Die Befruchtung der Xenopus Oozyten Über den Host-Transfer-Methode
Summary
Verfahren zur Düngung<em> Xenopus Oozyten</em> Durch den Host Übertragungsmethode.
Abstract
Studium der Beitrag der mütterlich vererbten Moleküle frühen Entwicklung Wirbeltieren wird häufig durch die Zeit-und Kostenaufwand notwendig, Mutter-Effekt mutierten Tiere erzeugen behindert. Darüber hinaus werden viele der Techniken zur Überexpression oder Hemmung der Genfunktion in Organismen wie Xenopus und Zebrafisch ausreichend Ziel kritische mütterlichen Signalwege wie Wnt-Signalweg. In Xenopus, kann die Manipulation der Genfunktion in kultivierten Eizellen und anschließend düngen sie diese Probleme zu einem gewissen Grad zu mildern. Die Eizellen werden manuell vom Spender Eierstockgewebe defolliculated, injiziert oder behandelt in der Kultur, wie gewünscht, und dann mit Progesteron stimuliert die Reifung zu induzieren. Anschließend werden die Eizellen in die Körperhöhle ein Eisprung Host weiblichen Frosch eingeführt, worauf sie durch den Host-Eileiter transloziert werden und erwerben Modifikationen und Gelee Mäntel, die für die Befruchtung. Die resultierenden Embryonen können dann auf die gewünschte Stufe angehoben werden und analysiert die Auswirkungen der experimentellen Störungen. Diese Host-Transfer-Verfahren wurde sehr effektiv bei der Aufdeckung von grundlegenden Mechanismen der frühen Entwicklungsphase und ermöglicht eine breite Palette von experimentellen Möglichkeiten nicht in jedem anderen Wirbeltieren Modell-Organismus.
Protocol
Discussion
Die erfolgreiche Übertragung wird bei der Befruchtung und normale Spaltung von> 50% der Oozyten (Abbildung 3) führen. In der Regel zwischen 30-60% der transferierten Eizellen wird über die Neurula Stadien überleben. Wir in der Regel übertragen 75-150 Eizellen pro Versuchsgruppe, die genügend Embryonen für verschiedene Arten von Analyse Ausbeute (in situ, RT-PCR) sowie die Visualisierung der Phänotyp. Die Implantation wesentlich mehr Eizellen scheint nicht zu einer deutlichen Steigerung der Rendite. Außerdem …
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Die Autoren möchten sich dank Mitglieder des Houston-Labor für die kritische Durchsicht des Manuskripts wie. Forschung wird durch die National Institutes of Health (GM083999) verliehen DWH unterstützt
Materials
Solutions and recipes:
OCM (Oocyte culture medium; modified from Wylie et al., 1996)
| 70% Leibovitz’s L-15 medium (containing l-glutamine) | (Invitrogen 11415-064) |
| 0.4 mg/ml Bovine serum albumin (BSA; fraction V) | (Sigma A-9418-50g) |
| 1x Penicillin-Streptomycin | (Sigma P-0781) |
| Adjust to pH 7.6-7.8 with 5N NaOH | |
| Make fresh weekly, store at 18°C. | |
10X MMR (Marc’s Modified Ringer’s Solution; Zuck et al., 1998)
| 1M NaCl |
| 20 mM KCl |
| 20 mM CaCl2 |
| 10 mM MgCl2 |
| 150 mM HEPES |
| adjust to pH 7.6-7.8 |
| Store at 4°C |
Anesthetic solution
| 1 g/L 3-Aminobenzoic Acid Ethyl Ester (MS222) | (Sigma A-5040) |
| 0.7 g/L sodium bicarbonate | |
| Dissolve in Amquel-treated water | |
| Make fresh weekly | |
Progesterone stocks
| 10 mM Progesterone (Sigma P- 0130) in 100% Ethanol |
| Dilute to 1 mM in 100% EtOH for a 500x stock/working solution |
| Store at -20°C |
Vital dyes (modified from Heasman et al., 1991)
| Blue: 0.1% Nile Blue A | (Aldrich 121479-5G), |
| Red: 0.25% Neutral Red | (Sigma N-6634), |
| Brown: 1% Bismarck Brown | (Sigma B-2759), |
| Green (80 μl blue + 80 μl brown), | |
| Mauve (80 μl blue + 80 μl red). | |
| A sixth color, Orange (80 μl red+ 80 μl brown), can also be used but is often hard to distinguish from brown. | |
Stocks of Blue, Red and Brown are made up in deionized water in 50 ml tubes, incubated for 20 minutes with rocking and spun in a clinical centrifuge. The supernatants are aliquotted into microfuge tubes and stored at -20°C.
References
- Brun, R. Oocyte maturation in vitro: contribution of the oviduct to total maturation in Xenopus laevis. Experientia. 31, 1275-1276 (1975).
- Elinson, R. P., Pasceri, P. Two UV-sensitive targets in dorsoanterior specification of frog embryos. Development. 106, 511-518 (1989).
- Heasman, J., Holwill, S., Wylie, C. C., C, C. Fertilization of cultured Xenopus oocytes and use in studies of maternally inherited molecules. Methods Cell Biol. 36, 213-230 (1991).
- Holwill, S., Heasman, J., Crawley, C., Wylie, C. C. Axis and germ line deficiencies caused by u.v irradiation of Xenopus oocytes cultured in vitro. Development. 100, 735-743 (1987).
- Houston, D. W., King, M. L. A critical role for Xdazl, a germ plasm-localized RNA, in the differentiation of primordial germ cells in Xenopus. Development. 127, 447-456 (2000).
- Mir, A., Heasman, J. How the mother can help: studying maternal Wnt signaling by anti-sense-mediated depletion of maternal mRNAs and the host transfer technique. Methods Mol Biol. 469, 417-429 (2008).
- Rugh, R. . Experimental Embryology: Techniques and procedures. , (1962).
- Smith, L. D., Ecker, R. E., Subtelny, S. In vitro induction of physiological maturation in Rana pipiens oocytes removed from their ovarian follicles. Dev Biol. 17, 627-643 (1968).
- Smith, L. D., Xu, W., Varnold, R. L. Oogenesis and oocyte isolation. Methods Cell Biol. 36, 45-60 (1991).
- Woolf, T. M., Jennings, C. G., Rebagliati, M., Melton, D. A. The stability, toxicity and effectiveness of unmodified and phosphorothioate antisense oligodeoxynucleotides in Xenopus oocytes and embryos. Nucleic Acids Res. 18, 1763-1769 (1990).
- Wylie, C., Kofron, M., Payne, C., Anderson, R., Hosobuchi, M., Joseph, E., Heasman, J. Maternal beta-catenin establishes a ‘dorsal signal’ in early Xenopus embryos. Development. 122, 2987-2996 (1996).
- Zhang, J., Houston, D. W., King, M. L., Payne, C., Wylie, C., Heasman, J. The role of maternal VegT in establishing the primary germ layers in Xenopus embryos. Cell. 94, 515-524 (1998).
- Zuck, M. V., Wylie, C. C., Heasman, J., Richter, J. D. Maternal mRNAs in Xenopus embryos: an antisense approach.. A comparative methods approach to the study of oocytes and embryos. , 341-354 (1998).
