Summary

Medición de Precios de los herbicidas Metabolismo en Dicot malas hierbas con un ensayo extirpados Leaf

Published: September 07, 2015
doi:

Summary

This manuscript describes how herbicide metabolism rates can be effectively quantified with excised leaves from a dicot weed, thereby reducing variability and removing any possible confounding effects of herbicide uptake or translocation typically observed in whole-plant assays.

Abstract

In order to isolate and accurately determine rates of herbicide metabolism in an obligate-outcrossing dicot weed, waterhemp (Amaranthus tuberculatus), we developed an excised leaf assay combined with a vegetative cloning strategy to normalize herbicide uptake and remove translocation as contributing factors in herbicide-resistant (R) and –sensitive (S) waterhemp populations. Biokinetic analyses of organic pesticides in plants typically include the determination of uptake, translocation (delivery to the target site), metabolic fate, and interactions with the target site. Herbicide metabolism is an important parameter to measure in herbicide-resistant weeds and herbicide-tolerant crops, and is typically accomplished with whole-plant tests using radiolabeled herbicides. However, one difficulty with interpreting biokinetic parameters derived from whole-plant methods is that translocation is often affected by rates of herbicide metabolism, since polar metabolites are usually not mobile within the plant following herbicide detoxification reactions. Advantages of the protocol described in this manuscript include reproducible, accurate, and rapid determination of herbicide degradation rates in R and S populations, a substantial decrease in the amount of radiolabeled herbicide consumed, a large reduction in radiolabeled plant materials requiring further handling and disposal, and the ability to perform radiolabeled herbicide experiments in the lab or growth chamber instead of a greenhouse. As herbicide resistance continues to develop and spread in dicot weed populations worldwide, the excised leaf assay method developed and described herein will provide an invaluable technique for investigating non-target site-based resistance due to enhanced rates of herbicide metabolism and detoxification.

Introduction

Resistencia a los herbicidas en las malezas presenta una seria amenaza para la producción mundial de alimentos y fibras 1,2. Actualmente, miles de poblaciones y biotipos resistentes de más de un centenar de especies de malas hierbas en todo el mundo se han documentado y estudiado 3. Un mecanismo importante que confiere resistencia a los herbicidas en las plantas es la alteración de los herbicidas genes y las proteínas diana del sitio, incluyendo mutaciones genéticas que afectan a la cinética de unión de la proteína herbicida o la amplificación del gen diana del sitio 2. Desintoxicación metabólica a través de actividades elevadas de monooxigenasa citocromo P450 (P450) o glutatión S transferasa (GST) enzimas es otro mecanismo que confiere resistencia a herbicidas en las malas hierbas, que es distinta de varias formas de mecanismos basados ​​target-site-2. Resistencia basada en metabólico tiene ramificaciones importantes para si los costos de acondicionamiento físico planta (también conocido como la aptitud sanciones) pueden ser el resultado de las mechanis herbicida de resistenciam, así como sobre la posibilidad de un único mecanismo de desintoxicación para conferir resistencia cruzada o múltiples herbicidas en las poblaciones de malezas 1,2,4. Generalmente, el metabolismo de los herbicidas en las plantas se puede dividir en tres fases distintas 5. Fase I implica la conversión herbicida o de activación, tales como hidroxilación mediada por P450 de anillos aromáticos o grupos alquilo, o por N – o reacciones de desalquilación O-, lo que aumenta la polaridad y herbicida parcial desintoxicación 5,6. De reciente introducción de grupos funcionales en la fase I pueden proporcionar sitios de enlace para la conjugación de glutatión reducido por GST o glucosa por glicosiltransferasas UDP-dependientes en la Fase II de 5,7. Por ejemplo, el principal metabolito inicial de primisulfuron-metil en el maíz es hidroxi-primisulfuron-metil 8, que puede ser metabolizado adicionalmente a hidroxi-primisulfuron-glucósido (Fase II) y luego transportado a la vacuola para el almacenamiento a largo plazo o más metabólica proprocesamiento 5,6 (Fase III).

Rudis (Amaranthus tuberculatus) es una especie anual dicotiledóneas de difícil control de malezas que dificulta la producción de maíz (Zea mays), soja (Glycine max) y el algodón (Gossypium hirsutum) en los Estados Unidos. El alto grado de diversidad genética de rudis se ve facilitada por su biología dioica y de larga distancia polinización por el viento, y una sola planta rudis hembra puede producir hasta un millón de semillas 9. Estas semillas son pequeñas y de fácil propagación, lo que naturalmente dotar rudis con un mecanismo de dispersión efectiva. Rudis muestra germinación continua durante todo el ciclo de cultivo 9, y sus semillas son capaces de germinar después de varios años de inactividad. Rudis es una planta C 4 que posee una tasa de crecimiento superior a la mayoría de las malezas de hoja ancha en los sistemas de cultivo de cultivo 10. Además, numerosas poblaciones rudis son resistentes a múltiples families de herbicidas 3.

Una población de rudis (designado MCR) de Illinois es resistente a la 4-hidroxi-fenilpiruvato dioxigenasa (HPPD) herbicidas -inhibiting 11, tales como mesotriona, así como a la atrazina y la acetolactato sintasa (ALS) herbicidas inhibidores, incluyendo primisulfuron-metil , debido a los mecanismos no basados ​​en meta-sitio 12,13. Una población diferente de rudis designada ACR 14, que es primisulfuron-metil-resistente (debido a una mutación en el gen ALS) y la atrazina resistentes pero sensibles a la mesotriona, y una población rudis designado WCS 14 que es sensible a primisulfuron-metil, mesotriona y atrazina se utilizaron en comparación con MCR en nuestra investigación previa 12 y los experimentos actuales (resumen en la Tabla 1). Los estudios iniciales no detectaron alteraciones en la secuencia del gen HPPD o niveles de expresión, o reducción de la absorción mesotriona, en el MCRpoblación, en comparación con las poblaciones-mesotriona sensibles 12. Sin embargo, los estudios de metabolismo con plantas enteras demostraron niveles significativamente más bajos de herbicida mesotriona padres en MCR en comparación con el ACR y WCS, que se correlacionaban con las respuestas fenotípicas anteriores para mesotriona 11,12.

Rudis Población Abreviatura Fenotipo de Mesotriona Mecanismo de resistencia mesotriona Fenotipo de primisulfuron Mecanismo de resistencia primisulfuron
McLean County-resistente MCR Resistente Metabolismo * Resistente Metabolismo
Adams County-resistente ACR Sensithe Resistente Mutación de destino de las instalaciones en la ELA 14
Wayne County-Sensible WCS Sensible Sensible

* Mecanismos de resistencia no-objetivo del sitio, excepto el metabolismo mejorado, también pueden conferir resistencia mesotriona en la población MCR 12.

Tabla 1: Descripción de la población rudis de Illinois utilizados en este estudio.

Además de determinar las tasas de metabolismo de los herbicidas en las plantas de semillero rudis intactas, un enfoque experimental diferente fue desarrollado y empleado en nuestra investigación anterior para investigar el metabolismo mediante el uso de un ensayo extirpado rudis hoja 12, así como diversos inhibidores de P450 (por ejemplo, tetcyclacis y malatión). Este método fue adaptado específicamente para rudis de un Previous investigación del metabolismo primisulfuron-metil en el maíz extirpado hojas 15, puesto que el ensayo de la hoja extirpada aún no había sido reportado para la realización de investigaciones metabolismo de los herbicidas en una planta dicotiledónea. El insecticida malatión organophophosate se ha utilizado con frecuencia para in vivo y en la investigación herbicida metabolismo vitro para indicar la participación P450 16. Por ejemplo, la tolerancia y el rápido metabolismo de mesotriona en el maíz se deben a la hidroxilación del anillo catalizado-P450, que se verifica cuando el malatión aumento de la sensibilidad de maíz a la mesotriona 17. Del mismo modo, el malatión inhibe el metabolismo del inhibidor primisulfuron-metil ALS en el maíz extirpado deja 15. Una ventaja importante de la técnica de hoja extirpada es que los datos generados son independientes de los patrones de translocación planta entera, un factor importante a considerar al evaluar el metabolismo de los herbicidas de postemergencia, sistémicas en las plantas. Por consiguiente, este método permite cuantitativa ymetabólica análisis cualitativos para centrarse en una sola hoja tratada 12.

Una estrategia de clonación vegetativa, en combinación con el protocolo de hoja extirpada, se utilizó previamente en rudis para llevar a cabo estudios de metabolismo 12. Debido a la naturaleza cruzamiento de rudis (varón separado y plantas femeninas), y en gran medida de la diversidad genética dentro de las especies de Amaranthus dioicas 9, este protocolo garantiza que se analizaron las plántulas rudis genéticamente idénticos dentro de los experimentos de tiempo-por supuesto. Este artículo demuestra la utilidad del método de la hoja extirpada para medir las tasas de metabolismo de los herbicidas en una mala hierba dicotiledónea (rudis). La cantidad de herbicida matriz restante se determinó en cada punto de tiempo (Figura 1) por análisis de regresión de mínimos cuadrados no lineal, y se ajuste con una curva de primer orden sencillo con el fin de estimar el tiempo para 50% de herbicida absorbido para degradar ( DT 50). Representativocromatogramas de cromatografía líquida de alta resolución en fase inversa (RP-HPLC) se muestran para ALS-resistentes y poblaciones rudis -sensibles, que indican la desaparición de los herbicidas de los padres y la formación concomitante de metabolito polar (s) durante un estudio de evolución temporal (Figura 2). El objetivo de nuestro artículo es describir y demostrar la utilidad de la prueba de la hoja extirpado en combinación con un método de clonación vegetativa para la determinación de las tasas precisas y reproducibles del metabolismo de los herbicidas en plantas dicotiledóneas, utilizando el anillo marcado (URL- 14 C) herbicidas uniformemente en tres poblaciones rudis que difieren en sus respuestas a la planta entera HPPD- y herbicidas inhibidores de ALS (Tabla 1).

Protocol

1. Material Vegetal, condiciones de crecimiento, y vegetativo Clonación Nota: Tres poblaciones rudis fueron investigados en esta investigación: MCR (del condado de McLean, IL), ACR (de Adams County, IL), y WCS (de Wayne County, IL) (Tabla 1). Recoger y suspender semillas rudis en 0,1 g de agar L -1: solución de agua a 4 ° C durante al menos 30 días para mejorar la germinación. Nota: Algunas poblaciones rudis están latentes, pero …

Representative Results

Se detectaron grandes diferencias en las tasas de metabolismo mesotriona entre cualquiera WCS o ACR y MCR (Figura 1). En cada punto de tiempo, MCR había metabolizado mesotriona más rápidamente que las dos poblaciones-mesotriona sensible, WCS y ACR, que se correlaciona con las respuestas fenotípicas planta entera anteriores 11. Por clonación suficientes plantas desde una única planta parental de cada población, los análisis tiempo-por supuesto metabolismo herbicida son uniformes y repr…

Discussion

El método de hoja extirpada descrito en este documento se ha utilizado anteriormente en la investigación del metabolismo primisulfuron en hojas de maíz 15, pero nuestros resultados demuestran que este protocolo también es eficaz, preciso y reproducible para medir el metabolismo de los herbicidas en una especie de maleza dicotiledóneas 12. Una ventaja importante de la técnica de hoja extirpada en comparación con los estudios de la planta entera es que una hoja extirpada es independiente de lo…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Wendy Zhang, Austin Tom, Jacquie Janney, Erin Lemley, and Brittany Janney for assistance with plant growth and extractions, Dr. Anatoli Lygin for assistance with chromatographic analyses, and Syngenta Crop Protection for funding.

Materials

Agar Sigma-Aldrich A1296 for pre-germinating seeds
Potting medium Sun Gro Horticulture 49040233 for plant growth
Nutricote Agrivert  TOTAL BLEND 13-13-13 T100 slow-release fertilizer
Growth chamber E15 Controlled Environments Limited 20207 plant culturing
Tris base Fisher Scientific BP152-500 buffer for excised leaves
HCl (concentrated) Fisher Scientific A144500 adjust pH of buffer
Murashige and Skoog (MS) salts  Sigma-Aldrich M0404 incubation of excised leaves
Methanol Fisher Scientific A452-4 leaf washes after incubation
Acetone Sigma-Aldrich 179124 plant extractions
Acetonitrile (HPLC grade) Macron Fine Chemicals MKH07610 HPLC mobile phase
Formic acid  Mallinckrodt Analytical MK259205 acidify mobile phase pH
Micro-centrifuge Eppendorf 5417R 1.5 or 2.0 mL tubes
Centrifuge (temperature controlled) Eppendorf 5810R 15 or 50 mL tubes
Polypropylene centrifuge tube Corning Inc. 430790 15 mL, sterile
Rotary evaporator BÜCHI R200 concentrate plant samples
Liquid scintillation spectrometry (LSS) Packard Instruments 104470 quantify 14C
High-performance liquid chromatography Perkin Elmer N2910401 resolve herbicide metabolites
Flow scintillation analyzer  LabLogic System 1103303 for HPLC analysis of 14C
Hypersil Gold C18 column  Thermo-Scientific 03-050-522  reversed phase
Ultima-Flo M cocktail Perkin Elmer 6013579 for Flow-scintillation analyzer
Scintillation Cocktail (ScintiVerse BD) Fisher Scientific SX18 for LSS; biodegradable
Laboratory homogenizer Kinematica CH-6010  homogenize leaf samples

References

  1. Yu, Q., Powles, S. Metabolism-based herbicide resistance and cross-resistance in crop weeds: A threat to herbicide sustainability and global crop production. Plant Physiology. 166, 1106-1118 (2014).
  2. Powles, S. B., Yu, Q. Evolution in action: plants resistant to herbicides. Annual Reviews in Plant Biology. 61, 317-347 (2010).
  3. Heap, I., et al. Global perspective of herbicide-resistant weeds. Pest Management Science. 70 (9), 1306-1315 (2014).
  4. Délye, C., et al. Non-target-site-based resistance should be the centre of attention for herbicide resistance research: Alopecurus myosuroides as an illustration. Weed Research. 51 (5), 433-437 (2011).
  5. Kreuz, K., Tommasini, R., Martinoia, E. Old enzymes for a new job. Herbicide detoxification in plants. Plant Physiology. 111, 349-353 (1996).
  6. Riechers, D. E., Kreuz, K., Zhang, Q. Detoxification without intoxication: herbicide safeners activate plant defense gene expression. Plant Physiology. 153, 3-13 (2010).
  7. Siminszky, B. Plant cytochrome P450-mediated herbicide metabolism. Phytochemistry Reviews. 5 (2-3), 445-458 (2006).
  8. Fonné-Pfister, R., et al. Hydroxylation of primisulfuron by an inducible cytochrome P450-dependent monooxygenase system from maize. Pesticide Biochemistry and Physiology. 37 (2), 165-173 (1990).
  9. Steckel, L. E. The dioecious Amaranthus spp.: here to stay. Weed Technology. 21 (2), 567-570 (2007).
  10. Horak, M. J., Loughin, T. M. Growth analysis of four Amaranthus species. Weed Science. 48 (3), 347-355 (2000).
  11. Hausman, N. E., et al. Resistance to HPPD-inhibiting herbicides in a population of waterhemp (Amaranthus tuberculatus) from Illinois, United States. Pest Management Science. 67 (3), 258-261 (2011).
  12. Ma, R., et al. Distinct detoxification mechanisms confer resistance to mesotrione and atrazine in a population of waterhemp. Plant Physiology. 163, 363-377 (2013).
  13. Guo, J., et al. Non-target-site resistance to ALS inhibitors in waterhemp (Amaranthus tuberculatus). Weed Science. in press, (2015).
  14. Patzoldt, W. L., Tranel, P. J., Hager, A. G. A waterhemp (Amaranthus tuberculatus) biotype with multiple resistance across three herbicide sites of action. Weed Science. 53 (1), 30-36 (2005).
  15. Kreuz, K., Fonné-Pfister, R. Herbicide-insecticide interaction in maize: malathion inhibits cytochrome P450-dependent primisulfuron metabolism. Pesticide Biochemistry and Physiology. 43 (3), 232-240 (1992).
  16. Correia, M. A., Ortiz de Montellano, P. R., Ortiz de Montellano, P. R. . Cytochrome P450: Structure, Mechanism, and Biochemistry. , 247-322 (2005).
  17. Hawkes, T. R., et al. Mesotrione: mechanism of herbicidal activity and selectivity in corn. Proceedings of the Brighton Crop Protection Conference – Weeds. 2, 563-568 (2001).
  18. Patzoldt, W. L., Tranel, P. J., Hager, A. G. Variable herbicide responses among Illinois waterhemp (Amaranthus rudis and A. tuberculatus) populations. Crop Protection. 21 (9), 707-712 (2002).
  19. Jalaludin, A., Yu, Q., Powles, S. B. Multiple resistance across glufosinate, glyphosate, paraquat and ACCase-inhibiting herbicides in an Eleusine indica population. Weed Research. 55 (1), 82-89 (2015).
  20. Iwakami, S., et al. Cytochrome P450 CYP81A12 and CYP81A21 are associated with resistance to two acetolactate synthase inhibitors in Echinochloa phyllopogon. Plant Physiology. 165, 618-629 (2014).

Play Video

Cite This Article
Ma, R., Skelton, J. J., Riechers, D. E. Measuring Rates of Herbicide Metabolism in Dicot Weeds with an Excised Leaf Assay. J. Vis. Exp. (103), e53236, doi:10.3791/53236 (2015).

View Video