspirado humano decelularizado e do tecido miocárdico serviram como métodos não invasivos de engenharia tecidual, e um hidrogel derivado do tecido pulmonar porcino foi utilizado como método in vitro de teste fixação e viabilidade de células-tronco mesenquimais12,13,14. O efeito de dano normal da radiação do tecido em Propriedades do ECM, entretanto, não foi investigado.

Os hidrogéis derivados do ECM têm o maior potencial para o estudo in vitro de fenômenos in vivo. Vários outros materiais foram estudados, incluindo colágeno, fibrina e matrigel, mas é difícil recapitular sinteticamente a composição do ECM13. Uma vantagem do uso de hidrogéis derivados de ECM é que o ECM contém as proteínas e fatores de crescimento necessários para um determinado tecido14,15. A irradiação do tecido normal durante lumpectomy causa mudanças significativas ao ECM, e os hidrogéis ECM-derivados podem ser usados para estudar este efeito in vitro. Este método poderia conduzir a uns modelos in vitro mais complexos e mais exatos da doença.

Neste estudo, nós sujeitamos almofadas gordas mamária murino (MFPs) à radiação ex vivo. Os MFPs foram descelularizados e feito na solução do pre-gel. Os hydrogels foram dados forma com as pilhas 4T1 encaixadas, uma linha celular murino de TNBC. As propriedades reológicas do material do hidrogel foram examinadas, e a dinâmica da pilha do tumor foi avaliada dentro dos hydrogels. Hidrogéis fabricados a partir de MFPs irradiados reforçada proliferação de células tumorais. Os estudos futuros incorporarão outros tipos da pilha para estudar interações da pilha-pilha no contexto do retorno do cancro depois da terapia.

Protocol

Os estudos em animais foram realizados de acordo com as diretrizes e protocolos institucionais aprovados pelo Comitê institucional de cuidados e uso de animais da Universidade Vanderbilt. 1. preparação e irradiação ex vivo de MFPs Sacrifique camundongos de nu/nu camundongos (8 – 10 semanas) usando o asfixia do co2 seguido pela deslocação cervical. Limpe a pele usando 70% de etanol. Colete almofadas de gordura mamárias (MFPs) de camundongos sac…

Representative Results

Os MFPs foram descelularizados depois da irradiação usando o procedimento mostrado na Figura 1a. As MFPs pré-descelularizadas (Figura 1b) e pós-descelularização (Figura 1C) são mostradas. A descelularização foi confirmada com coloração de hematoxilina e eosina (H & E), e a coloração de 1-([4-(Xylylazo) xylyl] azo)-2-naftol foi utilizada para avaliar o teor lipídico (Figura,2). As propriedades reológicas dos…

Discussion

Este método de formação de hidrogel é em grande parte dependente da quantidade de tecido inicial. Os MFPs murinos são pequenos, e o processo de descelularização resulta em uma redução significativa do material (tabela 1). O processo pode ser repetido com mais MFPs para aumentar o rendimento final. O fresamento é outro passo importante que pode levar à perda de material. Outros mostraram sucesso com um moinho criogênico, mas este protocolo é baseado na moagem através de uma argamassa de mão…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Os autores agradecem ao Dr. Laura L. Bronsart por fornecer as células GFP-e luciferase-4T1, Dr. Edward l. lagory para o Conselho em 1-([4-(xylylazo) xylyl] azo)-2-naphthol que mancha, Dr. Craig L. Duvall para ivis e uso do Liofilizador, e Dr. Scott A. guelcher para o Reômetro Usar. Esta pesquisa foi apoiada financeiramente pela concessão de NIH #R00CA201304.

Materials

10% Neutral Buffered Formalin, Cube with Spigot VWR 16004-128
2-methylbutane Alfa Aesar 19387
AR 2000ex Rheometer TA Instruments 10D4335 rheometer
Bovine Serum Albumin Sigma-Aldrich A1933-25G
calcein acetoxymethyl (calcein AM) Molecular Probes, Inc. C1430
D-Luciferin Firefly, potassium salt Biosynth Chemistry & Biology L-8820 (S)-4,5-Dihydro-2-(6-hydroxy-2-benzothiazolyl)-4-thiazolecarboxylic acid potassium salt
DPX Mountant for Histology Sigma-Aldrich 06522-500ML
Dulbecco's phosphate-buffered saline Gibco 14040133
Eosin-Y with Phloxine Richard-Allan Scientific 71304 eosin
ethidium homodimer Molecular Probes, Inc. E1169 ethidium homodimer-1 (EthD-1)
Fetal Bovine Serum Sigma-Aldrich F0926-500ML
Fisher Healthcare Tissue-Plus O.C.T. Compound Fisher Scientific 23-730-571 cryostat embedding medium
Fluoromount-G SouthernBiotech 0100-01 aqueous based mounting medium
FreeZone 4.5 Labconco 7751020 lyophilizer
Hoechst 33342 Solution (20 mM) Thermo Scientific 62249 blue fluorescent dye
Hydrochloric acid Sigma-Aldrich 258148-500ML
IVIS Lumina III PerkinElmer CLS136334 bioluminescence imaging system
Kimtech Science Kimwipes Kimberly Clark delicate task wipes
n-Propanol (Peroxide-Free/Sequencing), Fisher BioReagents Fisher Scientific BP1130-500
Oil Red O Sigma-Aldrich O0625-25G 1-([4-(Xylylazo)xylyl]azo)-2-naphthol
OPS Diagnostics CryoGrinder OPS Diagnostics, LLC CG-08-02
PBS (10X), pH 7.4 Quality Biological, Inc. 119-069-151 Phosphate-buffered saline
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140-122
Pepsin from porcine gastric mucosa Sigma-Aldrich P6887-5G pepsin
Peracetic acid Sigma-Aldrich 77240-100ML
Phalloidin-iFluor 594 Reagent (ab176757) abcam ab176757 phalloidin conjugate
Propylene glycol Sigma-Aldrich W294004-1KG-K
Richard-Allan Scientific Signature Series Bluing Reagent Richard-Allan Scientific 7301L bluing agent
Richard-Allan Scientific Signature Series Hematoxylin 7211 Richard-Allan Scientific 7211
RPMI Medium 1640 Gibco 11875-093
Sodium deoxycholate, 98% Frontier Scientific JK559522 deoxycholic acid
Sucrose Sigma-Aldrich S5016
Triton x-100 Sigma-Aldrich X100-100ML t-Octylphenoxypolyethoxyethanol
Trypsin-EDTA (0.25%), phenol red Gibco 25200-056
Whatman qualitative filter paper, Grade 4 Whatman 1004-110 grade 4 qualitative filter paper
Xylenes (Certified ACS), Fisher Chemical Fisher Scientific X5-4

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Cite This Article
Alves, S. M., Zhu, T., Shostak, A., Rossen, N. S., Rafat, M. Studying Normal Tissue Radiation Effects using Extracellular Matrix Hydrogels. J. Vis. Exp. (149), e59304, doi:10.3791/59304 (2019).

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